$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

땅콩나물 추출물의 신경세포 보호 효과
Neuroprotective Effects of Methanolic Extracts from Peanut Sprouts 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.20 no.2 = no.118, 2010년, pp.253 - 259  

김현정 (경남대학교 식품생명학과) ,  강점순 (부산대학교 원예생명과학과) ,  박해룡 (경남대학교 식품생명학과) ,  황용일 (경남대학교 식품생명학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구는 땅콩나물 추출물이 glutamate가 유도하는 세포독성으로부터 신경세포를 보호하는 효과를 확인하였다. 땅콩나물을 부위별로 전체, 머리, 줄기 부분으로 나누어 methanol로 처리하여 얻어진 각각의 추출물 WME, HME 그리고 SME를 이용하여 glutamate에 의하여 유도된 세포독성에 대한 신경세포보호효과를 관찰하였다. 기지의 신경세포 N18-RE-105 세포주를 이용하여 MTT reduction assay, LDH release assay, 형태학적인 변화 및 apoptosis를 관찰한 결과로부터 HME에서 효율적인 신경세포보호효과를 보였다. 다음으로 HME를 이용하여 hexane, diethyl ether, ethyl acetate, water 층으로 분획하여 신경세포 보호 효과를 확인한 결과, diethyl ether 층에서 가장 높은 활성을 확인할 수 있었다. 그리고 HME의 apoptosis 억제 효과를 확인하기 위하여 flow cytometric analysis를 실시한 결과에서 glutamate 만을 처리하였을 경우 sub-G1기 세포가 58.5%의 확인되었으나 HME를 100 mg/ml 동시 처리하였을 때에는 sub-G1 세포가 9.1%로 감소하여 높은 apoptosis 억제 효과를 확인할 수 있었다. 이상의 결과로부터 땅콩나물 머리 부분 methanol 추출물에는 glutamate에 의한 세포독성으로부터 신경세포를 보호하는 효과가 있다는 것을 알 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The neuroprotective effects of extracts from various parts of peanut sprouts on glutamate-induced neurotoxicity in N18-RE-105 cells were investigated. This study was performed to evaluate the neuroprotective activity of methanolic extracts from the whole (WME), heads (HME), and stems (SME) of peanut...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 퇴행성 신경질환을 효과적으로 예방 또는 치료할 수 있는 물질을 탐색하기 위한 목적으로 땅콩나물을 이용하여 glutamate에 의해 유도되는 산화적 스트레스로 부터 신경세포를 보호하는 효과를 밝히고자 하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
땅콩의 영양학적 특징은? 예로부터 우리 조상들은 비교적 손쉽게 재배 가능한 두채류 콩나물과 숙주나물을 식용하였으며, 두채류는 가격의 변동이 적고 계절적 공급 제한이 거의 없어 오늘날까지 꾸준히 애용되고 있다. 땅콩(낙화생)은 풍부한 영양소와 비타민 등 유용한 무기물질을 다량 함유되어 있어, 우리 건강에 유익한 보양식 물이며, 중국에서는 예로부터 장수과로 알려져 있다. 땅콩은 종자(0.
GSH를 이루고 있는 아미노산 중, glutamate가 야기하는 흥분 독성의 위험성은? 이런 GSH를 이루고 있는 아미노산 중에서 glutamate [5,25]는 중추신경계 시냅스의 15~20%를 차지하는 중심적인 흥분성 신경전달물질로 작용하지만 뇌 속의 과다한 축적은 체내의 항산화 시스템의 기능을 저하시킴으로 인해 산화계와 항산화계의 불균형을 초래하여[13] 신경을 과도하게 흥분시킴으로 흥분독성(excitotoxicity)을 야기하게 된다[4,21]. 이 흥분독성은 세포의 사멸을 일으키게 되어 알츠하이머병, 파킨슨병과 같은 여러 퇴행성 신경질환[2,16]을 유발하게 된다. 이러한 퇴행성 신경질환을 치료하기 위해서 항산화물 처리, 세포 이식, 외과적 수술 등 다양한 치료법이 제시되고 있지만 대부분이 위험요소와 부작용을 가지고 있어 각종 천연자원으로부터 보다 안전하고 신경세포 보호 효과가 뛰어난 치료제의 개발이 요구된다.
산화적 스트레스의 위험성은? 활성산소는 미토콘드리아내의 전자전달계 및 백혈구 세포의 활성화 등 정상적인 세포기능을 유지하는데 중요한 역할을 담당하는 세포내 신호전달 물질로 작용한다. 그러나 활성산소들은 불안정하고 산화력이 높아 생체물질과 쉽게 반응하기 때문에 인체 내에서 제거되지 못하면 산화적 스트레스(oxidative stress) [10,22]를 유발하게 되며 이러한 산화적 스트레스는 지질과산화를 유도하고 단백질, 세포막 및 DNA 등을 손상시켜 세포의 노화와 변형을 유도함으로써 뇌졸중, 알츠하이머병, 파킨슨병 등 다양한 퇴행성 신경질환을 유발하게 된다[6,28].
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (29)

