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세균 Stenotrophomonas sp. KTGBP10의 식물 바이러스 감염억제효과

Inhibitory Effects of Bacterial Isolate Stenotrophomonas sp. KTGBP10 against Viral Infection to Tobacco Plants

한국연초학회지 = Journal of the Korean society of tobacco science, v.26 no.2 = no.52, 2004년, pp.79 - 84  

김영숙 (충남대학교 농과대학 농생물학과) ,  황의일 (KT&G 중앙연구원) ,  오정훈 (KT&G 중앙연구원) ,  김갑식 (KT&G 중앙연구원) ,  여운형 (KT&G 중앙연구원)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

During the screening of antiviral substances having inhibitory effects on tobacco mosaic virus (TMV) infection to tobacco plants, we found a bacterial isolate KTGBP10, which was identified as a Stenotrophomonas sp., strongly inhibited the infection of TMV. When the culture filtrate from KTGBP10 was ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 이러한 식물 바이러스 병의 방제를 목적으로 많은 바이러스 저해제가 고등 식물(Hudson 등, 1990; Stevens 등, 1992; Ito 등, 1992), 미생물(Klement 등, 1966; Yeo 등, 1997), 그리고 버섯류(Aoki 등, 1993)등에서 탐색되었으며 몇몇의 활성성분이 분리되고 그 특성이 연구된 바 있다, 그러나 효과를 갖는 대부분의 화합물이 단백질 또는 다당체인 관계로 대량생산이나 전신 이행효과의 결여로 실제포장에서의 적용에 한계를 갖고 있다. 따라서 보다 활성이 우수하고 전신이행효과를 갖는 항바이러스 물질을 찾기 위하여 자연에서 분리한 곰팡이, 방선균, 세균 등의 TMV 감염억제활성을 조사하던 중 우수한 항바이러스 활성과 전신이행효과를 갖는 세균 KTGBP10 균주를 선발하였다. 본 논문은 KTGBP10 균의 동정 및 그 배양액의 TMV, CMV, PVY등에 대한 항바이러스 활성에 대하여 서술하고자 한다.
  • 따라서 보다 활성이 우수하고 전신이행효과를 갖는 항바이러스 물질을 찾기 위하여 자연에서 분리한 곰팡이, 방선균, 세균 등의 TMV 감염억제활성을 조사하던 중 우수한 항바이러스 활성과 전신이행효과를 갖는 세균 KTGBP10 균주를 선발하였다. 본 논문은 KTGBP10 균의 동정 및 그 배양액의 TMV, CMV, PVY등에 대한 항바이러스 활성에 대하여 서술하고자 한다.
  • 식물 바이러스병 방제제 개발을 목표로 TMV 감염억제활성을 갖는 미생물을 탐색하던 중 활성이 우수한 KTGBP10 균을 선발하였다. 선발 균은 그람음성의 간상형 세균으로 염기서열 분석에 따라 Stenotrophomonas sp.
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참고문헌 (9)

  1. Anzai, Y., Park, J. Y., Wakabayashi, H. and Oyaizu, H. (2000) 'Phylogenetic affiliation of the pseudomonads based on 16S rRNAsequence, Int. J. Syst. Evol, Microbial. 50: 1563-1589 

  2. Aoki, M., Tan, M., Fukushima, A., Hieda, T.,Kubo, S., Takabayashi, M., Ono, K. and Mikami, Y. (1993) Antiviral substances with systemic effects produced by basidiomycetes such as Fomes fomentarius. Biosci. Biotech. Biochem. 57: 278-282 

  3. Hudson, J. B. (1990) Antiviral compounds from plants. CRC Press Inc. Boca Raton, Florida,USA. 200pp 

  4. Ito, Y., Seki, I., Tanifuji, S. and Hiramatsu, A.(1992) Inhibition of protein synthesis by antiviral protein from Yucca recurvifolia leaves. Biosci. Biotech. Biochem. 57: 518-519 

  5. Klement, Z., Kiraly, J. and Pozsar, I. (1966) Suppression of virus multiplication and local lesion production in tobacco following inoculation with a aprophytic bacterium. Acta Phytopathol. Acad. Sci. Hung. 1: 11-18 

  6. Maidak, B. L., Olsen, G. J., Larsen, N., Overbeek, R., McCaughey, M. J. and Woese, C. (1997) The RDP (Ribosomal Database Project). Nucl. Acids Res. 25: 109-111 

  7. Stevens, W. A. and Reynolds, T. (1992) Plant virus inhibitors from members of the Polygonaceae. Biomedical Letters. 47:269-273 

  8. Yeo, W. H., Kim, Y. H., Park, E. K. and Kim, S. S. (1997) Physico chemical characteristics and antiviral activity of ASA, an antibiotic produced by Actinomycetes B25. Korean J. Plant Pathol. 13: 63-68 

  9. Yumoto, I., Yamazaki, K., Sawabe, T., Nakano, K., Kawasaki, k., Ezura, Y. and Shinano, H.(1998) Bacillus hortisp. nov., a new Gram negative akaliphilic Bacillus. Int. J. Sys. Bacteriol. 48: 565-571 

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