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구름버섯균 KN9522에서 degenerate primer를 이용한 Mn-Peroxidase 동위효소 유전자들의 PCR 클로닝
PCR Cloning of Genes Encoding the Mn-Peroxidase Isozyme Family from Trametes versicolor KN9522 Using Degenerate Primers 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.42 no.1, 2006년, pp.77 - 81  

전상철 (강릉대학교 자연과학대학 생물학과) ,  김규중 (강릉대학교 자연과학대학 생물학과)

초록
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구름버섯균 KN9522로부터 분리한 Mn-peroxidase 동위효소 CVMP1, CVMP2, CVMP3 및 CVMP5를 코딩하는 게놈유전자를 분리하기 위해 4개의 동위효소 N-말단아미노산서열을 기준으로 제작한degenerate primer들이 사용되었다. 하나를 제외한 3개의 동위효소들은 그에 대응되는 염기서열 900정도 되는 PCR산물 (cmp1, cmp2 및 cmp5)을 얻었다. NCBI의 BLAST 프로그램을 사용하여 PCR산물들의 염기서열을 분석한 결과, cmp1, cmp2 및 cmp5는 구름버섯균 PRL572로부터 분리한 유전자 MPG-I (등록번호 Z30668) 및 PGV-II(등록번호 Z54279)와 유사하였다. cmp1과 cmp2는 MPG-I유전자의 염기서열과 각각 77%및 95%의 상동성을 보였고 cmp5는 PGV-II 염기서열과 88%의 상동성을 보였다. 본 실험을 통하여 저자들은 Mn-peroxidase 동위효소계의 아미노산 서열을 기준으로 제작된 degenerate primer들을 사용하여 게놈 DNA조각을 분리할 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Degenerate primers corresponding to the sequences of the N-terminal regions of Mn-peroxidase isozymes were used to isolate the genomic fragments encoding the isozymes of Mn-peroxidase, CVMP1, CVMP2, CVMP3 and CVMP5 from the white-rot fungus Trametes versicolor KN9522. Three isozymes except one gave ...

