항생제 및 항진균제 개발에 있어 미생물 유래 천연 생리활성물질 분리를 통한 선도물질을 확보하는 일은 매우 중요하며, 신규 물질을 확보하기 위해 꾸준한 연구가 필요할 것으로 사료된다. 따라서 본 연구에서는 천연 항생물질의 개발을 위한 연구의 일환으로 태백산 일대의 토양에서, 인체에 다양한 감염증을 유발하는 효모와 곰팡이에 대하여 강한 항진균 활성을 나타내는 BCNU 2003 균주를 분리하여 항진균 활성 물질의 이용가능성에 대해 연구하였다. BCNU 2003은 계통적으로는 B. amyloliquefaciens와 B. vallismortis의 subcluster에 속하는 균주로 동정되어 Bacillus sp. BCNU 2003으로 명명하였다. 항균물질 분리를 위해 ethyl acetate (EA) 추출물과 펩타이드 추출물로 나누어 그람양성 세균, 그람음성 세균 및 진균에 대한 항균활성을 측정한 결과, EA 추출물이 6종의 인체병원성 진균에 대해 모든 높은 항진균 활성을 나타내었다. 특히 기회성 감염을 유발하는 A. niger, C. albicans 그리고 Sa. cerevisiae에 대해 높은 억제 활성을 나타냈으며, 균배양액에서 낮은 저해율을 보였던 Ep. floccosum에 대해서도 EA 추출물은 높은 활성을 나타내었다. 따라서 다양한 인체 병원성 진균에 대해 넓은 항균스펙트럼을 가지는 Bacillus sp. BCNU 2003 균주의 활성물질 분리를 통해 특정 항균 및 항진균 물질의 대량생산 조건 등의 추가적인 연구를 수행한다면, 인체 감염증을 포함한 광범위한 피부치료제의 응용개발이 가능하리라 사료된다.
항생제 및 항진균제 개발에 있어 미생물 유래 천연 생리활성물질 분리를 통한 선도물질을 확보하는 일은 매우 중요하며, 신규 물질을 확보하기 위해 꾸준한 연구가 필요할 것으로 사료된다. 따라서 본 연구에서는 천연 항생물질의 개발을 위한 연구의 일환으로 태백산 일대의 토양에서, 인체에 다양한 감염증을 유발하는 효모와 곰팡이에 대하여 강한 항진균 활성을 나타내는 BCNU 2003 균주를 분리하여 항진균 활성 물질의 이용가능성에 대해 연구하였다. BCNU 2003은 계통적으로는 B. amyloliquefaciens와 B. vallismortis의 subcluster에 속하는 균주로 동정되어 Bacillus sp. BCNU 2003으로 명명하였다. 항균물질 분리를 위해 ethyl acetate (EA) 추출물과 펩타이드 추출물로 나누어 그람양성 세균, 그람음성 세균 및 진균에 대한 항균활성을 측정한 결과, EA 추출물이 6종의 인체병원성 진균에 대해 모든 높은 항진균 활성을 나타내었다. 특히 기회성 감염을 유발하는 A. niger, C. albicans 그리고 Sa. cerevisiae에 대해 높은 억제 활성을 나타냈으며, 균배양액에서 낮은 저해율을 보였던 Ep. floccosum에 대해서도 EA 추출물은 높은 활성을 나타내었다. 따라서 다양한 인체 병원성 진균에 대해 넓은 항균스펙트럼을 가지는 Bacillus sp. BCNU 2003 균주의 활성물질 분리를 통해 특정 항균 및 항진균 물질의 대량생산 조건 등의 추가적인 연구를 수행한다면, 인체 감염증을 포함한 광범위한 피부치료제의 응용개발이 가능하리라 사료된다.
An antifungal antibiotic-producing strain, BCNU 2003, was isolated from forest soil in Korea. The morphological and physiological characters, and 16S rRNA sequences analysis of strain BCNU 2003 identified this strain as Bacillus genus. The Bacillus sp. BCNU 2003 showed strong antifungal activities a...
