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Real-time PCR을 이용한 돼지써코바이러스 감염증 진단법 연구
Rapid detection and quantification of porcine circovirus type 2 (PCV 2) DNA in Real-time PCR 원문보기

韓國家畜衛生學會誌 = Korean journal of veterinary service, v.32 no.4, 2009년, pp.299 - 306  

김은경 (경상남도축산진흥연구소) ,  황보원 (경상남도축산진흥연구소) ,  이종민 (경상남도축산진흥연구소) ,  손병국 (경상남도축산진흥연구소) ,  박호정 (경상남도축산진흥연구소) ,  김도경 (경상남도축산진흥연구소)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Assay for the detection and quantification of porcine circovirus type 2 (PCV 2) with the real-time PCR were developed. TaqMan probe real-time using a set of primer/probe was developed for detection of PCV 2. In this study we applied real-time PCR assay to 320 samples, collected from pig farms. In 15...

주제어

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제안 방법

  • Conventional PCR을 위하여 DW 6.5µl, Taq master mix 12.5µl(Promega M7122), forward primer 20pmol 0.5µl, reverse primer 20pmol 0.5µl 그리고 DNA template 5µl를 PCR tube에 넣은 후 혼합액을 thermal cycler (Biometra T-gradient)에서 증폭하였으며, 음성대 조군으로 멸균증류수를 이용하였고 양성대조군으로 PCV 2 DNA(100 ~107 copies)를 이용하였다.
  • Primers와 probe는 GenBank accession number AF027217과 국내외에서 분리 보고된 다수의 porcine circovirus type2 (PCV 2) 유전자 염기서열을 검색하여 가장 적합한 ORF2 부위를 선택하였다. Conventional PCR을 위한 primers는 박 등이 진단용으로 제시한 sequence를 적용하였고, SYBR Green real-time PCR을 위한 Primers는 IDT Scitools (Integrated DNA Technologies)로 선정하여 (주)제노텍에서 각각 제작하여 사용하였다. TaqMan probe real-time PCR을 위한 Primers와 probe는 Beacon Designer Software (PRE-MIER Biosoft International)로 선정하여 (주)바이오니아에 의뢰하여 제작하였으며, Probe의 5′에는 Fluore-scein인 FAM을, 그리고 3′에는 Quencher인 BHQ를 부착하였다(Table 1).
  • PCR 증폭산물 DNA 확인은 증폭산물 10µl, loading buffer (0.03% bromophenol blue, 30% glycerol, 30mM EDTA, 0.03% xylene cyanol) 2µl과 혼합한 후 0.002% ethidium bromide를 첨가한 1% agarose gel에 loading 하여 90V에서 1시간동안 전기영동을 실시한 다음 UV light로 조사하여 501bp를 확인하였다.
  • PCR을 위한 Template DNA는 QIAamp DNA mini kit (QIAGEN)를 이용하여 추출하였으며, 추출한 DNA는 분광광도계(Nanodrop ND-1000)를 이용하여 OD 260에서 농도를 측정하였다.
  • Primers와 probe는 GenBank accession number AF027217과 국내외에서 분리 보고된 다수의 porcine circovirus type2 (PCV 2) 유전자 염기서열을 검색하여 가장 적합한 ORF2 부위를 선택하였다. Conventional PCR을 위한 primers는 박 등이 진단용으로 제시한 sequence를 적용하였고, SYBR Green real-time PCR을 위한 Primers는 IDT Scitools (Integrated DNA Technologies)로 선정하여 (주)제노텍에서 각각 제작하여 사용하였다.
  • Real-time PCR을 이용하여 돼지써코바이러스 감염증에 대한 진단법을 확립하였다. PCV type 2 감염실태를 파악하기 위하여 경남지역에서 돼지를 사육하고 있는 480농가를 중심으로 기존 PCR 검사법을 이용하여 농장별 양성율을 조사한 결과 총 480농가 가운데 235 농가에서 PCV 2가 확인되어 49.