  1. Cho, C. H., S. K. Kim, G. Yoo, M. H. Son, K. Park, B. L. Lim, D. C. Kim, and H. J. Chae. 2008. Resveratrol extraction from grape fruit stem and its antioxidant activity. J. Korean Soc. Appl. Bil. Chem. 51, 11-16. 

  2. Choi, B. H., E. M. Hur, J. H. Lee, D. J. Jun, and K. T. Kim. 2005. Protein kinase Cd-mediated proteasomal degradation of MAP kinase phophatase-1 contributes to glutamate-induced neuronal cell death. J. Cell. Sci. 119, 1329-1340. 

  3. Emerit, J., M. Edeas, and F. Bricaire. 2004. Neurodegenerative diseases and oxidative stress. Biomed. Pharmacother. 58, 39-46. 

  4. Federico, H., M. Vanesa, G. S. Guillermo, R. B. Jezabel, A. Isaac, and R. Carmen. 2007. Melatonin prevents glutamate-induced oxytosis in the HT22 mouse hippocampal cell line through an antioxidant effect specifically targeting mitochondria. J. Neurochem. 100, 736-746. 

  5. Ha, J. S., C. S. Lee, J. S. Maeng, K. S. Kwon, and S. S. Park. 2009. Chronic glutamate toxicity in mouse cortical neuron culture. Brain Res. 1273, 138-143. 

  6. Ha, J. S. and S. S. Park. 2006. Glutamate-induced oxidative stress, but not cell death, is largely dependent upon extracellular calcium in mouse neuronal HT22 cells. Neurosci. lett. 393, 165-169. 

  7. Hwang, Y. I., I. C. Shin, Y. S. Song, M. J. Seung, H. J. Park, Y. M. Lee, C. B. Park, M. K. Lee, K. W. Oh, Y. Y. Shim, and J. T. Hong. 2002. Intracellular calcium concentration in the glutamate-induced cytotoxicity in PC12 cell. J. Toxicol. Pub. Health 18, 355-362. 

  8. Jeon, H. J., S. W. Park, I. Lee, and B. S. Mun. 2004. Effects of Gwibitang on glutamate-induced death in rat neonatal astrocytes. J. Korean Oriental Med. 25, 184-193. 

  9. Jeong, G. S., D. S. Lee, T. O. Kwon, H. S. Lee, R. B. An, and Y. C. Kim. 2009. Cytoprotective constituents of the heartwood of Caesalpinia sappan on glutamate-induced oxidative damage in HT22 cells. Biol. Pharm. Bull. 32, 945-949. 

  10. Jeong, E. J., S. H. Sung, J. Kim, S. H. Kim, and Y. C. Kim. 2008. Rhus verniciflua stokes attenuates glutamate-induced neurotoxicity in primary cultures of rat cortical cells. Nat. Prod. Sci. 14, 156-160. 

  11. Kadomura, K., S. Maruse, S. Sugihara, K. Yamaguchi, and T. Oda. 2007. Production of reactive oxygen species (ROS) by various marine fish species during the larval stage. Biosci. Biotechmol. Biochem. 71, 2029-2033. 

  12. Kim, B. M., Y. J. Choi, Y. Han, Y. S. Yun, and S. H. Hong. 2009. N,N-dimethyl phytosphingosine induced caspase-8-dependent cytochrome c release and apoptosis through ROS generation in human leukemia cells. Toxicol. Appl. Pharm. 239, 87-97. 

  13. Kim, M. H., S. Uehara, A. Muroyama, B. Hille, Y. Moriyama, and D. S. Koh. 2008. Glutamate transportermediated glutamate secretion in the mammalian pineal gland. J. Neurosci. 28, 10852-10863. 

  14. Kim, S. H., D. K. Shin, J. Y. Choe, J. Lee, E. J. Suh, and H. S. Suh. 1999. Quantitation of the Early apoptotic cells using flow cytometry. Korean J. Chlin. Pathol. 19, 108-113. 

