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제안 방법
- BAC 공정은 직경 30 cm, 층 높이 250 cm인 3개의 아크릴 컬럼에 석탄계(F-400, Calgon), 야자계(삼천리 1급) 및 목탄계(Pica biol, Pica) 활성탄 신탄을 충진하여 공탑체류시간 (empty bed contact time: EBCT) 15 분, 수리학적 부하율(hydraulic loading rate: HLR) 10 m3/m2 - hr로 운전하였으며, 활성탄의 역세척은 평균 주 1회 정도로 하였다. 또한, 실험에 사용된 초기 입상활성탄의 물성치와 세공분포롤 Table 2와 Fig.
- BAC에 부착된 종속영양 세균의 생체량(biomass)은 BAC 습중량 1 g을 건조시킨 후 37 kHz, 190 W로 3분 동안 초음파 처리(DHA1000, Branson, U.S.A.)하여 세균을 탈리시킨 후 R2A agar(Difco) 평판배지에 시료 1 mL 를 단계적으로 희석 도말한 후 25℃ 배양기에서 2주간 배양하여 습중량 1 g 당 colony 형성 세균수로 표시하였다.
- DOC(dissolved organic carbon)^- 0.2 pm 멤브레인 필터 (Sartorius, Germany)로 여과한 후 그 여액을 TOC analyzer (Sievers 820, Sievers, U.S.A.)로 분석하였으며, 수중의 동화 가능한 유기물을 측정하는 AOC(assimilable organic carbon) 는 Spirillum strain NOX(ATCC 49643)와 Pseudomonas fluorescens strain P-17(ATCC 49642)를 시료수에 접종하여 형성된 colony를 측정하였으며, 두 균주의 수율계수는 각각 4.1x101 1.2*10 CFU/pg of C as acetate로 하였다.26
- 폐수처리 공정 중 생물학적 처리공정의 미생물 군집 분석에 FISH 기법을 이전부터 많이 이용하고 있으며, '*끼 상수처리 분야에서는 주로 배 . 급수관망에서 미생물 재성장(regrowth)에 의해 형성된 생물막 특성분석23꺼) 과 막 여과 공정 증 막 표면에서 막오염을 유발하는 미생물의 특성분석을 위해 사용하였다.25
- 먼저 BAC 습중량 1 g을 건조시킨 훅 초음파 처리하여 세균을 탈리시킨 다음 시료를 0.2 gm polycarbonate 멤브레인 필터(Millipore)로 여과하였다. 여과 후 Ixphosphate bufferd saline(PBS, pH 7.
- 본 실험은 파일롯 규모의 활성탄 공정을 운전하면서 GAC 공정에서부터 BAC 공정으로 전환 후 활성탄 재질별로 유기물 제거능과 미생물 군집분포 특성을 조사하여 다음과 같은 결론을 얻을 수 있었다.
- 본 연구에서는 1일 최대 100톤 처리 용량의 pilot-plant를 이용하여 BAC 공정에서의 활성탄 재질별로 운전기간에 따른 유기물 제거능과 미생물 생체량, 생산력 둥 부착 미생물의 분포상태를 조사하였고, 또한, FISH 방법을 이용하여 BAC 부착세균의 군집구조를 분석하였다.
- 5에 나타내었다. 부착세균의 생체량은 기존 평판배양법 (HPC), FISH를 이용한 eubacteria(EUB) 및 DAPI를 이용한 TDC를 평가하였다. 그래프에서 EUB는 막대그래프의 검은 부분으로 표시하였으며, DAPI는 막대그래프의 검은 부분과 흰 부분이 합쳐진 막대그래프 전체로 표시하였다.
- 세균의 동정은 형성된 colony의 형태학적 특징을 관찰하여서로 다른 colony를 R2A 배지에 획선 도말하여 순수 분리하였다. 순수 분리된 세균은 API 20 NE Kit(bioMerieux,France) 및 생화학적 실험을 실시하고 Bergey's manual의 분류체계에 따라 속 혹은 종명까지 분류 동정하였다.
- 세균의 생산력 (bacterial production)은 H-thymidine이 DNA 에 흡수되는 정도로 구하였다. 먼저 BAC 습중량 1 g을 초음파 처리하여 세균을 탈리시킨 시료 2 mL에 200 nM [methyl- 3H] thymidine 용액(specific activity: 40 — 50 Ci/mmol) 1 mL 와 200 nM cold thymidine 용액 1 mL를 첨가한 후 교반배양기에서 in situ 조건으로 4시간 배양하였다.
- 순수 분리된 세균은 API 20 NE Kit(bioMerieux,France) 및 생화학적 실험을 실시하고 Bergey's manual의 분류체계에 따라 속 혹은 종명까지 분류 동정하였다.32)
- 2 nm 멤브레인 필터로 여과하였다. 이 여지를 vial에 넣고 건조시킨 후 ethyl acetate 1 mL와 10 mL의 scintillation cocktail(Aquasol-2, Packard Co.)을 주입하여 liquid scintillation analyzer(HP, 2500 TR/AB, U.S.A.)로 방사선량을 측정하였다. 얻어진 DPM(disintergrate per minute) 값으로부터 Parsons 등에 의한 식을 이용하여 incorporation된 thymidine의 양을 계산하였다31)
- 01% SDS, 20 mM Tris/HCl, X% Formamide) 8 uL 를 첨가하여 46 ℃ 에서 90분 정도 반응시킨 후 water bath (SB-9, Eyela, Japan)로 미리 가열시킨 washing buff&로 48 ℃ 에서 15분 동안 세정하여 공기 중에서 건조시켰다. 형광현미경 (Axioskop 2 plus, Carl Zeiss, Germany) 과 scanning confocal laser microscopy(LSM 510, Carl Zeiss, Germany)# 사용하여 800배 및 400배의 배율에서 field내에 나타난 세균 등을 10번 이상 계수하여 그 평균값을 사용하였다.
- 있다. 후오존 처리는 1 mg O3/mg DOC의 농도로 오존을 투입하였고, 접촉시간은 20분으로 고정하여 운전하. 였다.
대상 데이터
- 본 연구에 사용된 pilot-plant는 최대 100 nf/일 처리용량으로 전오존, 응집-침전-급속여과, 후오존, BAC 공정으로 구성되어져 있다. 후오존 처리는 1 mg O3/mg DOC의 농도로 오존을 투입하였고, 접촉시간은 20분으로 고정하여 운전하.
- 본 연구에 사용된 probe들은 Eubacteria와 결합하는 EUB338, a group과 결합하는 ALF lb, p group과 결합하는 BET 42a, y group과 결합하는 GAM 42a, Cytophaga-Flavobacterium(CF) group과 결합하는 CF 319a, 그리고 Gram(+) High G+C Con- tent와 결합하는 HGC probe이며, 이들 probe의 sequence 및 specificity를 Table 3에 나타내었다.
이론/모형
- )로 방사선량을 측정하였다. 얻어진 DPM(disintergrate per minute) 값으로부터 Parsons 등에 의한 식을 이용하여 incorporation된 thymidine의 양을 계산하였다31)
- 총 세균수는 nucleotide에 삽입되어 결합하는 DAPI(4, 6- diamidino-2-phenylindole-2HCl, sigma, U.S.A)로 염색하여 직접 계수하는 DAPI법을 이용하여 측정하였다.
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