  • SYBR Green real-time PCR 반응 조건은 95℃에서 10분간 predenaturation 시킨 후, 95℃에서 30초 denuaturation, 60℃에서 30초 annealing, 72℃에서 30초 동안 extension을 40회 반복 실시한 다음, 마지막으로 95℃에서 30초 denuaturation, 60℃에서 30초 annealing, 95℃에서 30초 동안 denuaturation을 1회 실시하였으며, extension을 실시할 때마다 복제된 target 부위 157bp 내에 끼어들어 간 SYBR Green fluorescence를 탐지하고 처음 탐지된 cycle수(Ct)는 amplification plots로 표현하였다. 이때 탐지된 fluorescence는 primer간의 dimer 형성을 확인하기 위해 melting temperature를 분석한 dissociation curve로 검증하였다.
  • SYBR Green real-time PCR을 위하여 2×Brilliant II SYBR Green QPCR Master Mix 10µl, dH2O 4µl, sense primer 10pmol 0.5µl, antisense primer 10pmol 0.5µl, DNA template 5µl로 Total 20µl를 PCR tube에 넣은 후 혼합액을 Real-time thermal cycler (STRATAGENE Mx3000P)에서 증폭하였으며 음성대조군으로 멸균증류수를 이용하였고 양성대조군으로 PCV 2 DNA (100 ~107 copies)를 이용하였다.
  • TaqMan probe real-time PCR 반응 조건은 95℃에서 10분간 predenaturation 시킨 후, 95℃에서 20초 denuaturation, 56℃에서 1분 annealing을 40회 반복 실시하였고, annealing 반응 중에 Quencher로부터 분리된 fluorescein FAM이 활성화 될 때마다 fluorescence를 탐지하고 처음 탐지된 cycle 수(Ct)는 amplification plots로 표현하였다. Taqman probe real-time PCR 검사로 복제된 증폭산물은 크기가 99bp이며 이 중 65bp는이 실험에서 제작되어 적용된 primer와 probe가 차지하게 된다.
  • TaqMan probe real-time PCR을 위하여 2×Brilliant II QPCR Master Mix 10µl, dH 2 O 5.5µl, sense primer 10pmol 0.5µl, antisense primer 10pmol 0.5µl, probe 10pmol 0.5µl, DNA template 3µl로 Total 20µl를 PCR tube에 넣은 후, 혼합액을 Real-time thermal cycler (STRATAGENE Mx3000P)에서 증폭하였으며 음성대조군으로 멸균증류수를 이용하였고 양성대조군으로 PCV 2 DNA(100 ~107 copies)를 이용하였다.
  • TaqMan probe real-time PCR을 위한 Primers와 probe는 Beacon Designer Software (PRE-MIER Biosoft International)로 선정하여 (주)바이오니아에 의뢰하여 제작하였으며, Probe의 5′에는 Fluore-scein인 FAM을, 그리고 3′에는 Quencher인 BHQ를 부착하였다(Table 1).
  • 이 연구에서는 먼저 경남지역의 PCV 2 감염실태를 파악하기 위하여 돼지를 사육하고 있는 480농가를 중심으로 기존 PCR을 이용하여 농장별 양성율을 조사하였고, 다음으로 기존 PCR 결과 양성 판정된 35농가와 음성 판정된 35농가에서 한 농가당 4~5두씩 총 320두에 대한 시료를 기존 PCR, SYBR Green real-time PCR 및 TaqMan probe real-time PCR에 적용하여 검사방법에 따른 개체별 양성율과 검출한계를 비교하였다.
  • SYBR Green real-time PCR 반응 조건은 95℃에서 10분간 predenaturation 시킨 후, 95℃에서 30초 denuaturation, 60℃에서 30초 annealing, 72℃에서 30초 동안 extension을 40회 반복 실시한 다음, 마지막으로 95℃에서 30초 denuaturation, 60℃에서 30초 annealing, 95℃에서 30초 동안 denuaturation을 1회 실시하였으며, extension을 실시할 때마다 복제된 target 부위 157bp 내에 끼어들어 간 SYBR Green fluorescence를 탐지하고 처음 탐지된 cycle수(Ct)는 amplification plots로 표현하였다. 이때 탐지된 fluorescence는 primer간의 dimer 형성을 확인하기 위해 melting temperature를 분석한 dissociation curve로 검증하였다.

