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식용 달팽이 [Achatina fulica]로부터 항균성 물질의 분리 및 정제
Isolation and Purification of Antimicrobial Substance from the Giant Snail, Achatina fulica 원문보기

Environmental mutagens and carcinogens = 한국 환경성돌연변이·발암원학회지, v.26 no.1, 2006년, pp.20 - 24  

김인혜 (신라대학교 공과대학 제약공학과) ,  현진원 (제주대학교 의과대학) ,  이재화 (신라대학교 공과대학 제약공학과)

초록
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식용 달팽이 (Achatina fulica])의 추출물 RM 60을 사용하여 E. coli D31을 대상으로 순수한 항균성 물질을 분리 정제하였다. 정제한 항균성 물질은 MALDI-TOF Mass spectrometra를 사용하여 분자량을 측정한 결과, 1392.64 Da 단일 peak를 얻을 수 있었으며, 이 후 Edman 분해법을 이용한 peptide sequencer를 사용하여 일차구조 분석을 조사하고 있다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

An antimicrobial substance was purified from the giant snail body extract (Achatina fulica) using solid-phase extraction and separation on HPLC reversed-phase chromatography. The primary structure were determined by a combination of an automated amino acid sequence and MALDI-TOF Mass. Its molecular ...

주제어

AI 본문요약
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* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

제안 방법

  • 1). 3 종류의 시료들을 사용하여 E. coli D31에 대한 항균 활성을 측정하였다 (Fig. 2).
  • 1 N HC1 이 되도록 HC1을 첨가하고, 원심분리 (15,000Xg, 4℃, 30분)하여 침전물을 제거한 후 Sep-Pak C]8 cartridge에 시료를 주입하였다. Column으로부터 10% MeOH (RM 10), 60% MeOH (RM 60) 및 100% MeOH (RM 100)의 물질들을 각각 용출시켰다 (Fig. 1). 3 종류의 시료들을 사용하여 E.
  • E. coli D31에 항균 활성을 나타낸 RM 60은 6단계의 HPLC과정을 통하여 항균활성 펩타이드를 분리 정제하였다 (Fig. 3). 첫 단계로 동결 건조한 추출물 RM 6。을 Wdac C18 (10X250cm, Waters, USA) column에 주입하여 정제하였고 분리조건은 다음과 같다: 유속; 2.
  • 2). 그 중에서 RM 60을 사용하여 항균성 물질을 정제하였다. RM 60은 역상 column과 size exclusion column등을 순차적고로 사용하여 정제하였다.
  • 식용 달팽이 (Achatina 力我w)의 추출물 RM 60을 사용하여 E. coli D31 을 대상으로 순수한 항균성 물질을 분리 정제하였다. 정제한 항균성 물질은 MALDI-TOF Mass spectrometra-j- 사용하여 분자량을 측정한 결과, 1392.
  • RM 60은 역상 column과 size exclusion column등을 순차적고로 사용하여 정제하였다. 최종 단계로는 Zorbox SB-phenyl column (4.6 X 150 mm, Aglient, USA) 을 사용하여 유속을 0.5 mL/min으로 하여 0.1% TFA을 포함한 28% CI%CN의 등용매 조건으로 순수하게 정제하였다 (Fig. 5).
  • 다음 단계는 size exclusion column인 superdex peptide HR 10/30 (10X300 mm, Pharmacia, Sweden)을 사용하였다. 최종적으로 Zorbox SB-phenyl C|8 (A이ient, USA) column을 사용하여 유속; 0.5 mL/min, 28% 등 용매 조건으로 정제하였다 (Fig. 4). 모든 역상 HPLC 정제단계에서 A 용매로는 0.
  • 홍합 (Mytilus coruscus) 주줄물인 RM 10, RM 60 및 RM 100을 사용하여 E. coll D31에 대해 항균활성을 측정하였다 (Fig. 2). 그 중에서 RM 60을 사용하여 항균성 물질을 정제하였다.
  • 4). 활성이 있는 분획을 Vydac C18 (4.6X 150 cm, Waters, USA) column에 주입 하였고 유속; 1.0 mL/min, B 용매의 농도; 20 50% (60분)의 조건으로 정제하였고 세 번째 단계는 전 단계와 동일한 column을 사용하였고 B 용매의 농도만 20 t 30%를 사용하였다. 다음 단계는 size exclusion column인 superdex peptide HR 10/30 (10X300 mm, Pharmacia, Sweden)을 사용하였다.

