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문제 정의
- 따라서 본 연구에서는 큰느타리의 생육특성과 인공재배를 위한 조건을 검토하고자 균사 생육을 위한 최적 영양원을 조사하였으며, 톱밥수종에 따른 자실체의 생산조건도 검토하여 얻은 결과를 보고하고자 한다.
가설 설정
- 두 배지에서의 비생육 속도(specific growth rate, μ)와 생장수율(growth yield, Yx/ s)을 구하기 위하여 아래 식(1) 및 (2)를 이용하여 계산하였으며, 비생육 속도는 균사체 생육 대수기 구간에서 배양시간과 건조 균사체량을 이용하여 구하였고, 생장수율은 최대 건조 균사체량과 첨가한 기질량을 이용하여 구하였다. 이 때 잔존 기질 농도(S)는 균사체가 모두 이용한 것으로 가정하여 계산하였다.
제안 방법
- 최적 탄소원을 선발하기 위하여 MYPA 배지에 탄소원으로 glucose를 비롯한 다당류와 이당류 및 단당류 등 총 13종의 탄소원을 각각 l%(w/v) 농도로 첨가하여 배지를 조제하였다. 121℃에서 15분간 고압살균한 다음, 접종원으로 직경 8㎜의 균사체 절편을 접종하여, 25±1℃ 배양기에서 7일간 배양하면서 균사생육길이 및 밀도를 조사하였다. 또, 선발된 탄소원의 최적농도를 조사하기 위하여 0~7%(w/v)까지 최적 탄소원의 농도를 달리하여 조제한 평판 배지에서 상기와 동일한 방법으로 7일간 배양하며 균사의 생육정도를 조사하였다.
- 25(g/ml)가 되도록 충진하였다. 121℃에서 40분간 고압살균한 다음, 접종원으로 배양한 톱밥종균을 3~5g씩 접종하고, 25℃로 조절된 배양실에서 배양하며 균사 생장길이와 밀도를 조사하여 최적의 톱밥수종을 선발하였다.
- 미리 준비된 접종원을 5%(v/v) 접종하여, 25±1℃로 조절된 항온진탕기에서 120rpm으로 7일간 회전진탕배양하였다. 건조 균사체량은 배양기간 중 일정시간 간격으로 배양액을 sampling하여 여과한 후, 60℃의 건조기에서 24시간 건조한 다음, desiccator에 옮기고 항량이 될 때까지 무게를 측정하여 구하였다.
- 균사생육을 위한 최적 수소이온 농도(pH)를 알아보기 위하여 기본배지로 121℃에서 15분간 살균하였다. 초기 pH범위를 각각 4.
- 균사생육을 위한 최적 온도를 조사하기 위하여 기본배지로 선발된 MYPA 배지를 조제하여 121℃에서 15분간 고압살균하고 petri-dish에 20ml씩 분주하여 굳힌 다음, 접종원을 접종하고 15, 20, 25, 30 및 35℃의 온도범위로 조절된 항온기에서 7일간 배양하면서 균사의 생장정도 및 밀도를 조사하였다.
- 05%로 배지를 조제하고, 121℃에서 15분간 고압살균한 배지에, 비타민을 가하였다. 그 후 균사체를 접종한 다음, 25±1℃ 배양기에서 7일간 배양하면서 균사 생육길이와 밀도를 조사하였다.
- 큰느타리 자실체 생산에 미치는 첨가제의 영향을 알아보기 위하여, 850ml의 병재배용 pp병을 이용하여 참나무 톱밥에 첨가제로 미강과 밀기울을 각각 20%(v/v)와 30%(v/v)씩 혼합하여 충진한 후, 121℃에서 90분간 고압살균하였다. 그 후 종균을 접종하고 25℃의 배양실에서 균사를 배양한 다음, 생육실로 옮겨 발이를 유도하였으며, 자실체 생육조건을 맞추어 주며 성숙한 자실체로 생육시킨 후, 생산된 자실체의 형태와 품질특성을 조사하였다. 이상의 모든 실험은 5배수 또는 16배수로 수행하였으며, 이 실험 값으로부터 평균 값과 표준오차를 각각 구하였다.