주제어

AI 본문요약
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제안 방법

  • Korea)사에 의뢰하여 합성하였다. 5, -primer들은 정제된 각 동위효소의 N-말단 아미노산 서열의 코돈을 바탕으로 하여 총 4개(CVMP1, CVMP2 및 CVMP5)의 degenerate primer를 제작하였으며(9, Table 1), 3'- piimer는 GenBank에 등록되어 있는 Trametes versicolor Mn- peroxidase 및 lignin peroxidase 유전자 family를 검색하여 cDNA 서열상에서 고도로 보존된 서열부위 2곳을 대상으로 2개(CVMPR3 및 CVMPR4)의 reverse degenerate primer를 제작하였다(Fig. 1). 합성된 모든 degenerate primer는 각 primer의 mole %를 높이기 위해 degeneracy가 4이상인 아미노산은 혼합염기 대신 inosine을 사용하였다.
  • PCR 실행 조건은 PTC-150 MiniCyclerTM (MJ Research, USA)를 이용하여 94℃에서 4분간 pre-denaturation한 후 95℃에서 40초간 denaturation하였다. Annealing단계는 각 degenerate primer의 melting 온도에 따라서 annealing 온도를 가감하였고 반응시간은 모두 45초로 실행하였다. Extensione 72℃에서 1분간 실시하고 총 33cycle을 반응하였으며 final extensione 72℃로 5분간 실시하였다.
  • PCR 반응 후 1.2% agarose gel 전기영동을 통하여 DNA 단편 들의 증폭을 확인한 다음, genomic DNA상에서 각 degenerate primer에 의한 예상 DNA 증폭크기와 일치하는 DNA 단편들을 gel에서 잘라내어 정제하였다. 정제된 DNA 단편들은 염기서열을 분석하기 위해 pGEM-T Easy Vector System (Promega, US A) 을 이용하여 제조사의 설명에 따라 TA-cloning한 후 Escherichia coli JM109 균주에 형질전환하였다.
  • PCR 반응조성은 0.5 ml PCR tube에 genomic DNA 40 ng과 degenerate primer 50-100 pmole을 혼합한 후, Tag DNA polymerase 1 U, dNTP 250 gM, KC1 40 mM, MgCl2 1.5 mM 되 게 20 μl의 10 mM Tris-HCl (pH 9.0)을 첨가하였다. PCR 실행 조건은 PTC-150 MiniCyclerTM (MJ Research, USA)를 이용하여 94℃에서 4분간 pre-denaturation한 후 95℃에서 40초간 denaturation하였다.
  • 정제된 DNA 단편들은 염기서열을 분석하기 위해 pGEM-T Easy Vector System (Promega, US A) 을 이용하여 제조사의 설명에 따라 TA-cloning한 후 Escherichia coli JM109 균주에 형질전환하였다. PCR 증폭산물이 삽입된 형 질 전환체를 선별하여 pGEM-T Easy Plasmid를 추출, 정제한 다음 ABI PRISM 377 Automatic DNA Sequencer (Applied Biosystems, SA)를 이용하여 PCR 증폭산물의 염기서열을 결정 하였다. 결정된 염기서열은 NCBI의 Blast 검색프로그램을 통해 상동성 검색을 실시하였으며, Clustal X (Version 1.
  • PCR 증폭산물이 삽입된 형 질 전환체를 선별하여 pGEM-T Easy Plasmid를 추출, 정제한 다음 ABI PRISM 377 Automatic DNA Sequencer (Applied Biosystems, SA)를 이용하여 PCR 증폭산물의 염기서열을 결정 하였다. 결정된 염기서열은 NCBI의 Blast 검색프로그램을 통해 상동성 검색을 실시하였으며, Clustal X (Version 1.81)를 이용하여 multiple sequence alignment# 실시하였다.
  • 배양된 균사체는 멸균된 3차 증류수로 여러 번 세척 후 수분을 제거한 뒤 막자사발에 균사체와 액체질소를 넣고 급히 냉동 시킨 상태에서 마쇄하였다. 균사분말은 Zolan과 Pukkila (1986)의 방법을 변형하여 DNA를 추출하였다. 균사분말 400 mg 당 400)11의 DNA추출 완충제 (SDS 3%, EDTA 50 mM, Tris-HCl pH 7.
  • versicolor KN9522 (12, 등록번호 AY686706)를 사용하였다. 본 균주의 배양은 맥아 한천 평판배지(2% malt extract, 2% glucose, 0.1% peptone, 2% agar)에 접종하여 25℃에서 일주일간 배양한 후 균사조각을 잘라 내 망간이 제한된 LNHC (Low Nitrogen High Carbon)배지에 접종하여 일주일간 정치배양하였다. 배양된 균사체는 마쇄하여 현탁액을 MnSQ가 80mg/L로 조절된 250ml LNHC 배지에 10%(v/v)로 접종하여 25℃에서 9일간 120 rpm으로 진탕 배양하였다.
  • 본 실험실에서는 목재 부후균인 Trametes versicolor KN9522 로부터 정제된 Mn-peroxidase 동위효소 4종을 대상으로 degenerate primer를 이용한 PCR방법으로 Mn-peroxidase 동위효소를 코딩하는 게놈유전자를 탐색하여 보고된 유전자와 비교분석하였다.
  • 2% agarose gel 전기영동을 통하여 DNA 단편 들의 증폭을 확인한 다음, genomic DNA상에서 각 degenerate primer에 의한 예상 DNA 증폭크기와 일치하는 DNA 단편들을 gel에서 잘라내어 정제하였다. 정제된 DNA 단편들은 염기서열을 분석하기 위해 pGEM-T Easy Vector System (Promega, US A) 을 이용하여 제조사의 설명에 따라 TA-cloning한 후 Escherichia coli JM109 균주에 형질전환하였다. PCR 증폭산물이 삽입된 형 질 전환체를 선별하여 pGEM-T Easy Plasmid를 추출, 정제한 다음 ABI PRISM 377 Automatic DNA Sequencer (Applied Biosystems, SA)를 이용하여 PCR 증폭산물의 염기서열을 결정 하였다.
  • 54 volume의 isopropanol을 첨가한 뒤 원심 분리하여 상등액을 제거하고 침전된 genomic DNA만 취하였다. 침전된 genomic DNA는 멸균 3차 증류수로 녹여 분광광도계를 이용하여 DNA농도를 측정한 후 PCR에 이용하였다.