  15. Kim, W. J., J. Y. Park, Y. K. Park, H. S. Chung, K. C. Lee, and H. K. Lee. 1997. Effects of calcium, Mugnesium, and calcium chelating agent on recovery from hyproxia in hippocampal tissue slices. J. Korean Neurosurg. Soc. 26, 491-498. 

  16. Lim, C. S., D. Q. Jin, J. Y. Sung, J. H. Lee, H. G. Choi, I. Ha, and J. S. Han. 2006. Antioxidant and anti-inflammatory activities of the methanolic extract of Neorhodomela aculeate in hippocampal and microglial cells. Biol. Pharm. Bull. 29, 1212-1216. 

  17. Nikolova, S., Y. S. Lee, Y. S. Lee, and J. A. Kim. 2005. Racl-NADPH oxidase-regulated generation of reactive oxygen species mediates glutamate-induced apoptosis in SH-SY5Y human neuroblastoma cells. Free Radical Res. 39, 1295-1304. 

  18. Marambaud, P., H. Zhao, and P. Davies. 2005. Resveratrol promotes clearance of Alzheimer's disease amyloid- $\beta$ peptides. J. Biol. Chem. 280, 37377-37382. 

  19. Milatovic, D., S. Zaja-Milatovic, R. C. Gupta, Y. Yu, and M. Aschmer. 2009. Oxidative damage and neurodegeneration in manganese-induced neurotoxicity. Toxicol. Appl. Pharm. 240, 219-225. 

  20. Murphy, T. H., M. Miyamoto, A. Sastre, R. L. Schnaar, and T. Coyle. 1989. Glutamate toxicity in a neuronal cell line involves inhibition of cystine transport leading to oxidative stress. Neuron 2, 1547-1558. 

  21. Penugonda, S., S. Mare, P. Lutz, W. A. Banks, and N. Ercal. 2006. Potentiation of lead-induced cell death in PC12 cells by glutamate: Protection by N-acetylcysteine amide (NACA), a novel thiol antioxidant. Toxicol. Appl. Pharm. 216, 197-205. 

  22. Parfenova, H., S. Basuroy, S. Bhattacharya, D. Tcheranova, Y. Qu, R. F. Regan, and C. W. Leffler. 2006. Glutamate induces oxidative stress and apoptosis in cerebral vascular endothelial cells: contributions of HO-1 and HO-2 to cytoprotection. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 290, 1399-1410. 

  23. Sagara, Y., R. Dargusch, D. Chambers, J. Davis, D. Schubert, and P. Mater. 1998. Cellular mechanisms of resistance to chronic oxidative stress. Free Radic. Biol. Med. 24, 1375-1389. 

  24. Shin, A. Y., H. Erb, X. Sun, S. Toda, P. W. Kalivas, and T. H. Murphy. 2006. Cystine/glutamate exchange modulated glutathione supply for neuroprotection from oxidative stress and cell proliferation. J. Neurosci. 26, 10514-10523. 

  25. Tan, S., Y. Sagara, Y. Liu, P. Maher, and D. Schubert. 1998. The regulation of reactive oxygen species production during programmed cell death. J. Cell Biol. 141, 1423-1432. 

  26. Wang, F., F. Gao, M. Lan, H. Yuan, Y. Huang, and J. Liu. 2009. Oxidative stress contributes to silica nanoparticleinduced cytotoxicity in human embryonic kidney cells. Toxicol. In Vitro. 22, 808-815. 

  27. Yoon, M. Y., J. Y. Kim, J. H. Hwang, M. R. Cha, K. J. Jo, and H. R. Park. 2007. Protective effect of methanolic extracts from Dendrobium nobile Lindl. on $H_{2}O_{2}$ -induced neurotoxicity in PC12 cells. J. Korean Soc. Appl. Chem. 50, 63-67. 

  28. Yoon, M. Y., H. J. Lee, B. B. Lee, S. M. Lee, J. Y. Kim, Y. Kim, E. Park, and H. R. Rark. 2007. Protective effect of schizonepeta tenuifolia briquet extracts on oxidative DNA damage in human leucocytes and on hydrogen peroxide-induced cytotoxicity in PC12 cells. Food Sci. Biotechnol. 16, 858-862. 

  29. Yoshimune, K., Y. Shirakihara, M. Wakayama, and I. Yumoto. 2009. Crystal structure of salt-tolerant glutaminase from Micrococcus luteus K-3 in the presence and absence of its product L-glutamate and its activator tris. FEBS J. 277, 738-748. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로