- 접종원을 5%(v/v) 접종하고, 25±1℃로 조절된 항온진탕기에서 10일 동안 회전진탕배양하면서 경시적으로 시료를 채취하여 건조 균사 체량 및 pH 변화 등을 조사하였다. 두 배지에서의 비생육 속도(specific growth rate, μ)와 생장수율(growth yield, Yx/ s)을 구하기 위하여 아래 식(1) 및 (2)를 이용하여 계산하였으며, 비생육 속도는 균사체 생육 대수기 구간에서 배양시간과 건조 균사체량을 이용하여 구하였고, 생장수율은 최대 건조 균사체량과 첨가한 기질량을 이용하여 구하였다. 이 때 잔존 기질 농도(S)는 균사체가 모두 이용한 것으로 가정하여 계산하였다.
- 05%(w/v)를 첨가하여 배지를 조제하였으며, 살균한 다음, 접종원을 접종하고 25±1℃에서 배양하면서 균사생장 및 밀도를 조사하였다. 또 최적 무기염류의 농도는 무기염류를 o.oi~ 0.1%(w/v)까지 첨가하여 배양하면서 균사 생장길이를 조사하여 결정하였다.
- 121℃에서 15분간 고압살균한 다음, 접종원으로 직경 8㎜의 균사체 절편을 접종하여, 25±1℃ 배양기에서 7일간 배양하면서 균사생육길이 및 밀도를 조사하였다. 또, 선발된 탄소원의 최적농도를 조사하기 위하여 0~7%(w/v)까지 최적 탄소원의 농도를 달리하여 조제한 평판 배지에서 상기와 동일한 방법으로 7일간 배양하며 균사의 생육정도를 조사하였다.
- 배양기간에 따른 영향을 조사하기 위하여 250ml 삼각 플라스크에 기본배지를 80ml씩 분주한 후, 121℃에서 15분간 고압살균하였다. 미리 준비된 접종원을 5%(v/v) 접종하여, 25±1℃로 조절된 항온진탕기에서 120rpm으로 7일간 회전진탕배양하였다. 건조 균사체량은 배양기간 중 일정시간 간격으로 배양액을 sampling하여 여과한 후, 60℃의 건조기에서 24시간 건조한 다음, desiccator에 옮기고 항량이 될 때까지 무게를 측정하여 구하였다.
- 배양기간에 따른 영향을 조사하기 위하여 250ml 삼각 플라스크에 기본배지를 80ml씩 분주한 후, 121℃에서 15분간 고압살균하였다. 미리 준비된 접종원을 5%(v/v) 접종하여, 25±1℃로 조절된 항온진탕기에서 120rpm으로 7일간 회전진탕배양하였다.
- 비타민의 영향은 thiamine HCl 외 4종의 비타민을 0.05㎎/l 농도로 membrane filter(diameter 13㎜, pore size 0.45㎛)로 제균한 후, soluble starch 3%, malt extract 0.25%, yeast extract 0.25% 및 CaCL·2H2O 0.05%로 배지를 조제하고, 121℃에서 15분간 고압살균한 배지에, 비타민을 가하였다. 그 후 균사체를 접종한 다음, 25±1℃ 배양기에서 7일간 배양하면서 균사 생육길이와 밀도를 조사하였다.
- 최적 영양원 선발시험 결과로부터 얻은 최적배지와 기본배지(MYP)를 250ml 삼각 플라스크에 각각 80ml씩 넣고, 121℃에서 15분간 고압살균하였다. 접종원을 5%(v/v) 접종하고, 25±1℃로 조절된 항온진탕기에서 10일 동안 회전진탕배양하면서 경시적으로 시료를 채취하여 건조 균사 체량 및 pH 변화 등을 조사하였다. 두 배지에서의 비생육 속도(specific growth rate, μ)와 생장수율(growth yield, Yx/ s)을 구하기 위하여 아래 식(1) 및 (2)를 이용하여 계산하였으며, 비생육 속도는 균사체 생육 대수기 구간에서 배양시간과 건조 균사체량을 이용하여 구하였고, 생장수율은 최대 건조 균사체량과 첨가한 기질량을 이용하여 구하였다.