An antifungal antibiotic-producing strain, BCNU 2003, was isolated from forest soil in Korea. The morphological and physiological characters, and 16S rRNA sequences analysis of strain BCNU 2003 identified this strain as Bacillus genus. The Bacillus sp. BCNU 2003 showed strong antifungal activities against Aspergillus niger, Trichophyton mentagrophytes and Trichophyton rubrum with inhibition ranging from 62.05 to 63.49% by using dual culture technique. Bacillus sp. BCNU 2003 produced a maximum level of antifungal substances under aerobic incubation at 28oC and pH 6.5-7.2 for 6 days in LB broth. Ethyl acetate extract of the cultured broth showed strong antifungal activity and a broad antifungal spectrum against various pathogenic fungi. The minimum inhibitory concentration (MIC) values for its active extracts ranged between 0.0625 mg/ml and 1 mg/ml. In addition, Bacillus sp. BCNU 2003 was determined to have the ability to produce enzymes such as amylase, protease, gelatinase and catalase.
An antifungal antibiotic-producing strain, BCNU 2003, was isolated from forest soil in Korea. The morphological and physiological characters, and 16S rRNA sequences analysis of strain BCNU 2003 identified this strain as Bacillus genus. The Bacillus sp. BCNU 2003 showed strong antifungal activities against Aspergillus niger, Trichophyton mentagrophytes and Trichophyton rubrum with inhibition ranging from 62.05 to 63.49% by using dual culture technique. Bacillus sp. BCNU 2003 produced a maximum level of antifungal substances under aerobic incubation at 28oC and pH 6.5-7.2 for 6 days in LB broth. Ethyl acetate extract of the cultured broth showed strong antifungal activity and a broad antifungal spectrum against various pathogenic fungi. The minimum inhibitory concentration (MIC) values for its active extracts ranged between 0.0625 mg/ml and 1 mg/ml. In addition, Bacillus sp. BCNU 2003 was determined to have the ability to produce enzymes such as amylase, protease, gelatinase and catalase.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
본 연구에서는 Bacillus sp. BCNU 2003 균주를 대상으로 그람 양성균, 그람 음성균 및 인체 병원성 진균에 대한 1차 항균활성을 조사하였으며, 주요 항진균 물질 분리를 위한 과정으로 ethyl acetate (EA) 추출물과 펩타이드 추출물로 나누어 항균활성을 조사하였으며, 특히 인체 병원성 진균에 대한 활성을 중점적으로 보고하고자 한다.
제안 방법
16S rRNA의 PCR sequencing을 위하여 16F (5’-AGTTTGATCCTGGCTCAG-3’)와 1492R (5’-ACG GCTACCTTGTTACGACTT-3’) primer를 사용하여 염기서열을 분석하였다.
BCNU 2003 균주의 배양액을 이용하여 12종의 테스트 균주에 대해 평판배지확산법(agar diffusion method) 및 대치배양법으로 항균스펙트럼을 조사하였으며, 28oC에서 3-10일간 배양 한 후 저해 정도를 측정하였다. 사상균에 대한 저해능 측정은 Whipps의 방법[30]에 준하여 측정하였으며, 저해능은 증식 저해율(growth inhibition: GI)로 나타내었다.
BCNU 2003 균주의 주요 항균활성 물질을 동정하기 위해 부분정제하여 EA 추출물과 펩타이드 추출물을 얻었으며, 각 추출물에 대하여 액체배지감수성실험 (broth microdilution susceptibility test) 방법[18,19]을 통하여 최소저해농도를 측정 하였다. 즉, 테스트 균주를 최적배양조건에서 배양할 때 이에 대한 연속희석된 EA 추출물과 펩타이드 추출물의 저해능을조사하였다.
태백산 일대의 토양시료를 채취하여 LB agar 배지에 단계희석법으로 도말하여 26℃에서 2일간 배양한 후, 각종 세균을 순수 분리하였다. 그람양성 세균, 그람음성 세균 및 인체병원성 진균 각 1종에 대해 일차적으로 항균테스트를 실시하여 항균 및 항진균 활성이 우수하며, 항균스펙트럼이 넓은 BCNU 2003 균주를 선발하였다. 생리학적 및 생화학적 특성을 검토한 결과, BCNU 2003은 포자를 형성하는 호기성 세균으로 최적 배양온도는 35℃로, 20℃에서 60℃까지 생육이 가능하며, pH 범위는 5.
따라서 최적배양조건으로 각각 1 l를 진탕배양하였고, 배양 상등액을 회수 (7,500× g, 10분, 4℃)하여 ethyl acetate (EA) 추출과 6N HCl 침전을 통해 EA 추출물과 펩타이드 추출물을 얻어, 테스트 시료로 사용하였다.
