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혐기-무산소-호기 반응조내 질화세균군의 변화
Changes of Nitrifying Bacterial Populations in Anaerobic-Anoxic-Oxic Reactors 원문보기

대한환경공학회지 = Journal of Korean Society of Environmental Engineers, v.27 no.2, 2005년, pp.138 - 144  

박종웅 (대구한의대학교 보건환경학과) ,  이영옥 (대구대학교 생명과학부) ,  고준혁 (대구한의대학교 보건환경학과) ,  라원식 (대구한의대학교 보건환경학과) ,  임욱민 (대구한의대학교 보건환경학과) ,  박지은 (대구대학교 생명과학부)

초록
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본 연구는 질화작용에 관여하는 Nitrosomonas sp. 등의 암모니아산화세균과 Nitrobacter sp. 등 아질산산화세균이 $A^2/O$ Pilot 장치의 혐기조, 무산소조, 호기조에서 어떤 양상으로 변화하는지를 조사하는데 있다. 혼합액의 부유 질화세균군과 폐타이어로 성형 제조된 입상담체에 부착된 질화세균군은 FISH법으로 분석하였다. Pilot 장치의 질산화속도는 $1.97{\sim}2.98mg\;N/g\;MLVSS{\cdot}hr$의 값을 보였다. 각 반응조에서 총 부유 세균수중 암모니아 산화세균군 (NSO로 검출된 세균군)이 차지하는 비율은 호기조 < 무산소조 < 혐기조 순이었으나, 이와 반대로 아질산 산화세균(NIT로 검출된 세균)이 차지하는 비율은 혐기조 < 무산소조 < 호기조 순이었다. 생물막의 두께와 건조밀도 및 담체 무게당 부착된 미생물량은 각각 $180{\sim}188\;{\mu}m$, $38.5{\sim}43.9\;mg/cm^3$, $29.4{\sim}32.5\;mg/g$ 이었고, 담체에 부착된 총세균수 중 질화세균이 차지하는 비율은 NSO(3.2%)와 NIT(2.8%)가 거의 비슷하였으나, 각 반응조에 존재하는 부유성 질화세균, 즉 NSO($22.8{\sim}28.4%$)와 NIT($17{\sim}26%$)에 비해서는 부착성 질산화 세균의 비가 현저히 낮았다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was carried out to investigate the changes of nitrifying bacterial populations including Nitrosomonas sp. and Nitrobacter sp. in $A^2/O$ pilot plant with the configuration of anaerobic-anoxic-oxic reactors. The suspended nitrifying bacterial populations in mixed liquor and thos...