- 2%(w/v)농도가 되도록 조제하고 121℃에서 15분간 고압살균하였다. 접종원을 접종한 다음, 상기와 동일한 조건으로 배양하면서 균사의 생육길이와 밀도를 조사하였으며, 최적 질소원 농도의 결정은 최적 질소원을 0~3.3%(w/v)까지 농도를 달리하여 배지를 조제한 후, 상기와 동일한 방법과 조건하에서 배양하면서 조사하였다.
- 본 실험에 사용한 균주는 Pleurotus eryngii NIAST 2302로 농촌진흥청 농업과학기술원 응용미생물과에서 분양받아 사용하였으며, potato dextrose agar(PDA) 배지에서 2개월 간격으로 계대 배양하며 사용하였다. 접종원의 준비는 고체 배양의 경우, 냉장보관하던 균주를 PDA 평판 배지의 중앙부에 접종하여 25±1℃의 항온기에서 배양한 후 실험에 사용하였으며, 액체 배양의 경우는 250ml삼각 플라스크에 50ml의 potato dextrose broth를 조제하여 평판 배양된 큰느타리 균사체를 접종하고 5일간 배양한 다음, 배양액을 균질기로 균질화하여 접종원으로 사용하였다.
- 큰느타리의 균사 생육에 가장 좋은 기본배지를 선발하기 위하여 PDA 배지에서 생육된 균사체를 cork borer(Φ8㎜)로 절취한 다음, PDA 배지외 ME, MCM, MYPA, YM, YMPG, YMG 등 7종의 기존의 공시배지(Table 1)에 접종하였다. 접종한 각 배양기는 25±1℃의 항온기에서 10일간 배양하면서 균사의 생장정도를 측정하여 가장 우수한 공시 배지를 기본배지로 선발하였다.
- 첨가제 선발시험은 참나무 톱밥과 아카시아 톱밥에 미강, 밀기울 및 도토리박을 각각 10, 20, 30, 40%(v/v)의 비율로 배합한 다음, 수분함량이 65% 되게 조절하였다. 조제한 배지를 상기와 같은 방법으로 톱밥배지를 충진하고, 고압살균한 다음, 종균을 접종하고 25℃에서 배양하면서 균사생장정도와 밀도를 조사하였다.
- 첨가제 선발시험은 참나무 톱밥과 아카시아 톱밥에 미강, 밀기울 및 도토리박을 각각 10, 20, 30, 40%(v/v)의 비율로 배합한 다음, 수분함량이 65% 되게 조절하였다. 조제한 배지를 상기와 같은 방법으로 톱밥배지를 충진하고, 고압살균한 다음, 종균을 접종하고 25℃에서 배양하면서 균사생장정도와 밀도를 조사하였다.
- 균사생육을 위한 최적 수소이온 농도(pH)를 알아보기 위하여 기본배지로 121℃에서 15분간 살균하였다. 초기 pH범위를 각각 4.0, 5.0, 6.0, 7.0 및 8.0으로 맞추기 위하여 0.1 N HCl과 0.1 N NaOH를 이용하여 조절하였으며, 그 후 배지를 petH-dish에 무균적으로 분주하여, 실온에서 냉각시킨 다음, 접종원을 접종하고, 25±1℃의 항온기에서 7일간 배양하면서 균사의 생장정도 및 밀도를 측정하였다.
- 최적 무기염류의 선발은 최적 탄소원과 질소원 실험결과로 선발된 soluble starch 3%, malt extract 0.25%, yeast extract 0.25%에 KH2PO4 외 11종의 무기염류 0.05%(w/v)를 첨가하여 배지를 조제하였으며, 살균한 다음, 접종원을 접종하고 25±1℃에서 배양하면서 균사생장 및 밀도를 조사하였다. 또 최적 무기염류의 농도는 무기염류를 o.