대상 데이터

  • Tryptic soy brolh (TSB)와 Lactose- Boullion (LB) 및 Muller-Hinton Broth (MHB)는 Merck 사 (Darmstadt, Germany)에서 구입하여 실험에 사용하였다. HPLGgrade의 water (H2O) 및 acetonitrile (CH3CN)은 TEDIA 사 (Ohio, US A)와 Merck사 (Darmstadt, Germany)에서 구입하였고, Trifluroacetic acid (TFA)는 Sigma사 (St. Louis, MO, USA)로부터 구입하였고, 그 이외의 모든 시약은 특급을 사용하였다.
  • Sep-Pak Vac C18 cartridge는 Waters사 (Miliford, MA, USA)에서 구입하였다. Tryptic soy brolh (TSB)와 Lactose- Boullion (LB) 및 Muller-Hinton Broth (MHB)는 Merck 사 (Darmstadt, Germany)에서 구입하여 실험에 사용하였다.
  • 구입하였다. Tryptic soy brolh (TSB)와 Lactose- Boullion (LB) 및 Muller-Hinton Broth (MHB)는 Merck 사 (Darmstadt, Germany)에서 구입하여 실험에 사용하였다. HPLGgrade의 water (H2O) 및 acetonitrile (CH3CN)은 TEDIA 사 (Ohio, US A)와 Merck사 (Darmstadt, Germany)에서 구입하였고, Trifluroacetic acid (TFA)는 Sigma사 (St.
  • 그러나 식용으로만 사용되어온 식용 달팽이 (Achatina fulicdfe 연구는 보고 된 바가 없다. 연구는 식 용 달팽 이 인 (Achatina 邳ca)를 대상으로 분자량이 1392.64 Da인 항균성 물질을 분리하였다.
  • 실험에 사용한 달팽 이는 {Achatina 血lica)는 2005년 1월에 경기도 용인에서 구입하였다. 살아있는 상태의 달팽이를 껍질과 분리 한 후, 액체질소로 급속 동결시켜서 실험에 사용하기 전 까지 -7UC에 보관하였다.

이론/모형

  • 항균활성 측정

    정제과정 중에 얻은 각 분획에 대한 항균활성의 측정은 Radial diffusion assay법을 이용하여 E. coli D31에 대한 성장 억제를 관찰하였고 활성 측정법은 다음과 같다 (Lehrer et al., 1991). E.

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참고문헌 (11)

  1. Barra, D. and Simmaco, M. (1995) Amphibian skin: a promising resource for antimicrobial peptides. Trends Biotechnol., 13, 205-209 

  2. Hancock, R.E.W. and Diamond, G. (2000) The role of cationic antimicrobial peptides in innate host defense. Trends Microbial. 8. 402-410 

  3. Hancock, R.E.W. and Scott, M.G. (2000) The role of antimicrobial peptides in animal defences. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 97. 8856-8861 

  4. Lehrer, R.I. and Ganz, T. (1990) Antimicrobial polypeptides of human neutrophils. Blood 76, 2169-2181 

  5. Lehrer, R.I., Lichtenstein, A.K. and Ganz, T. (1993) Defensins: antimicrobial and cytotoxic peptides of mammalian cells. Annu. Rev. Immunol. 11, 105-128 

  6. Lehrer, R.I., Rosenman, M. Harwig, S.S.L. Jackson R. and Eisenhauer, P. (1991) Ultra-sensitive assays for endogenous antimicrobial polypeptides. J. Immunol. Methods, 137, 167-173 

  7. Park, C.B., Kim, M.S. and Kim, S.C. (1996) A novel antimicrobial peptide from Bufo, Bufo gargarizans. Biochem. Biophys. Res. Commun. 218, 408-413 

  8. Park, N.G., Yamato, Y., Lee, S.M., Sugihara, G., Park, J.-S. and Kang, S.-W. (1996) The interaction of mastoparan B from venom of hornet Vespa basalis with phospholipid matrices. Bull. Korean Chem. Soc. 17, 50-56 

  9. Storici, P. and Zanetti, M. (1993) A cDNA derived from pig bone marrow cells predicts a sequence identical to the intestinal antibacterial peptides PR-39. Biochem. Biophys. Res. Commun. 196, 1058-1065 

  10. Vizioli, J. and Salzet, M. (2002) Antimicrobial peptides from animals: focus on invertebrates. Trends Pharmacol. Sci., 23(11). 494-496 

  11. Zasloff, M. (2002) Antimicrobial peptides of multicellular organisms. Nature, 415, 389-395 

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