대상 데이터

  • 2006년부터 2007년까지 경남도내 480농가에서 돼지 혈액검사를 목적으로 우리 연구소에 의뢰된 1,900여두의 혈액을 시료로 사용하였으며 그 중 검사방법에 따른 개체별 양성율 조사를 위하여 320두의 시료를 사용하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Porcine circovirus type 2란? Porcine circovirus type 2 (PCV 2)는 Circoviridae에속하며 직경이 17nm 정도로 작은 원형의 singlestranded DNA 바이러스이다. PCV 2는 1990년대 후반에 이유자돈전신소모성증후군(postweaning multisystemic wasting syndrome, PMWS) 증상을 보이는 돼지에서 분리되어 지속적으로 연구되고 있으며 거의 세계적으로 광범위하게 분포되어 있는 것으로 알려져 있다.
PMWS의 주 감염대상은? PCV 2는 1990년대 후반에 이유자돈전신소모성증후군(postweaning multisystemic wasting syndrome, PMWS) 증상을 보이는 돼지에서 분리되어 지속적으로 연구되고 있으며 거의 세계적으로 광범위하게 분포되어 있는 것으로 알려져 있다. PMWS는 주로 생후 6~8주령의 젖 뗀 어린돼지들이 불량한 사육환경에서 바이러스나 세균 등 여러 가지 병원체에 복합 감염되어 발생하며, 감염된 돼지는 식욕감퇴, 전신쇠약, 황달, 호흡기 증상 등을 나타내는 것으로 보고되고 있다(Straw 등, 1999).
Porcine circovirus type 2의 진단법은? PCV 2의 진단은 중합효소연쇄반응법(PCR)이 주로 사용되고 있으며, 그 밖의 진단법으로는 간접형광항체 검사법, 조직진단법, 면역조직화학염색법, 전자현미경 검사법 등이 있다.
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참고문헌 (20)

  1. 김경미, 정지혜, 민홍기, 이승철, 노인순, 강신영. 2004. 돼지 써코바이러스에 대한 단크론항체 생산 및 진단적 응용. 대한수의학회지 44(2): 259-268 

  2. 김영환, 조광현, 김성국, 김순태, 박인화, 손재권, 정종식.2004. 경북지방 돼지에서 이유후전신성소모성증후군 및 porcine circovirus type 2의 감염 양상. 한국가축위생학회지 27(2): 139-146 

  3. 김영환, 조광현, 정영석, 박인화, 김정화. 2005. 경북지방 돼지의 유산태아에서 PCV 2 감염률 조사. 한국가축위생학회지 28(3): 267-273 

  4. 김재훈, 노인순, 손현주, 진영화, 황의경, 윤경진. 2003. 국내 이유자돈의 써코바이러스 감염에 의한 이유후전신소모성증후군. 대한수의학회지 43(3): 463-469 

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  18. Olvera A, Sibila M, Calsamiglia M, Segales J, Domingo M. 2004. Comparison of porcine circovirus type 2 load in serum quantified by a real time PCR in postweaning multisystemic wasting syndrome and porcine dermatitis and nephropathy syndrome naturally affected pigs. J Virol Methods 117(1): 75-80 

  19. Straw BE, D'Allaire S, Mengeling WL, Taylor D. 1999. Diseases of swine. 8th Eds. Iowa State University Press, Ames: 119-124 

  20. Wang X, Jiang W, Jiang P, Li Y, Feng Z, Xu J. 2006. Construction and immunogenicity of recombinant adenovirus expressing the capsid protein of porcine circovirus 2 (PCV 2) in mice. Vaccine 24(16): 3374-3380 

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