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경골어류 난태생 송사리과에 속하는 black molly와 sailfin molly의 정자형성과정
Spermatogenesis of Black Molly and Sailfin Molly (Poeciliidae, Teleostei) 원문보기

한국현미경학회지 = Korean journal of microscopy, v.40 no.3, 2010년, pp.169 - 176  

유승준 (연세대학교 원주의과대학 환경의생물학교실) ,  김동희 (연세대학교 원주의과대학 환경의생물학교실)

초록
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난태생어류인 성숙한 블랙몰리(black molly, Poecilia sphenops)와 세일핀몰리(sailfin molly, Poecilia latipinna)의 정소를 적출하여 정자형성과정과 정자의 미세구조를 광학현미경전자현미경을 이용하여 관찰하였다. 정소는 부레와 창자사이에 위치하고 있었고 장축 7 mm, 단축 2 mm 정도의 크기로 흰색을 띠고 있었다. 두 종 모두 정자형성 과정은 정소낭(testicular cyst)에서 이루어졌으며, 각 정소낭 내에 동일한 분화시기의 생식세포가 분포하고 있었다. 제1정모세포는 타원형으로 관찰되었으며, 핵과 세포질의 전자밀도는 다른 생식 세포들에 비해서 매우 낮았고 미토콘드리아는 핵막주위에 분포하고 있었다. 제2감수분열 전기의 태사기에 나타나는 태기사복합체(synaptonemal complex)들이 확인되는 경우도 있었다. 두 종 모두 제2정모세포는 구형으로 정원세포보다 크기는 작았고 인은 발달되어 있지 않았으며, 핵의 전자밀도는 더 높아졌다. 특히 미토콘드리아는 세포질 전체에 분포하고 있었고 정세포가 정자로 발달하는 정자완성과정시기에 편모가 형성되는 경우가 일반적이지만 이미 제2정모 세포시기에 편모형성이 관찰되었다. 정자의 중편부위를 횡단한 결과 미토콘드리아는 2~4개 정도로 관찰되었고 편모의 미세소관 배열은 전형적인 두 종 모두 9+2 구조를 이루고 있었고 편모에 lateral fin이 발견되었다. 성숙한 정자의 두부형태는 구형인 정세포와 달리 장원추형이었으며 염색질 응축이 매우 뚜렷하였고, 두부에서 첨체는 관찰되지 않았으며 중편부의 미토콘드리아는 두 종 모두 8~10개가 종렬로 위치하고 있었다. 이상과 같이 두 종의 정자형성과정과 정자의 형태는 같으며 이런 특징은 난태생 송사리과 어류의 공통적인 특성으로 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Black molly (Poecilia sphenops) and sailfin molly (Poecilia latipinna) are a teleost belonging to Poeciliidae. The spermatogenesis between two species were investigated by light and electron microscope. The whitish testes of both black molly and sailfin molly were located between intestine and air b...

주제어

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문제 정의

  • 따라서 본 연구는 수정방식에 따라 체내수정 하는 어류의 경우 체외수정 하는 어류의 정자형성과정과 정자의 미세구조가 차이가 있는지를 확인하고 같은 과(Family)를 대표하는 공통적인 특성인지 종마다 서로 다른 경향을 보여 종특이성을 가지고 있는지를 밝히기 위하여 난태생 송사리과에 속하는 Poecilia속 black molly (Poecilia sphenops)와 sailfin molly (Poecilia latipinna)의 정자형성과정과 정자의 미세구조를 광학현미경과 전자현미경을 이용하여 서로 비교하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
태생을 하는 종은 어떤식으로 생식을 하는가? 어류의 생식은 태생(viviparity), 반태생(semiviviparity), 난태생(ovoviviparity) 및 난생(oviparity)으로 구분되며 태생을 하는 종들은 체내수정을 하고 모체의 생식수관 내에서 발생과정을 수행하며 반태생을 하는 어류는 체내수정을 통하여 배아를 만들고 발생초기에는 모체의 보호를 받다가 부화되기 전 외부로 산란한다. 또한 난태생의 경우는 체내수정을 통하여 배아가 형성되며 모체 내에서 부화를 마친 후 자어가 된다.
어류의 정자형성과정은 주로 어떤 어류에 대해 연구되어 왔는가? 지금까지의 정자형성과정은 주로 체외수정을 하는 난생어류에서 연구되어 왔으며(Gwo & Gwo, 1993; Rossouw & Vanessen, 1993; Medina et al., 2003; Kim et al.
어류의 생식은 어떻게 구분되는가? 어류의 생식은 태생(viviparity), 반태생(semiviviparity), 난태생(ovoviviparity) 및 난생(oviparity)으로 구분되며 태생을 하는 종들은 체내수정을 하고 모체의 생식수관 내에서 발생과정을 수행하며 반태생을 하는 어류는 체내수정을 통하여 배아를 만들고 발생초기에는 모체의 보호를 받다가 부화되기 전 외부로 산란한다. 또한 난태생의 경우는 체내수정을 통하여 배아가 형성되며 모체 내에서 부화를 마친 후 자어가 된다.
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참고문헌 (21)

