본 연구에서는 서리태 에탄올 추출물의 항산화 활성을 측정하고, 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량을 분석하였으며, MTT 및 SRB assay를 통한 암세포 증식 억제 활성을 측정하였다. 서리태 에탄올 추출물의 DPPH 및 ABTS 라디칼에 대한 전자공여능은 500 ${\mu}g$/assay의 농도에서 각각 63.75%와 87.68%로 나타났고, $IC_{50}$ 값은 각각 385.39 ${\mu}g$/assay와 209.39 ${\mu}g$/assay로 나타났으며, 항산화 활성 물질로 알려져 있는 총 폴리페놀 함량과 총 플라보노이드 함량은 각각 1.65 mg/g과 0.59 mg/g으로 분석되었다. 또한 서리태 에탄올 추출물(800 ppm)은 MTT assay에서 인체 폐암세포인 A-549에 대해 76.48%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었고, SRB assay에서 인체 자궁암세포인 HeLa에 대해 80.54%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었다. 이들 결과는 서리태 에탄올 추출물이 높은 항산화 활성과 우수한 암세포 증식 억제 활성을 가지고 있음을 나타낸 것으로 서리태 에탄올 추출물의 천연 기능성 소재로서의 이용 가능성을 보여주었다.
본 연구에서는 서리태 에탄올 추출물의 항산화 활성을 측정하고, 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량을 분석하였으며, MTT 및 SRB assay를 통한 암세포 증식 억제 활성을 측정하였다. 서리태 에탄올 추출물의 DPPH 및 ABTS 라디칼에 대한 전자공여능은 500 ${\mu}g$/assay의 농도에서 각각 63.75%와 87.68%로 나타났고, $IC_{50}$ 값은 각각 385.39 ${\mu}g$/assay와 209.39 ${\mu}g$/assay로 나타났으며, 항산화 활성 물질로 알려져 있는 총 폴리페놀 함량과 총 플라보노이드 함량은 각각 1.65 mg/g과 0.59 mg/g으로 분석되었다. 또한 서리태 에탄올 추출물(800 ppm)은 MTT assay에서 인체 폐암세포인 A-549에 대해 76.48%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었고, SRB assay에서 인체 자궁암세포인 HeLa에 대해 80.54%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었다. 이들 결과는 서리태 에탄올 추출물이 높은 항산화 활성과 우수한 암세포 증식 억제 활성을 가지고 있음을 나타낸 것으로 서리태 에탄올 추출물의 천연 기능성 소재로서의 이용 가능성을 보여주었다.
The antioxidant activity and cytotoxic effect of an ethanol extract from Seoritae were analyzed to develop new functional food materials. The antioxidant activity of Seoritae was determined by measuring electron donating ability with 1,1-diphenyl-2picrylhydrazyl (DPPH) and 2-2'-azino-bis (3-ethylben...
The antioxidant activity and cytotoxic effect of an ethanol extract from Seoritae were analyzed to develop new functional food materials. The antioxidant activity of Seoritae was determined by measuring electron donating ability with 1,1-diphenyl-2picrylhydrazyl (DPPH) and 2-2'-azino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS) assays, as well as the ferric reducing antioxidant power (FRAP) assay. The cytotoxic effect of the Seoritae ethanol extract was measured with the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-dipheltetrazolium (MTT) and sulforhodamine B (SRB) assays. As a result, the electron donating abilities of Seoritae against the DPPH and ABTS radicals were 63.75% and 87.68% at 500 ${\mu}g$/assay, respectively. The $IC_{50}$ values of Seoritae in the DPPH and ABTS assays were 385.39 ${\mu}g$/assay (128.46 ${\mu}g/mL$) and 209.39 ${\mu}g$/assay (51.83 ${\mu}g/mL$). Additionally, the FRAP value of Seoritae was 0.84 $FeSO_4$ eq. mM at 800 ${\mu}g$/assay. The total amounts of polyphenols and flavonoids, which indicate the antioxidant capability of Seoritae extract were 1.65 mg/g and 0.59 mg/g, respectively. Moreover, Seoritae extract showed a high cytotoxic effect of up to 81% against human cancer cells, particularly A-549 and HeLa cells. The growth inhibition rate of Seoritae extract against A-549 and HeLa cells was up to 76.48% and 75.67% in the MTT assay, and 78.98% and 80.54% in the SRB assay, respectively. The results of this study suggest that an ethanol extract of Seoritae is a potentially good natural antioxidant.