- 최적 수분함량을 조사하기 위하여 참나무 톱밥에 밀기울 30%(v/v)를 혼합하여 수분함량이 55~80%(v/v)가 되도록 조제하여 상기와 동일한 방법으로 충진하고, 살균한 다음, 배양하면서 균사생장과 밀도를 조사하였다.
- 최적 영양원 선발시험 결과로부터 얻은 최적배지와 기본배지(MYP)를 250ml 삼각 플라스크에 각각 80ml씩 넣고, 121℃에서 15분간 고압살균하였다. 접종원을 5%(v/v) 접종하고, 25±1℃로 조절된 항온진탕기에서 10일 동안 회전진탕배양하면서 경시적으로 시료를 채취하여 건조 균사 체량 및 pH 변화 등을 조사하였다.
- 최적 질소원의 선발은 기본배지에 최적 탄소원인 soluble starch를 30g/l로 첨가한 후, 질소원으로 유기태 및 무기태 질소원을 단독, 혹은 혼합하여 최종 3.2%(w/v)농도가 되도록 조제하고 121℃에서 15분간 고압살균하였다. 접종원을 접종한 다음, 상기와 동일한 조건으로 배양하면서 균사의 생육길이와 밀도를 조사하였으며, 최적 질소원 농도의 결정은 최적 질소원을 0~3.
- 최적 탄소원을 선발하기 위하여 MYPA 배지에 탄소원으로 glucose를 비롯한 다당류와 이당류 및 단당류 등 총 13종의 탄소원을 각각 l%(w/v) 농도로 첨가하여 배지를 조제하였다. 121℃에서 15분간 고압살균한 다음, 접종원으로 직경 8㎜의 균사체 절편을 접종하여, 25±1℃ 배양기에서 7일간 배양하면서 균사생육길이 및 밀도를 조사하였다.
- 최적 톱밥수종을 선발하기 위하여 참나무(Quercus sp.), 아카시아(Rcbinia sp.), 버드나무(Salix sp.), 포플러(Populus sp.), 뽕나무(Morus sp.) 및 소나무(Pinus sp.) 톱밥을 이용하여 배지의 수분을 65%(v/v)로 맞춘 후 시험관(Φ3.0×20.0㎝)에 톱밥배지를 가비중이 0.25(g/ml)가 되도록 충진하였다. 121℃에서 40분간 고압살균한 다음, 접종원으로 배양한 톱밥종균을 3~5g씩 접종하고, 25℃로 조절된 배양실에서 배양하며 균사 생장길이와 밀도를 조사하여 최적의 톱밥수종을 선발하였다.
- 큰느타리 자실체 생산에 미치는 첨가제의 영향을 알아보기 위하여, 850ml의 병재배용 pp병을 이용하여 참나무 톱밥에 첨가제로 미강과 밀기울을 각각 20%(v/v)와 30%(v/v)씩 혼합하여 충진한 후, 121℃에서 90분간 고압살균하였다. 그 후 종균을 접종하고 25℃의 배양실에서 균사를 배양한 다음, 생육실로 옮겨 발이를 유도하였으며, 자실체 생육조건을 맞추어 주며 성숙한 자실체로 생육시킨 후, 생산된 자실체의 형태와 품질특성을 조사하였다.
- 큰느타리의 균사 생육에 가장 좋은 기본배지를 선발하기 위하여 PDA 배지에서 생육된 균사체를 cork borer(Φ8㎜)로 절취한 다음, PDA 배지외 ME, MCM, MYPA, YM, YMPG, YMG 등 7종의 기존의 공시배지(Table 1)에 접종하였다. 접종한 각 배양기는 25±1℃의 항온기에서 10일간 배양하면서 균사의 생장정도를 측정하여 가장 우수한 공시 배지를 기본배지로 선발하였다.
- 큰느타리의 균사 생육에 가장 좋은 기본배지를 선발하기 위하여 Table 1과 같이 7종의 공시 배지를 이용하여 균사생육 및 밀도를 조사하였으며, 그 결과는 Table 2와 같다. MYPA 배지에서 63.
