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정자 운동성 및 수명 보존을 위한 최적 배양에 관한 연구
Optimized Methods to Maintain Motility and Viability in Normozoospermic Males 원문보기

대한생식의학회지= The Korean journal of reproductive medicine, v.36 no.1, 2009년, pp.45 - 53  

유영아 (중앙대학교 산업과학대학 동물자원과학과) ,  (중앙대학교 산업과학대학 동물자원과학과) ,  오신애 (중앙대학교 산업과학대학 동물자원과학과) ,  방명걸 (중앙대학교 산업과학대학 동물자원과학과)

초록
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목 적: 본 연구는 정상 정액을 배양액으로 세척한 후 $4^{\circ}C$, $22^{\circ}C$, $37^{\circ}C$에서 5일 동안 보존하면서 정자의 운동성, 생존성을 관찰하여 정자의 운동성과 수명 유지를 위한 적정 배양 환경을 분석하고자 하였다. 연구방법: 정액검사 시 정상으로 판정된 남성의 정자를 HTALP 배양액으로 세척하여 정자의 최종 농도 $1{\times}10^6/ml$로 각 5 ml을 배양온도 $4^{\circ}C$, $22^{\circ}C$, $37^{\circ}C$에서 5일 동안 배양하였다. 1일, 3일 5일째에 CASA에 의해 운동성을 측정하였고, HOST로 정자막의 온전성을 분석하였으며, CTC pattern으로 수정능획득 상태 분석하여 최적의 배양 환경을 분석하였다. 결 과: 정자의 운동성, 생존성 및 수정능획득이 야기되지 않은 정자는 배양일에 따라 유의하게 감소하였다 (p<0.05). 또한 정자 배양 후 1일에는 정자의 운동성, 생존성 및 정자막의 온전성과 CTC pattern은 온도에 따라 차이가 없었으나, 배양 후 3일과 5일에서는 $22^{\circ}C$에서 배양된 정자가 다른 배양온도에 비해 가장 잘 보존되었다 (p<0.05). 결 론: HTALP로 세척된 정자를 $22^{\circ}C$에서 보존 시 5일까지 정자의 운동성과 수명을 보조생식술에 적합한 수준으로 유지시킬 수 있는 최적 배양 환경으로 제시할 수 있다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Objectives: To determinate the optimal culture condition to maintain lifespan in human sperm, we evaluated the effect of different temperature on sperm motility and viability up to 5 days in normal specimens. Methods: Ejaculated semen samples with normal semen parameters were gently washed in HEPES ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 따라서 본 연구에는 정액검사 상 정상 정자를 온도에 따라 일정기간 보존하고, 정자의 운동성, 운동 역학, 정자막 온전성 및 수정능획득 상태를 분석하여 일정기간 동안 정자의 생존성과 기능을 최대한 유지할 수 있는 정자의 최적 배양방법을 분석하기 위하여 시행하였다.
  • 정자의 수정능획득과 첨체반응 정도에 따라 수정능력을 평가할 수 있는데. 본 연구에서는 CTC 염색으로 보존기간 동안 수정능획득과 첨체반응이 일어난 정자의 비율을 분석하였다. 보존기간 동안 온도에 따라 수정능획득과 첨체반응간의 유의한 차이는 보이지 않았고, ART 시술을 위하여 첨체반응의 유도가 필요한 것으로 사료된다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
ART 시술을 위해 정자를 단기가 보존할 경우 어떤 단점이 있는가? 그러나 정자를 ART 시술에 사용하기 위하여 단기간 보존할 경우 동결방법은 동결· 융해 과정을 시행하여야 하여 환자에게 추가 비용부담을 발생 시킬 수 있으며, 동의서를 받아야 하는 등의 번거로움이 발생한다. 또한 액상상태로 정자보존 시 일정기간 정자의 운동성과 생존성을 ART 시술에 적합한 수준으로 유지시키는 적정온도 조건은 아직 확고히 설정되지 못한 실정이다.
정장을 제거한 정자는 어떻게 보존하는가? 1,2 그러므로 채취된 정액은 액화직후 즉시 정장을 제거하여야 한다. 정장을 제거한 상태에서 정자는 생존성을 보존하기 위하여 -196℃에서 동결보존하거나, 3 3~5℃에서 비전해질 배양용액으로 희석한 후 일정시간 보존하는 방법이 이용되고 있다. 4 또한 정장 제거 전 정액을 citrate-egg yolk buffer와 혼합하여 상온에서 보존하거나 정장을 제거한 정자를 실온에서 보존하여 정자의 생존성을 연장시킨 연구들이 소개되기도 하였다.
채취된 정액을 액화 직후 즉시 정장을 제거해야 하는 이유는 무엇인가? 정장 내 정자는 삼투압 증가와 산화작용으로 인하여 수 시간 내에 운동성과 생존성을 급격히 잃게 되어 수정능력을 상실하게 된다. 1,2 그러므로 채취된 정액은 액화직후 즉시 정장을 제거하여야 한다.
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참고문헌 (23)

  1. Esfandiari N, Saleh RA, Blaut AP, Sharma RK, Nelson DR, Thomas AJ Jr, Falcone T, Agarwal A. Effects of temperature on sperm motion characteristics and reactive oxygen species. Int J Fertil Womens Med 2002; 47: 227-33 