대상 데이터

  • 배양된 균사체는 마쇄하여 현탁액을 MnSQ가 80mg/L로 조절된 250ml LNHC 배지에 10%(v/v)로 접종하여 25℃에서 9일간 120 rpm으로 진탕 배양하였다. 배양을 위해 사용된 배지성분은 모두 Difco사 제품을 사용하였다.
  • 사용된 균주는 본 실험실에서 분리한 T. versicolor KN9522 (12, 등록번호 AY686706)를 사용하였다. 본 균주의 배양은 맥아 한천 평판배지(2% malt extract, 2% glucose, 0.
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참고문헌 (13)

  1. An, S., K.P. Park, H.T. Choi, K.J. Kim and K. Kim. 2003. Cloning of genomic DNAs of Trametes versicolor acting as autonomously replicating sequences in Saccharomyces cerevisiae. J. Microbiol. 40, 245-247 

  2. Collins, P.J., M.M. O'brien and A.D.W. Dobson. 1999. Cloning and characterization of a cDNA encoding a novel extracellular peroxidase from Trametes versicolor. Appl. Environ. Microbiol. 65, 1343-1347 

  3. Irie,T., Y. Honda, H.C. Ha, T. Watanabe and M. Kuwahara. 2000, Isolation of cDNA and genomic fragments encoding the major manganese peroxidase isozyme from the white rot basidiomycete Pleurotus ostreatus. J. Wood Sci. 46, 230-233 

  4. Johansson, T., and P.O. Nyman. 1993. Isozymes of lignin peroxidase and manganese(II) peroxidase from the white-rot basidiomycete Trametes versicolor : (I) Isolation of enzyme forms and characterization of physical and catalytic properties. Arch. Biochem. Biophys. 300, 49-56 

  5. Johansson, T., K.G. Welinder, and P.O. Nyman. 1993. Isozymes of lignin peroxidase and manganese(II) peroxidase from the whiterot basidiomycete Trametes versicolor : (II) Partial sequences, peptide maps, and amino acid and carbohydrate compositions. Arch. Biochem. Biophys. 300, 57-62 

  6. Johansson, T., and P.O. Nyman. 1996. A cluster of genes encoding major isozynes of lignin peroxidase and manganese peroxidase from the white-rot fungus Trametes versicolor. Gene 170, 31-38 

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  8. Jonsson, L., and P.O. Nyman. 1994. Tandem lignin peroxidase genes of the fungus Trametes versicolor. Biochim. Biophys. Acta. 1218, 408-412 

  9. Jun, S.C. 2004. Biochemical and molecular characterization of manganese peroxidase isozymes from Korean Trametes versicolor. PhD thesis, Kangnung National University 

  10. Kim, Y., S. Cheong, S. Kim, H. Song, and H. Choi. 2003. Partial cloning of genes for lignin degrading enzymes in Trametes versicolor. Kor. J. Microbiol. 39, 201-205 

  11. Kim, Y., S. Yeo, J. Kum, H.G. Song, and H.T. Choi. 2005. Cloning of a manganese peroxidase cDNA gene repressed by manganese in Trametes versicolor. J. Microbiol. 43, 569-571 

  12. Lee, M.J., S.C. Jun, I.K. Hwang H.K. Choi, and K.J. Kim. 2005. Analysis of rDNA ITS region from Trametes spp. in Kangwon Province, Korea. Kor J. Mycol. 33(1), 1-10 

  13. Zolan, M.E., and P.J. Pukkila. 1986. Inheritance of DNA methylation in Coprinus cinereus. Mol.Cell.Biol. 6, 185-200 

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