- 큰느타리의 균사생육을 위한 최적 탄소원, 질소원, 무기 염류 및 비타민을 선발하기 위하여 기본배지와 상기 실험으로부터 얻은 최적조건(온도, 배양기간, pH)을 이용하여 다음과 같이 조사하였다.
대상 데이터
- 본 실험에 사용한 균주는 Pleurotus eryngii NIAST 2302로 농촌진흥청 농업과학기술원 응용미생물과에서 분양받아 사용하였으며, potato dextrose agar(PDA) 배지에서 2개월 간격으로 계대 배양하며 사용하였다. 접종원의 준비는 고체 배양의 경우, 냉장보관하던 균주를 PDA 평판 배지의 중앙부에 접종하여 25±1℃의 항온기에서 배양한 후 실험에 사용하였으며, 액체 배양의 경우는 250ml삼각 플라스크에 50ml의 potato dextrose broth를 조제하여 평판 배양된 큰느타리 균사체를 접종하고 5일간 배양한 다음, 배양액을 균질기로 균질화하여 접종원으로 사용하였다.
데이터처리
- 그 후 종균을 접종하고 25℃의 배양실에서 균사를 배양한 다음, 생육실로 옮겨 발이를 유도하였으며, 자실체 생육조건을 맞추어 주며 성숙한 자실체로 생육시킨 후, 생산된 자실체의 형태와 품질특성을 조사하였다. 이상의 모든 실험은 5배수 또는 16배수로 수행하였으며, 이 실험 값으로부터 평균 값과 표준오차를 각각 구하였다.
성능/효과
- 큰느타리의 균사 생육에 가장 좋은 기본배지를 선발하기 위하여 Table 1과 같이 7종의 공시 배지를 이용하여 균사생육 및 밀도를 조사하였으며, 그 결과는 Table 2와 같다. MYPA 배지에서 63.1㎜/10days로 균사생육이 가장 빨랐으며 균사 밀도도 좋았고 그 다음은 YM 배지로 비교적 생육이 우수하였다. 그 외에는 MCM, YMG, PDA, YMPG, ME 순으로 나타났다.
- 배양 6일까지는 두 배지 모두 건조 균사체량이 비슷하게 증가하는 경향을 나타내다가 배양 7일째부터 기본배지에서는 균사체량이 약간 감소하는 경향이었고, 최적배지는 8일까지 계속 증가하였다. 각 배지에서의 최대 건조 균사체량은 기본배지의 경우, 배양 6일째 약 15g/l이었고, 최적배지는 배양 8일째 약 20g/l를 나타내어 최적배지는 기본배지에 비해 약 25% 정도 높은 균사체 생산수율을 보였다. 한편, 두 배지에서 큰느타리의 비생육 속도(μ)와 생장수율(Yx/s)을 비교검토한 결과는 Table 8과 같다.
- 균사 생육 최적 pH를 검토한 결과는 Table 3에서 보는 바와 같이 pH 5.0-7.0 범위에서 균사 생육정도가 비교적 양호하였으며, 특히 pH 5.0~6.0에서 균사 생장 속도가 가장 우수하였다. 이는 김 등(1997a)의 결과나 Zadrazil(1978)이 보고한 큰느타리의 균사생육 최적 pH는 5.
- 다당류인 soluble starch를 첨가한 배지에서 7일 만에 63.1㎜로 균사생장 및 균밀도가 가장 양호하였으며, maltose, arabinose 및 amylopectin에서는 모두 60~61㎜ 정도의 균사 생육을 나타내었고, 단당류이며 5탄당인 xylose에서 균사 생육 및 균밀도가 가장 저조하게 나타났다. 또 최적 soluble starch의 농도는 Fig.
- 한편, 최적 수분함량을 조사한 결과, Table 10에서와 같이 수분함량이 80%까지 증가할수록 균사생장은 빨랐으나, 균사밀도는 70%(v/v) 이상부터 감소하였다. 따라서 균사생육과 밀도를 고려하여 최적 수분함량은 70%(v/v)로 판단되었다. 김 등(1997b)은 큰느타리버섯의 균사생장을 위한 최적의 수분함량이 60~65%라 하였으며, 그 이상에서는 균사밀도가 우수하였다는 보고와는 다소 차이가 있었다.
