$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

Computer-Assisted Sperm Analysis(CASA)를 이용한 제주마 정액의 운동성 평가
Assessment of Jeju Horse Semen using Computer-Assisted Sperm Analysis (CASA) 원문보기

韓國受精卵移植學會誌 = Korean journal of embryo transfer, v.21 no.1, 2006년, pp.69 - 75  

강태영 (제주대학교 수의학과) ,  강민수 (제주대학교 생명자원과학대학 생물산업학부)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구는 제주도 축산진흥원과 농촌진흥청 난지농업연구소에서 사육되고 있는 제주마 5두를 사용하여 인공질을 이용, 정액을 채취하여 정액의 일반성상 및 CASA를 이용하여 정자의 운동성과 생사 염색으로 기형률을 조사하였다. 제주마 정액의 일반 특성으로 총 정액량은 평균 42.5ml이었으며 평균 pH는 7.3, 평균 정자농도는 평균 $198.5X10^6/m1$ 이었다. 정자의 운동성은 $64.3{\pm}23.2%$이며, motility parameters 별로 VAP $70.4{\pm}28.7{\mu}m/s,\;VSL\;69.6{\pm}28.9{\mu}m/s,\;VCL\;94.1{\pm}30.0{\mu}m/s,\;ALH\;2.3{\pm}0.7{\mu}m/s,\;BCF\;7.6{\pm}1.1Hz,\;STR\;99.1{\pm}1.2%,\;LIN\;77.1{\pm}12.7%$로 나타났다. 정자 부위별 기형률은 두부가 평균 4 %, 경부가 평균 20 %, 미부가 평균 4 %로 나타났다. 이 연구를 통해 천연기념물로 지정되어 있는 제주마의 유전자원 보존과 증식을 위한 인공수정기술의 실용화를 위한 기초 자료를 제공하고자 한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The objective of the study was to assess the general characteristics and motility characteristics with Computer Assisted Sperm Analyzer (CASA) system in Jeju horse semen. Semen was collected from 5 fertile Jeju horse by use of a Missouri type artificial vagina. Semen volume and pH were recorded, and...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 따라서 컴퓨터를 이용한 정액 분석 (Computer-Assisted Sperm Analysis; CASA)은 세포의 움직임, 속도, 형태와 같은 서로 다른 특징들에 대한 객관적인 평가를 가능하게 한다. 본 연구에서는 제주 종모마의 정자 운동성을 CASA를 이용하여 보다 객관적인 운동성을 평가하여 향후 수태율을 향상시키는데 기초 자료를 얻고자 하였다.
  • 이 연구를 통해 천연기념물로 지정되어 있는 제주마의 유전자원 보존과 증식을 위한 인공수정기술의 실용화를 위한 기초 자료를 제공하고자 한다.
  • 제주마와 같이 고부가 가치를 창출할 수 있는 동물에서는 정액을 이용하여 수정 능력을 최적화함으로써 수익성이 개선될 수 있다. 이를 위해서는 CASA 분석을 통하여 보다 객관적인 정자의 운동성 평가가 필요하리라 사료되고, 차후 제주마 등록 및 증식 사업의 성공적인 수행을 위한 동결 정액 생산 기술 개발의 기초 자료를 제공하고자 본연구를 수행하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (37)

  1. Agarwal A, Sharma RK and Nelson DR. 2003. New semen quality scores developed by principal component analysis of semen characteristics. J. Androl., 24:343-352 

  2. Armann RP. 1989. Can the fertility potential of a seminal sample be predicted accurately? J. Androl., 10:89-98 

  3. Armant DR and Ellis MA. 1995. Improved accuracy of sperm motility assessment using a modified Micro-Cell sperm counting chamber. Fertil. Steril., 63:1128-1130 

  4. Auger J, Leonce S, Jouannet P and Ronot X. 1993. Flow cytometric sorting of living, highly motile human spermatozoa based on evaluation of their mitochondrial activity. J. Histochem. Cytochem., 41:1247-1251 

  5. Bielanski W, Dudek E, Bittmar A and Kosiniak K. 1982. Some characteristis of common abnormal forms of spermatozoa in highly fertile stallions. J. Reprod. Fert. Suppl., 32:21-26 

  6. Budworth PR, Amann RP and Chapman PL. 1988. Relationships between computerized measurements of motion of frozen-thawed bull spermatozoa and fertility. J. Androl., 9:41-54 

  7. Chan SY, Wang C, Song BL, Lo T, Leung A, Tsoi WL and Leung J. 1989. Computer-assisted image analysis of sperm concentration in human semen before and after swim-up separation: Comparison with assessment by haemocytometer. Int. J. Androl., 12:339-345 

  8. Coetzee K, Kruger TF and Lombard CJ. 1999. Repeatability and variance analysis on multiple computer-assisted (IVOS) sperm morphology readings. Andrologia, 31: 163-168 

  9. Davis RO and Siemers RJ. 1995. Derivation and reliability of kinematic measures of sperm motion. Reprod. Fertil. Dev., 7:857-869 

  10. Davis RO, Drobnis EZ and Overstreet JW. 1995. Application of multivariate cluster, discriminate function, and stepwise regression analyses to variable selection and predictive modeling of sperm cryosurvival. Fertil. Steril., 63:1051-1057 

  11. Donnelly ET, Lewis SE, McNally JA and Thompson W. 1998. In vitro fertilization and pregnancy rates: the influence of sperm motility and morphology on IVF outcome. Fertil. Steril., 70: 305-314 

  12. Dowsett KF and Pattie WA. 1982. Characteristics and fertility of stallion semen. J. Reprod. Fert. Suppl., 44:77-86 

  13. Dunphy BC, Kay R, Barratt CL and Cooke ID. 1989. Quality control during the conventional analysis of semen, an essential exercise. J. Androl., 10:378-385 