생리학적 및 생화학적 특성은 Bergey's Manual of Systematic Bacteriology를 참고하여 조사하였고, 16S rRNA 염기서열 분석을 실시하여 균주를 동정하였다.
BCNU 2003 균주의 주요 항균활성 물질을 동정하기 위해 부분정제하여 EA 추출물과 펩타이드 추출물을 얻었으며, 각 추출물에 대하여 액체배지감수성실험 (broth microdilution susceptibility test) 방법[18,19]을 통하여 최소저해농도를 측정 하였다. 즉, 테스트 균주를 최적배양조건에서 배양할 때 이에 대한 연속희석된 EA 추출물과 펩타이드 추출물의 저해능을조사하였다.
태백산 일대의 토양시료를 채취하여 LB agar 배지에 단계희석법으로 도말하여 26℃에서 2일간 배양한 후, 각종 세균을 순수 분리하였다. 그람양성 세균, 그람음성 세균 및 인체병원성 진균 각 1종에 대해 일차적으로 항균테스트를 실시하여 항균 및 항진균 활성이 우수하며, 항균스펙트럼이 넓은 BCNU 2003 균주를 선발하였다.
항균 물질의 최적 생산 조건을 조사하기 위한 기본배지로 nutrient broth (NB), Luria-Bertani (LB) broth, tryptic soy broth (TSB) 등을 사용하였으며, 각종 pH 및 온도조건 등을 달리하여 8일 동안 배양하면서, 24시간 간격으로 배양액을 회수하여, 전처리 후 항균활성을 조사하였다. 따라서 최적배양조건으로 각각 1 l를 진탕배양하였고, 배양 상등액을 회수 (7,500× g, 10분, 4℃)하여 ethyl acetate (EA) 추출과 6N HCl 침전을 통해 EA 추출물과 펩타이드 추출물을 얻어, 테스트 시료로 사용하였다.
대상 데이터
선발된 BCNU 2003 균주는 태백산 일대에서 토양을 채취하여 그람양성 세균, 그람음성 세균, 인체병원성 효모와 곰팡이 각 1종에 대한 스크리닝을 통해 항균스펙트럼이 넓고 활성이 뛰어난 균주를 최종적으로 분리하여 사용하였다. 생리학적 및 생화학적 특성은 Bergey's Manual of Systematic Bacteriology를 참고하여 조사하였고, 16S rRNA 염기서열 분석을 실시하여 균주를 동정하였다.
floccosum, Trichophyton mentagrophytes 및 Trichophyton rubrum 등에 뛰어난 효과를 가진 Bacillus sp. BCNU 2003를 분리하였다. Bacillus sp.
16S rRNA의 PCR sequencing을 위하여 16F (5’-AGTTTGATCCTGGCTCAG-3’)와 1492R (5’-ACG GCTACCTTGTTACGACTT-3’) primer를 사용하여 염기서열을 분석하였다. Blast search를 통해 16S rRNA를 비교 분석하였으며 계통수는 neighbor joining 법과 bootstrap 분석을 기반으로 확인하였다[21,25].
BCNU 2003 균주의 배양액을 이용하여 12종의 테스트 균주에 대해 평판배지확산법(agar diffusion method) 및 대치배양법으로 항균스펙트럼을 조사하였으며, 28oC에서 3-10일간 배양 한 후 저해 정도를 측정하였다. 사상균에 대한 저해능 측정은 Whipps의 방법[30]에 준하여 측정하였으며, 저해능은 증식 저해율(growth inhibition: GI)로 나타내었다.
성능/효과
또한 amylase, protease, gelatinase, catalase 및 urease를 생성하여 다양한 효소를 분비하는 것으로 나타났으며, Voges-Proskauer test는 음성, nitrate reductase는 양성으로 조사되었다(Table 1). 16S rRNA 염기서열 분석을 실시하여 Blast search를 통해 비교 분석한 결과, Bacillus amyloliquefaciens, 및 B. subtilis와 99% 상동성을 갖는 것으로 나타났으며, 계통적으로는 B. amyloliquefaciens와 Bacillus vallismortis의 subcluster에 속하는 균주로 확인되었다(Fig. 1).