  2. Appell RA, Evans PR. The effect of temperature on sperm motility and viability. 1977; 28: 1329-32 

  3. Grizard G, Chevalier V, Griveau JF, Le Lannou D, Boucher D. Infuence of seminal plasma on cryopreservation of human spermatozoa in a biological material-free medium: study of normal and low-quality semen. J Androl 1999; 22: 190-6 

  4. Saito K, Kinoshita Y, Kanno H, Iwasaki A, Hosaka M. A new method of the electrolyte-free long-term preservation of human sperm at 4 degree C. Fertil Steril 1996; 65: 1210-3 

  5. Cohen J, Fehilly CB, Walters DE. Prolonged storage of human spermatozoa at room temperature or in a refrigerator. Fertil Steril 1985; 44: 254-62 

  6. Hossain A, Osumamkpe C, Nagamani, M. Extended culture of human spermatozoa in the laboratory may have practical value in the assisted reproductive procedures. Fertil Steril 2008; 89: 237-9 

  7. Petrrlla et al. Optimizing incubation conditions for the preservation of sperm motility in processed semen samples. Fertil Steril 2005; 84: 513-5 

  8. 문신용, 류범용, 방명걸, 오선경, 이재훈, 서창석, 김석현, 최영민, 김정구, 이진용. 남성 불임의 진단 및 체외수정의 예후인자로서 정자형태의 정밀 분석과 정자 첨체반응 및 햄스터 난자 침투 분석의 비교 연구. 대한불임학회지 2002; 29: 57-66 

  9. 최두석, 문신용, 장윤석. 남성 불임검사 중 정자형태와 정자 운동성 검사 및 저장성용액 내 정자 팽창검사의 상관관계 및 가임능력 예측에 관한 연구. 대한산부인과학회잡지 1993; 36: 2497-509 

  10. DasGupta S, Mills CL, Fraser LR. Ca(2+)-regulatd cnanges in the capacitation state of human spermatozoa assessed by a chlorocycline fluorescence assay. J Reprod Fertil 1993; 99:135-43 

  11. Fraser LR, Abeydeera LR, Niwa K. Ca(2+)-regulating mechanisms that modulate bull sperm capacitation and acrosomal exocytosis as determined by chlorotetracycline analysis. Mol Reprod Dev 1995; 40: 233-41 

  12. Perez LJ, Valcarcel A, de Las Heras MA, Moses DF, Baldassarre H. In vitro capacitation and induction of acrosomal exocytosis in ram spermatozoa as assessed by the chlorocycline assay. Theriogenology 1996; 45: 1037-46 

  13. Jeyendran, RS, Van der Ven HH, Prez-Pelaez M, et al. Development of an assay to assess the functional integrity of the human sperm membranes and its relationship to other semen characteristics. J Reprod Fert 1984; 70: 219-28 

  14. Hirano Y, Shibahara H, Obara H, Suzuki T, Takamizawa S, Yamaguchi C, Tsunoda H, Sato I. Relationships between sperm motility characteristics assessed by the omputer-aided sperm analysis (CASA) and fertilization rates in vitro. Journal of Assisted Reproduction and Genetics 2001; 18: 213-8 

  15. Shibahara H, Obara H, Ayustawati, Hirano Y, Suzuki T, Ohno A, Takamizawa S, Suzuki M. Prediction of pregnancy by intrauterine insemination using CASA estimates and strict and criteria in patients with male factor infertility. International Journal of Andrology 2004; 27: 63-8 

  16. Hatasaka HH, Holmgren WJ, Chatterton RT, et al. The differential hypoosmotic swelling pattern predicts the sperm penetration outcome in an 'infetile' population. 46th annual meeting of American Fertility Society, 1990; Abstract 199 

  17. Verheyen G, Joris H, Crits K, Nagy Z, Tournaye H, Van Steirteghem A. Comparison of different hypo-osmotic swelling solutions to select viable immotile spermatozoa for potential use in intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod Update 1997; 3: 195-203 

  18. Drobnis EZ, Crowe LM, Berger T, Anchordoguy TJ, Overstreet JW, Crowe JH. Cold shock damage is due to lipid phase transitions in cell membranes: A demonstration using sperm as a model. J Exp Zool 1993; 265: 432-7 

  19. Ladha, S. Lipid heterogeneity and membrane fluidity in a highly polarized cell, the mammalian spermatozoon. J Membr Biol 1998; 165: 1-10 

  20. Saito K, Kinoshita Y, Kanno H, Iwasaki A. The role of potassium ion and extracellular alkalization in reinitiation of human spermatozoa preserved in electrolyte-free solution at 4 degrees C. Fertil Steril 1996; 56: 1214-8 

  21. Chantler E, Abraham-Peskir JV, Little S, McCann C, Medenwaldt R. Effect of cooling on the motility and function of human spermatozoa. Cryobiology 2000; 41: 125-34 

  22. Calamera JC, Fernandez PJ, Buffone MG, Acosta AA, Doncel GF. Effects of long-term in vitro incubation of human spermatozoa:functional parameters and catalase effect Andpologia 2001; 33: 79-86 

  23. Marin-Brigglier C, Tezon JG, Miranda PV, Vazquez-Levin MH. Effect of incubation human sperm at room temperature on capacitation-related events. Fert Steril 2002; 77: 252-9 

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