  1. Billard R: Spermiogenesis in the rainbow trout (Salmo gairdneri) An ultrastructural study. Cell Tissue Res 223 : 265-284, 1983. 

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  3. Deung YK, Kim DH, Reu DS: Ultrastructure of gametes in the threespine stickleback, Gasterosteus aculeatus aculeatus. Korean J Electron Microscopy 29(2) : 177-187, 1999. (Korean) 

  4. Deurs BV, Lastein U: Ultrastructure of the spermatozoa of the teleost Pantodon buchholzi Peters, with particular reference to the midpiece. J Ultrastr Res 42 : 517-533, 1973. 

  5. Favard P, Andre J: The mitochondria of spermatozoa. In: Baccetti B, ed, Comparative Spermatology, pp. 415-429, Academic Press, New York, 1970. 

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  7. Gwo JC, Gwo HH: Spermatogenesis in the black porgy, Acanthopagrus schlegeli (Teleostei: Perciformaes: Sparidae). Mol Reprod Dev 36 : 75-83, 1993. 

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  10. Kim DH, Chang BS, Kim WJ, Lee MS, Teng YC, Kim S, Lee KJ: The Spermatogenesis of Chinese minnow, Leuciscinae, Teleostei. Korean J Electron Microscopy 40(1) : 1-8, 2010. (Korean) 

  11. Kim DH, Deung YK, Kim WJ, Reu DS, Kang SJ: Comparative ultrastructures of the fertilized egg envelopes from three-spot gourami, pearl gourami and marble gourami, Belontiidae, Teleost. Korean J Electron Microscopy 29(3) : 343-351, 1999. (Korean) 

  12. Kim DH, Deung YK, Lee KJ: Ultrastructure of the fertilized egg envelope from Hyphessobrycon serpae, Characidae, Teleost. Korean J Electron Microscopy 35(2) : 89-96, 2005. (Korean) 

  13. Kim DH, Lee KJ, Kim S, Deung YK: A study on the oogenesis of False dace (Pseudorasbora parva). Korean J Electron Microscopy 37(2) : 65-72, 2007. (Korean) 

  14. Kim DH, Reu DS, Deung YK: An ultrastructural study on the spermatogenesis of Xiphophorus maculatus. Korean J Electron Microscopy 33(4) : 267-274, 2003. (Korean) 

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  17. Miura T, Yamauchi K, Nagahama Y, Takahashi H: Introduction of permatogenesis in male Japanese eel, Anguilla japonica, by a single injection of human chorionic gonadotropin. Zool Sci 8 : 63-73, 1991. 

  18. Rossouw GJ, Vanessen LD: Spermatogenesis in the male white spotted houndshark, Mustelus palubes Smith, 1957. South African J Sci 89 : 244-246, 1993. 

  19. Santos RN, Andrade CC, Santos LN, Santos AFGN, Arauujo FG: Testicular maturation of Oligosarcus hepsetus (Cuvier) (Actinopterygii, Characidae) in a Brazilian tropical reservoir. Braz J Biol 66(1A) : 143-150, 2006. 

  20. Todd PR: Ultrastructure of the spermatozoa and spermiogenesis in New Zealand freshwater eels (Anguillidae). Cell Tissue Res 171 : 224-232, 1976. 

  21. Wolenski JS, Hart NH: Scanning electron microscopic studies of sperm incorporation into the zebrafish (Brachydanio) egg. J Exp Zool 243 : 259-273, 1987. 

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