- 따라서 큰느타리 버섯의 최적 첨가제는 쌀겨가 가장 좋았으며 첨가량은 20%(v/v)이었다.
- 469(g biomass/ g substrate)로 최적배지에서 높았다. 따라서 큰느타리는 최적배지에서 기질을 균사체로의 전환효율이 기본배지보다 다소 높다는 사실을 알 수 있었다.
- 8㎜/7days로 가장 빠른 균사 생육속도를 나타내었으며, 그 밖에 malt extract, yeast extract 및 peptone을 혼합하여 첨가한 경우에도 비교적 균사생장이 양호하였다. 또 유기태 질소원과 무기태 질소원을 혼합하여 첨가하였을 경우, 균체생육에 큰 영향을 미치지 않아 무기태 질소원의 영향이 growth of Pleurotus eryngii 유기태 질소원보다 상대적으로 적다는 사실을 알 수 있었다. 최적 질소원으로 선정된 malt extract와 yeast extract의 최적 농도를 조사하기 위하여 이 두가지 질소원을 1 : 1의 무게비로 총 0.
- 1㎜로 균사생장 및 균밀도가 가장 양호하였으며, maltose, arabinose 및 amylopectin에서는 모두 60~61㎜ 정도의 균사 생육을 나타내었고, 단당류이며 5탄당인 xylose에서 균사 생육 및 균밀도가 가장 저조하게 나타났다. 또 최적 soluble starch의 농도는 Fig. 3에서와 같이 3%(w/v)에서 가장 좋았으며, 7%에서는 균사생육이 급격히 감소하는 경향을 나타내었다.
- 또, 첨가제에 따른 큰느타리 자실체의 생산성을 조사한 결과(Table 11), 미강 20~30%(v/v), 밀기울 20%(v/v) 첨가 시 버섯대의 굵기 및 대의 길이에서 큰 차이가 없었으며 쌀겨 20%(v/v) 첨가구에서 자실체 수량이 평균 92g로 가장 높았다.
- 무기 염류 중 CaCl2·2H2O에서 70.1㎜/7days로 균사 생장속도 및 균사밀도가 가장 우수하였고, 첨가하지 않은 대조구의 경우도 68.3㎜/7days를 나타내었다. 이 결과는 큰느타리의 균사생육에 있어서 무기염류의 요구도는 타 영양원에 비해 크지 않는 것으로 생각되었다.
- 배양 6일까지는 두 배지 모두 건조 균사체량이 비슷하게 증가하는 경향을 나타내다가 배양 7일째부터 기본배지에서는 균사체량이 약간 감소하는 경향이었고, 최적배지는 8일까지 계속 증가하였다. 각 배지에서의 최대 건조 균사체량은 기본배지의 경우, 배양 6일째 약 15g/l이었고, 최적배지는 배양 8일째 약 20g/l를 나타내어 최적배지는 기본배지에 비해 약 25% 정도 높은 균사체 생산수율을 보였다.
- 부재료인 미강과 밀기울을 각각 30%(v/v) 첨가하였을 때 균사생장이 가장 좋았으며, 도토리박의 경우는 20%(v/v)에서 가장 좋았으나 미강과 밀기울에 비하여 균사생육과 밀도가 좋지 않았다.
- 3㎜/7days를 나타내었다. 이 결과는 큰느타리의 균사생육에 있어서 무기염류의 요구도는 타 영양원에 비해 크지 않는 것으로 생각되었다. 이는 유기태 질소원인 malt extract나 yeast extract 등에도 미량의 무기염류 성분이 함유되어 있어 그 영향이 적은 것으로 판단되었다.
- 이상의 최적배지조성 검토의 결과로부터 새로운 큰느타리 균사배양용 최적배지의 조성은 soluble starch 30g/l, malt extract 2.5g/l, yeast extract 2.5g/l, CaCl2·2H2O 0.5g/l 이었다.