BCNU 2003 균주를 각종 배양조건을 달리하여 항균 및 항진균 물질의 최적 생산 조건을 검토한 결과, 활성이 가장 좋은 것은 LB broth 배지로 나타났으며, pH 7.2, 28℃에서 6일간 배양시 가장 많은 항균물질이 생산되는 것으로 나타났다.
BCNU 2003 균주의 펩타이드 추출물은 그람양성균에 대해 상대적으로 넓은 항균스펙트럼을 나타내었다. M.
albicans와 Sa. cerevisiae에 대해서 각각 16.2 mm와 15.7 mm의 넓은 억제환을 관찰할 수 있었다(Table 2, Fig. 2). 또한 Whipps의 방법에 준한 인체병원성 진균에 대한 활성테스트 결과 A.
niger와 Sa. cerevisiae에 대해서 뛰어난 항진균 활성을 나타내었다.
Ep. floccosum과 T. mentagrophytes는 펩타이드 추출물에서도 0.5 mg/ml 농도에서 생육이 저해되는 것을 관찰할 수 있었다(Table 4, 5). BCNU 2003 균주의 배양액 추출을 통해서 최소 저해농도를 측정한 결과, 주요 인체병원성 진균증을 유발하는 C.
또한 Ep. floccosum에 대해서도 다소 약하지만 16.33%의 활성을 나타내어 BCNU 2003이 인체병원성 진균에 대해 넓은 항균스펙트럼을 가진 것으로 확인되었다.
그람양성 세균 3종, 그람음성 세균 3종 및 인체병원성 진균 6종을 대상으로 BCNU 2003의 항균 및 항진균 활성을 조사한결과, 그람양성 세균인 M. luteus에 대해서 14.7 mm의 넓은 억제환을 나타냈으며, 그람음성 세균에 대해서는 활성이 나타나지 않았다. 그리고 병원성 효모인 C.
subtilis의 생육을 저해하는 것으로 나타났다. 그리고 인체병원성 진균에 대한 활성은 EA 추출물이 펩타이드 추출물보다 상대적으로 항균스펙트럼도 넓었으며, 저농도에서 진균의 생육을 억제하는 것으로 나타났다. Sa.
2). 또한 Whipps의 방법에 준한 인체병원성 진균에 대한 활성테스트 결과 A. niger에 대해 63.49%로 가장 높은 저해율을 보였으며, T. mentagrophytes와 T. rubrum에 대해서도 각각 62.20%, 62.05%의 높은 저해효과를 나타내었다(Table 3, Fig. 3). 또한 Ep.
그람양성 세균, 그람음성 세균 및 인체병원성 진균 각 1종에 대해 일차적으로 항균테스트를 실시하여 항균 및 항진균 활성이 우수하며, 항균스펙트럼이 넓은 BCNU 2003 균주를 선발하였다. 생리학적 및 생화학적 특성을 검토한 결과, BCNU 2003은 포자를 형성하는 호기성 세균으로 최적 배양온도는 35℃로, 20℃에서 60℃까지 생육이 가능하며, pH 범위는 5.6에서 9.2로 비교적 넓은 pH 영역에서 안정적으로 생육하였으며, 12%의 높은 염분 농도에서도 생육이 가능하였다. BCNU 2003은 다양한 탄소원을 이용하는 것으로 나타났으며, 특히 glucose, mannitol 및 starch를 첨가했을 때 생육이 좋은 것으로 나타났다.
후속연구
따라서 인체 병원성 진균에 대해 넓은 항진균 스펙트럼을 가지며 활성이 뛰어난 Bacillus sp. BCNU 2003의 항진균 활성물질을 분리하기 위해 더욱 구체적인 연구가 필요한 것으로 사료된다. 이들 기초 연구를 통하여 새로운 항진균 물질이 개발될 수 있으며, 나아가 다양한 제제화 연구와 용도 개발 연구를 통하여 새로운 제제로서의 기능성을 확인하여야 할 것으로 판단된다.
BCNU 2003의 항진균 활성물질을 분리하기 위해 더욱 구체적인 연구가 필요한 것으로 사료된다. 이들 기초 연구를 통하여 새로운 항진균 물질이 개발될 수 있으며, 나아가 다양한 제제화 연구와 용도 개발 연구를 통하여 새로운 제제로서의 기능성을 확인하여야 할 것으로 판단된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
진균류는 언제 진균증을 일으키는가?