  14. Farrell PB, Foote RH, McArdle MM, Trouern-Trend VL and Tardif AL. 1996. Media and dilution procedures tested to minimize handling effects on human, rabbit, and bull sperm for computer-assisted sperm analysis (CASA). J. Androl., 17:293-300 

  15. Fernandes PA, McCoshen JA, Cheang M, Kredentser JV and Wodzicki AM. 1990. Quantitative analysis of the effect of freezing on donor sperm motion kinetics. Fertil. Steril., 54:322-327 

  16. Hirano Y, Shibahara H, Obara H; Suzuki T, Takamizawa S, Yamaguchi C, Tsunoda H and Sato I. 2001. Relationships between sperm motility characteristics assessed by the computer-aided sperm analysis (CASA) and fertilization rates in vitro. J. Assist. Reprod. Genet., 18:213-218 

  17. Holt W, Watson P, Curry M and Holt C. 1994. Reproducibility of computer-aided semen analysis: comparison of five different systems used in a practical workshop. Fertil. Steril., 62:1277-1282 

  18. Iguer-Ouada M and Verstegen JP. 2001. Evaluation of the 'Hamilton Thorn computer-based automated system' for dog semen analysis. Theriogenology, 55:733-749 

  19. Imade GE, Towobola OA, Sagay AS and Otubu JA. 1993. Discrepancies in sperm count using improved Neubauer, Makler, and Horwells counting chambers. Arch. Androl., 31:17-22 

  20. Jequier AM and Ukombe EB. 1983. Errors inherent in the performance of a routine semen analysis. Br. J. Urol., 55:434-436 

  21. Jeulin C, Lewin LM, Chevrier C and Schoevaert Brossault TD. 1996. Changes in flagella movement of rat spermatozoa along the length of the epididymis : Manual and computer-aided image analysis. Cell. Motil. Cystoskeleton, 35:147-161 

  22. Johnson JE, Boone WR and Blackhurst DW. 1996. Manual versus computer-automated semen analyses. Part II. Determination of the working range of a computer-automated semen analyzer. Fertil. Steril., 65:156-159 

  23. Kruger TF, Acosta AA, Simmons KF, Swanson RJ, Matta JF and Oehninger S. 1988. Predictive value of abnormal sperm morphology in in vitro fertilization. Fertil. Steril., 49: 112-117 

  24. Lackey BR, Boone WR, Gray SL and Henricks DM. 1998. Computer-assisted sperm motion analysis of bovine sperm treated with insulin-like growth factor I and II: implications as motility regulators and chemokinetic factors. Arch. Androl., 41:115-125 

  25. Magistrini M, Chanteloube P and Palmer E. 1987. Influence of season and frequency of ejaculation on production of stallion semen for freezing. J. Reprod. Fertil. Suppl., 35:127-133 

  26. Marshburn PB, McIntire D, Carr BR and Byrd W. 1992. Spermatozoal characteristics from fresh and frozen donor semen and their correlation with fertility outcome after intrauterine insemination. Fertil. Steril., 58: 179-188 

  27. McDonnell SM and Hize AL. 2005. Aversive conditioning of periodic spontaneous erection adversely affects sexual behavior and semen in stallions. Anim. Reprod. Sci., 89:77-92 

  28. Purvis K, Tollefsrud A and Rui H. 1989. Correlates of human sperm motility assessed by laser Doppler spectroscopy. Int. J. Androl., 12:10-16 

  29. Pusch HH, Leitinger S, Winter R and Urdl W. 1986. Evaluation of sperm motility by laser-Doppler-spectroscopy in an in-vitro fertilization programme. Hum. Reprod., 1:233-235 

  30. Quintero-Moreno A, Miro J, Teresa Rigau A and Rodriguez-Gil JE. 2003. Identification of sperm subpopulations with specific motility characteristics in stallion ejaculates. Theriogenology, 59: 1973-1990 

  31. Rashid MRZ, Fishel SB and Thornton S. 1998. The predictive value of the zona free hamster egg penetration test in relation to in vitro fertilization at various insemination concentrations. Hum. Reprod., 13:624-629 

  32. Squires EL, Pickett BW, Graham JK, Vanderwall DK, McCue PM and Bruemmer JE. 1999. Cooled and frozen stallion semen. Anim. Reprod. Biotech. Lab. Colorado State Univ. Bulletin No. 09 

  33. Thurston LM, Watson PF, Mileham AJ and Holt WV. 2001. Morphologically distinct sperm subpopulations defined by Fourier shape descriptors in fresh ejaculates correlate with variation in boar semen quality following cryopreservation. J. Androl., 22:382-394 

  34. Vetter CM, Miller JE, Crawford LM, Armstrong MJ, Clair JH, Conner MW, Wise LD and Skopek TR. 1998. Comparison of motility and membrane integrity to assess rat sperm viability. Reprod. Toxicol., 12:105-114 

  35. 박남건, 오운용, 이성수, 오창언, 강수원, 고서봉, 강민수, 김희석. 1995. 제주재래마 정액의 동결 보존에 관한 연구. 농업논문집, 37:459-463 

  36. 양보석, 강승률, 이성수, 조인철, 검영훈, 전창익, 정진관, 2001. 제주마 정액의 일반성상에 관한 연구. 한국수정란이식학회지, 16: 127-131 

  37. 오운용, 박남건, 김영훈, 이성수, 김희석, 김중계, 신원집. 1994. 제주재래마 정액의 일반성상에 관한 조사연구. 농업논문집, 36:552-557 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로