주제어

AI 본문요약
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제안 방법

  • Table 2는 pilot 장치의 운전조건을 나타내었다. Table 2와 같이 유입유량, 내부순환율 및 슬러지 반송율은 각각 24 m3/day, 150% 및 50%로 운전하였고, SRT는 18일이었다. 호기조의 공기주입량은 0.
  • 각 반응조에서 채취한 액상시료인 mixed liquor는 곧바로 아래의 방법으로 고정하였고 담체에 부착된 세균은 담체를 멸균증류수에 넣고 5회/sec 속도로 흔들어 세균을 탈리시킨 후 다른 mixed liquor와 동일한 방법으로 행하였다.
  • 담체의 부착미생물량 측정은 Fig. 2에서 제시한 측정방법7)에 따라 조내의 담체를 10개씩 5개의 그룹으로 나누어 채취하여 미생물이 부착된 매체의 표면수를 제거한 후 부착된 습윤무게를 측정하고 초음파 세정과 알칼리처리를 병행하여 탈리시킨 후 건조하여 미생물의 건조무게와 함수율을 측정 하였다. 측정 한 부착미 생 물의 젖은무게 와 건조무게 로부터 Park, Ganczarczyk and Zahid 등7~9)이 제시한 계산식을 이용하여 생물막두께, 생물막 건조밀도 그리고 매체 단위면적당 부착된 미생물량을 산정하였다.
  • 등의 암모니아산화세균과 Nitrobacter sp. 등의 아질산산화세균이 A2/O pilot 장치의 혐기조, 무산소조, 호기조에서 어떤 양상으로 변화하는지를 FISH 법으로 분석하고자 한다.
  • 056 mM NaCl]은 미리 예열시켜 사용하였다. 세척 후, 총세균수 측정을 위한 DAPI (4', 6-diamidino- 2-phenylindole) 염색 (0.33 μg/mL)을 5분간 암실에서 실행 한 후, 형광현미 경(Axioplan 2, Zeiss)으로 관찰 · 계수하였다.
  • 5 mL PBS에 resuspension시킨 후 teflon-coated slide class(Cel-line)에 적당량(5-8μL)의 시료를 올려놓고 공기 중에 건조시켰다. 시료가 slide 에 잘 접착되었다고 (immobilized) 판단되면 50%, 80%, 99%의 ethylalcohol에 3분간 차례로 담가 탈수시킨 후 다시 공기 중에 건조시켰다.
  • 1, BOD 48, 460 mg/L, COD 73,440 mg/L, T-N 2,181 mg/L, T-P 326 mg/L이었다. 외부탄소원의 주입기준은 용해성 유기물이 고농도인 산발효액을 희석수와 함께 혼합한 후 희석된 산발효액의 SCOD와 무산소조의 NO3-N비가 3.8이 되도록 매일 240 L씩 정량 주입하였다.
  • 2에서 제시한 측정방법7)에 따라 조내의 담체를 10개씩 5개의 그룹으로 나누어 채취하여 미생물이 부착된 매체의 표면수를 제거한 후 부착된 습윤무게를 측정하고 초음파 세정과 알칼리처리를 병행하여 탈리시킨 후 건조하여 미생물의 건조무게와 함수율을 측정 하였다. 측정 한 부착미 생 물의 젖은무게 와 건조무게 로부터 Park, Ganczarczyk and Zahid 등7~9)이 제시한 계산식을 이용하여 생물막두께, 생물막 건조밀도 그리고 매체 단위면적당 부착된 미생물량을 산정하였다.

대상 데이터

  • 2) Gene probes; 본 연구에서 사용한 gene probe인 NSO190와 NIT3은 Table 3과 같이 주문 제작(TaKaRa, Japan)하여 사용하였으며 각 probe에 붙인 형광물질은 CY3(indocarbocyanine dye) 이다.
  • 1에 나타내었다. Fig. 1에서 보듯이 생물반응조는 혐기조, 무산소조, 호기조 및 내부순환조로 구성되어 있으며, 유효용적은 각각 1.4 m3, 2.0 m3, 2.5 m3 및 0.6 m3로 제작하였다. 호기조에는 크기, 평균무게 및 비표면적이 각각 4~10 mm, 0.
  • 본 실험에 사용된 A2/O pilot 장치는 Fig. 1에 나타내었다. Fig.
  • 본 실험에서는 2003년 5월 20일부터 2003년 9월 15일까지 약 115일간 Table 1에 제시한 Y 하수처리장 1차 침전지 유출수를 유입수로 사용하여 운전하였으며, 유입수의 수질은 BOD와 COD가 39.1-62.9 (51.2) mg/L와 62.8-92.6 (79.2) mg/L이었고 COD/T-N비와 SCOD/T-N비가 3.4 ~4.3 (3.9), 2.0-2.8 (2.4)로 낮은 값을 보였다. Table 2는 pilot 장치의 운전조건을 나타내었다.