제약 및 의약분야에서 미생물유래 천연생리활성 물질의 연구가 가장 활발하게 이루어지는 분야는 인체에 여러가지 감염을 일으키는 감염증 치료를 포함하는 항생물질에 관한 연구이다[12]. 특히 진균류는 인체의 면역 기능이 약화되었거나, 항생물질, 호르몬류 또는 항암제 등의 과용으로 인하여 항생물질에 대한 내성이 생겼을 때 여러 가지 진균증을 일으키는데[1,2], Candida sp.에 의한 칸디다증(candidiasis), Aspergillus sp.
의약용 항생제중에서 Polyene 계열은 무엇인가?
현재 임상용으로 사용하고 있는 많은 의약용 항생제들이미생물 유래 천연생리활성물질에서 그 선도물질이 분리되었으며, 그 외에도 다양한 유효성분에 대한 연구가 국내외 학계에서 꾸준히 진행되고 있다[24]. Polyene 계열은 다양한 Streptomyces 종에서 발견된 천연 항진균제로서 ergosterol과 복합체를 형성하여 곰팡이 세포막을 약화시키는 광범위 항진균제이며, cispentacin은 Bacillus cereus에서 분리한 화합물이다[11]. 그밖에도 amphotericin B, flucytosine 및 griseofulvin 등이 천연항진균제로 널리 사용되고 있다.
진균증의 대표적인 것에는 무엇이 있는가?
제약 및 의약분야에서 미생물유래 천연생리활성 물질의 연구가 가장 활발하게 이루어지는 분야는 인체에 여러가지 감염을 일으키는 감염증 치료를 포함하는 항생물질에 관한 연구이다[12]. 특히 진균류는 인체의 면역 기능이 약화되었거나, 항생물질, 호르몬류 또는 항암제 등의 과용으로 인하여 항생물질에 대한 내성이 생겼을 때 여러 가지 진균증을 일으키는데[1,2], Candida sp.에 의한 칸디다증(candidiasis), Aspergillus sp.에 의한 국균증(aspegillosis), Crytococcus neoformans에 의한 효모균증, Mucor sp.와 Rhizopus sp. 등에 의한 접합균류증 (zygomycosis), Epidermophyton floccosum과 Trichophyton sp.에 의한 피부사상균증(dermatophytosis) 등이 대표적인 진균증이다[4,11,13,29].
참고문헌 (33)
Butler, M. S. 2004. The role of natural product chemistry on drug discovery. J. Nat. Prod. 67, 2131-2153.
Butler, M. S. 2005. Natural products to drugs: natural product derived compounds on clinical trials. Nat. Prod. Rep. 22, 162-195.
Chomnawang, W. T., S. Surassmo, V. S. Nukoolkarn, and W. Gritasnapan. 2005. Antimicrobial effects of Thai medicinal plants against acne-inducing bacteria. J. Ethnopharmacol. 101, 330-333.
Favre, B., B. Hofbauer, K. S. Hildering, and N. S. Ryder. 2003. Comparison of in vitro activities of 17 antifungal drugs against a panel of 20 dermatophytes by using a microdilution assay. J. Clin. Microbiol. 41, 4817-4819.
Fukuda, T., A. Matsumoto, Y. Takahashi, H. Tomoda, and S. Omura 2005. Phenatic acids A and B, new potentiators of antifungal miconazole activity produced by Streptomyces sp. K03-0132. J. Antibiot. 58, 252-259.
Kane, J. and R. C. Summerbel. 1999. Trychophyton, Microsporm, Epidermophyton, and agents of superficial mycosis, In Murray, P. R. E. J. Baron, M. A. Pfaller, F. C. Tenover, and R. H. Yolken, (eds.), pp. 1275-1294, Manual of clinical microbiology. 7th eds., Washington D.C. ASM Press, USA.
Kim, P. I. and K. C. Chung. 2004. Production of an antifungal protein for control of Colletotrichum lagenarium by Bacillus amyloliquefaciens MET 0908. FEMS Microbiol. Lett. 234, 177-183.
Konishi, M., M. Nishio, K, Saitoh, T. Miyaki, T. Oki, and H. Kawaguchi. 1989. Cispentacin, a new antifungal antibiotic. I. Production, isolation, physico-chemical properties and structure. J. Antibiotics 42, 1749-1755.
Kumar, A., P. Saini, and J. N. Shrivastava. 2009. Production of peptide antifungal antibiotic and biocontrol activity of Bacillus subtilis. Indian J. Exp. Biol. 47, 57-62.