- 최적 질소원 선발 시험결과(Table 5) 유기태 질소원인 malt extract와 yeast extract를 혼합하여 첨가하였을 때 67.8㎜/7days로 가장 빠른 균사 생육속도를 나타내었으며, 그 밖에 malt extract, yeast extract 및 peptone을 혼합하여 첨가한 경우에도 비교적 균사생장이 양호하였다. 또 유기태 질소원과 무기태 질소원을 혼합하여 첨가하였을 경우, 균체생육에 큰 영향을 미치지 않아 무기태 질소원의 영향이 growth of Pleurotus eryngii 유기태 질소원보다 상대적으로 적다는 사실을 알 수 있었다.
- 또 유기태 질소원과 무기태 질소원을 혼합하여 첨가하였을 경우, 균체생육에 큰 영향을 미치지 않아 무기태 질소원의 영향이 growth of Pleurotus eryngii 유기태 질소원보다 상대적으로 적다는 사실을 알 수 있었다. 최적 질소원으로 선정된 malt extract와 yeast extract의 최적 농도를 조사하기 위하여 이 두가지 질소원을 1 : 1의 무게비로 총 0.25~3.3%(w/v)의 농도로 배지를 조제하여 배양한 결과, Fig. 4에서와 같이 2%(w/v)에서 최대 균사체량을 보였으나 0.5% 이상의 모든 농도에서 큰 차이를 보이지 않았다.
- 최적배지에서의 비생육 속도는 0.334day-1이었고 기본배지에서는 0.331 day-1로 균사 생육속도에서는 큰 차이가 없음을 알 수 있었다.
- 큰느타리의 균사 생육에 영향을 미치는 비타민의 효과를 검토한 결과, Table 7에서 보는 바와 같이 대조구와 비교해 볼 때, 첨가구 모두 거의 영향을 미치지 않는 것으로 나타났다.
- 톱밥수종에 따른 균사생육 정도를 column test로 조사한 결과, Fig. 7에서 보는 바와 같이 참나무 톱밥이 약 95㎜/25days로 가장 빨랐으며, 아카시아, 뽕나무, 버드나무 및 포플라는 모두 비슷한 경향을 보였으며, 소나무 톱밥이 약 44㎜/25days로 가장 낮은 균사 생육속도를 나타내었다. 이는 김 등(1997b)이 보고한 톱밥수종에 따른 큰느타리버섯 균사생장의 결과와 차이가 있었으며, 이는 동일 계통의 수종이라도 종류에 따라 톱밥의 물리성 및 구성성분의 차이로 인하여 나타나는 결과로 판단되었으며, 차후 이에 대한 면밀한 검토가 필요한 것으로 생각되었다.
- 한편, 배양일수에 따른 균사체 생육의 변화를 조사하기 위하여 MYP broth에서 균사체를 배양하면서 검토한 결과, 균체량이 배양 3일째까지는 완만한 증가를 보이다가 배양 3일 이후부터 빠르게 생육하는 대수기의 전형적인 형태를 나타내었다. 최대 균사체량은 배양 7일째에 약 13g/l이었으며, 그 이후에는 큰 변화가 없었다(Fig.
- 한편, 최적 수분함량을 조사한 결과, Table 10에서와 같이 수분함량이 80%까지 증가할수록 균사생장은 빨랐으나, 균사밀도는 70%(v/v) 이상부터 감소하였다. 따라서 균사생육과 밀도를 고려하여 최적 수분함량은 70%(v/v)로 판단되었다.
후속연구
- 7에서 보는 바와 같이 참나무 톱밥이 약 95㎜/25days로 가장 빨랐으며, 아카시아, 뽕나무, 버드나무 및 포플라는 모두 비슷한 경향을 보였으며, 소나무 톱밥이 약 44㎜/25days로 가장 낮은 균사 생육속도를 나타내었다. 이는 김 등(1997b)이 보고한 톱밥수종에 따른 큰느타리버섯 균사생장의 결과와 차이가 있었으며, 이는 동일 계통의 수종이라도 종류에 따라 톱밥의 물리성 및 구성성분의 차이로 인하여 나타나는 결과로 판단되었으며, 차후 이에 대한 면밀한 검토가 필요한 것으로 생각되었다.
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