데이터처리

  • 4) 질화세균 및 총세균수 산출; 질화세균군의 크기는 신뢰성 있는 결과를 얻기 위해 각 반응조의 시료 당, 최소한 15개 이상의 임의적인 fields안에 존재하는 해당 세균을 계수하여 얻어진 평균값을 역시 동일한 fields의 DAPI로 염색된 세균수(총세균수)에 대한 비율(%)로 산출하였다.6)

이론/모형

  • 반응조 내 수질조사 항목은 수온, pH, DO, ORP, MLSS, NH4+-N, NO2-N 및 NOj-N이었으며, 측정방법은 환경오염공정시험법10)과 Standard Methods11)의 절차에 따라 분석하였다.
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참고문헌 (18)

  1. 박종웅, 송영해, '오 . 폐수의 고도처리를 위한 호기성 침지형 생물막 여과장치의 개발,' 대한환경공학회지, 20, 305-314(1998) 

  2. Metcalf & Eddy, Inc., Wastewater Engineering: Treatment Disposal Reuse, 3rd ed., McGraw-Hill Book Co., New York, 663-759(1991) 

  3. Amann, R., Ludwig, W., and Schleifer, K. H., 'Phylogenetic and in situ detection of individual microbial cells without cultivation,' Microbial. Rev., 59, 143-169(1995) 

  4. Wilderer, P. A., Bungartz, H. J., Lemmer, H., Wagner, M., Keller, J., and Wuertz, S., 'Modem scientific methods and their potential in wastewater science and technology,' Water Res., 36, 370-393(2002) 

  5. Wagner, M., Rath, G., Koops, H.-P., Floos, J., and Amann, R., 'In situ analysis of nitrifying bacteria in sewage treatment plants,' Water Sci. Technol., 34, 237-244(1996) 

  6. Glockner, F. O., Fuchs, B. M., and Amann, R., 'Bacterioplankton compo sitions of lakes and oceans: a first comparison based on fluorescence in situ hybridization,' Appl. Environ. Microbiol., 65, 3721-3726(1999) 

  7. 박종웅, 송주형, '폐타이어로 성형제조된 부정형 과립담체에 부착된 미생물의 측정방법,' 대한상하수도학회지, 17, 255-260(2003) 

  8. Park, J. W. and Ganczarczyk, J. J., 'Gravity separation of biomass washed-out from an aerated submerged filter,' Environ. Technol., 15, 945-955(1994) 

  9. Zahid, W. M. and Ganczarczyk, J. J., 'Suspended solids in biological filter effluents,' Water Res., 24, 215-220 (1990) 

  10. 환경교육연구회, 환경오염공정시험법(수질편), 대학서림, 서울(2000) 

  11. APHA, AWWA, WEF, Standard Method for Examination of Water and Wastewater, 18th ed., Washington, D.C.(1992) 

  12. Schramm, A., DE Beer, D., Wagner, M., and Amann, R., 'Identification and activities in situ of nitrosospira and nitrospira sp. as dominant populations in a nitrifying fluidized bed reactor,' Appl. Environ. Microbiol., 64, 3480-3485(1998) 

  13. U.S.EPA, Manual Nitrogen Control, EPA/625/R-93/010, Washington, D.C.(1993) 

  14. Randall, C. W., et al., Design and Retrofit of Wastewater Treatment Plants for Biological Nutrient Removal, Technomic Publishing Co. Inc (1992) 

  15. Madigan, T. M., Martino, J., and Parker, J., Block Biology of Microorganisms, Prentice Hall Publisher(2003) 

  16. Hunik, J. H., Meijer, H. J. G., and Tramper, J., 'Kinetics of nitrobacter agilis at extreme substrate, product and salt concentrations,' Appl. Microbiol. Biotechnol., 40, 442-448(1993) 

  17. Hunik, J. H., Meijer, H. J. G., and Tramper, J., 'Kinetics of nitrosomonas europaea at extreme substrate, product and salt concentrations,' Appl. Microbiol. Biotechnol., 37, 802-807(1992) 

  18. Schramm, A., Larsen, L. H., Revsbech, N. P., Ramsing, N. B., Amann, R., and Schleifer, K. H., 'Structure and function of a nitrifying biofilm as determined by in situ hybridization and the use of microelectrodes,' Appl. Environ. Microbiol., 62, 4641-4647(1996) 

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