Larone, D. H. 1995. Medically important fungi. 3rd eds., pp. 9, AMP Press, Washington, D.C. USA.
Lee, D. H., S. R, Park, T. C. Kwon, and H. K. Jung. 1991. A water-soluble antifungal antibiotic from Streptomyces sp. LAM-593. J. Kor. Agric. Chem. Soc. 34, 180-186.
Lee, H. J., K. H. Park, J. H. Shim, R. D. Park, Y. W. Kim, H. Hwangbo, J. Y. Cho, Y. C. Kim, and K. Y. Kim. 2005. Isolation and identification of low milecuar weight compounds produced by Bacillus subtilis HJ927 and their biocontrol effect on the late blight of pepper (Capsicum annuum L.). J. Soil Sci. Fert. 38, 25-31.
Lee, N. W., C. S. Kim, J. H. Do, I. C. Jung, H. W. Lee, and D. H. Yi. 1998. Isolation and identification of Bacillus sp. LAM 97-44 producing antifungal antibiotics. Agric. Chem. Biotech. 41, 208-212.
Lee, S. G. 2003. Antimicrobial effect of Bamboo (Phyllosrachys bambusoides) essential oil on Trichophyton and Pityrosporum. J. Food Hyg. Safety 18, 113-117.
National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2004. Methods for antimicrobial susceptibility testing of anaerobic acteria: Approved Standard. 6th eds., Vol. 24, NCCLS Document M11-A6. Pennsylvania, USA.
National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2002. Reference methods for broth dilution antifungal susceptibility testing of yeasts: Approved Standard. 2nd eds., Vol. 22, NCCLS Document M27-A2. Pennsylvania. USA.
Ruhnke, M., A. Schmidt-Westhausen, E. Engelmann, and M. Trautmann. 1996. Comparative evaluation of three antifungal susceptibility test methods for Candida albicans isolates and correlation with response to fluconazole therapy. J. Clin. Microbiol. 34, 3208-3211.
Saito, N. and M. Nei. 1987. The neighbor-joining method, a new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol. Biol. Evol. 79, 426-434.
Shadomy, S., H. J. Shadomy, and G. E. Wagmer. 1977. Antifungal compounds, In Siegel, M. R. and D. S. HughI (eds.), pp. 437, Dekker, New York, USA.
Shibazaki, M., T. sugawara, Y. Shimizu, H. Yamaguchi, and K. Suzuki. 1996. YM-47522, a novel antifungal antibiotic produced by Bacillus sp. I. Taxonomy, fermentation, isolation and biological properties. J. Antibiot. 49, 340-344.
Tawara, S., S. Matsumoto, T. Hirose, Y. Matsumoto, S. Nakamoto, and M. Mitsuno. 1989. In vitro antifungal synergism between pyrrolnitrin and clotrimazole. Med. Mycol. 30, 202-210.
Thompson, J. D., D. G. Higgins, and T. J. Gibson. 1994. CLUSTAL W: Improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nuclic Acids Res. 22, 4673-4680.
Tortorano, A. M., M. A. Viviani, F. Barchiesi, D. Arzeni, A. L. Rigoni, and M. Cogliat. 1998. Comparison of three methods for testing azole susceptibilities of Candida albicans strains isolated sequentially from oral cavities of AIDS patients. J. Clin. Microbiol. 36, 1578-1583.
Yu, G. Y., J. B. Sinclair, G. L. Hartman, and B. L. Bertagnolli. 2002. Production of iturin A by Bacillus amyloliquefaciens suppressing Rhizoctonia solani. Soil Biol. Biochem. 34, 955-963.
Whipps, J. M. 1987. Effect of media on growth and interactions between a range of soil-borne glasshouse pathogens and antagonistic fungi. New Phytol. 107, 127-142.
Wong, J. H., J. Hao, Z. Cao, M. Qiao, H. Xu, Y. Bai, and T. B. Ng. 2008. An antifungal protein from Bacillus amyloliquefaciens. J. Appl. Microbiol. 105, 1888-1898.
Zhao, Z., Q. K. Wang, K. Brian, C. Liu, and Y. Gu. 2010. Study of the antifungal activity of Bacillus vallismortis ZZ185 in vitro and identification of its antifungal components. Bioresour. Technol. 101, 292-297.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.