The antioxidant activity and cytotoxic effect of an ethanol extract from Seoritae were analyzed to develop new functional food materials. The antioxidant activity of Seoritae was determined by measuring electron donating ability with 1,1-diphenyl-2picrylhydrazyl (DPPH) and 2-2'-azino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS) assays, as well as the ferric reducing antioxidant power (FRAP) assay. The cytotoxic effect of the Seoritae ethanol extract was measured with the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-dipheltetrazolium (MTT) and sulforhodamine B (SRB) assays. As a result, the electron donating abilities of Seoritae against the DPPH and ABTS radicals were 63.75% and 87.68% at 500 ${\mu}g$/assay, respectively. The $IC_{50}$ values of Seoritae in the DPPH and ABTS assays were 385.39 ${\mu}g$/assay (128.46 ${\mu}g/mL$) and 209.39 ${\mu}g$/assay (51.83 ${\mu}g/mL$). Additionally, the FRAP value of Seoritae was 0.84 $FeSO_4$ eq. mM at 800 ${\mu}g$/assay. The total amounts of polyphenols and flavonoids, which indicate the antioxidant capability of Seoritae extract were 1.65 mg/g and 0.59 mg/g, respectively. Moreover, Seoritae extract showed a high cytotoxic effect of up to 81% against human cancer cells, particularly A-549 and HeLa cells. The growth inhibition rate of Seoritae extract against A-549 and HeLa cells was up to 76.48% and 75.67% in the MTT assay, and 78.98% and 80.54% in the SRB assay, respectively. The results of this study suggest that an ethanol extract of Seoritae is a potentially good natural antioxidant.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
이밖에도 검은콩 종피에서 추출한 안토시아닌의 항산화 효과(Kim YH 등 2006, Sohn Jh 등 2001) 및 암세포 독성(Kim YH 등 2008) 등에 대해 보고된 바 있으며, 가공식품의 제조에 있어서 검정콩으로 제조한 청국장과 메주의 항산화 및 아질산염 소거 효과에 대해 보고된 바 있으나(지희연 등 2007) 서리태의 항암 활성 등 생리활성에 대한 연구는 미비한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 서리태의 항산화 활성을 측정하고 항산화 작용물질로 알려진 폴리페놀 및 플라보노이드 함량을 분석하며 암세포에 대한 증식 억제능력을 측정함으로써 서리태의 생리활성을 탐색하고 기능성식품 소재로서의 기초 자료를 얻고자 하였다.
가설 설정
2) NS means that there is not significant difference among the different concentrations of BHA.
2) The different capital letters (A~C) mean significant difference among the cancer cell lines at the same concentration of the ethanol extract (row) (p<0.05).
2) The different small letters (a~e) mean significant difference among the different concentrations (column) (p<0.05).
3) The different small letters (a~d) mean significant difference among the different concentrations (column) of the ethanol extract in the same cancer cell line (p<0.05).
4) The different small letters (a~e) mean significant difference among the different concentrations (column) of the sample (p<0.05).
제안 방법
증류수로 최종부피를 25 mL로 맞춘 후 상온에서 2시간 동안 반응시키고 750 nm에서 흡광도를 측정하였다. Gallic acid를 이용하여 작성된 검량곡선을 통하여 총 폴리페놀 함량을 구하였다.
3 mL를 혼합한 후 40분간 방치한 다음 510 nm에서 흡광도를 측정하였다. Quercetin을 이용하여 작성된 검량곡선을 통하여 총 플라보노이드 함량을 측정하였다.
5)에 용해시킨 시료 40 µL를 혼합한 다음 정확히 1분간 반응시킨 후 413 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조군으로는 BHA를 사용하였고, DPPH 라디칼에 대한 전자공여능과 동일한 식을 이용하여 ABTS 라디칼에 대한 전자공여능과 IC50 값을 산출하였다.
이 밖에도 Xu JR 등(2007)에 의해 보고된 검정콩의 항산화 활성에 관한 연구 결과에 의하면 검정콩의 폴리페놀 물질과 안토시아닌이 검정콩의 항산화 활성과 양의 상관관계를 가진다고 하였다. 따라서 본 연구에서 사용된 시료인 서리태 에탄올 추출물의 항산화 활성은 항산화 물질로 알려져 있고 hydroxyl group을 포함하는 폴리페놀과 플라보노이드 화합물과 관련이 있는 것으로 사료되어 서리태 에탄올 추출물의 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량을 측정하였다.
본 연구에서는 서리태 에탄올 추출물의 항산화 활성을 측정하고, 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량을 분석하였으며, MTT 및 SRB assay를 통한 암세포 증식 억제 활성을 측정하였다. 서리태 에탄올 추출물의 DPPH 및 ABTS 라디칼에 대한 전자공여능은 500 µg/assay의 농도에서 각각 63.
서리태 추출용매와 추출조건은 선행연구들을 참고하여 정하였다(Kim SH 등 1994, Han SH 등 2006, Park YO와 Lim HS 2009). 서리태 100 g을 분쇄한 후 70% 에탄올 500 mL를 가하여 항온수조(37℃)에서 12시간 추출하는 과정을 총 4회 실시한 후 여과지(Toyo No. 2, Advantec, Japan)로 여과하였다. 이 여과액을 회전감압농축기(EYELA, Rikakiki, Co.
서리태 에탄올 추출물의 ABTS 라디칼 소거능은 Re R 등(1999)의 방법을 변형하여 측정하였다. 증류수에 용해시킨 7 mM ABTS 용액과 2.
서리태 추출물의 암세포 증식 억제 활성을 검색하기 위하여 A-549, G-361, HeLa, MCF-7을 이용하여 MTT와 SRB 분석을 수행하였다.
시료의 농도에 대한 전자공여능(%)의 식을 이용하여 자유 라디칼의 활성을 50%로 저해하는데 필요한 농도인 IC50 값 또한 산출하였다.
암세포를 96 well plate의 각 well에 5×10⁴ cell/mL 농도로 100 µL씩 첨가하여 24시간 동안 37℃, 5% CO2 조건에서 배양한 후, 각 well당 시료를 100 µL씩 첨가하여 48시간 동안 37℃, 5% CO2에서 재배양하였다.
대상 데이터
(USA)로부터, fetal bovine serum(FBS)은 Gibco BRL(NY, USA)로부터, FeSO4·7H2O는 Duksan(Seoul, Korea)으로부터 각각 구입하여 사용하였다.
5×10⁻⁵ M DPPH 용액 2 mL를 혼합하여 항온수조(37℃)에서 30분간 반응시킨 후 UV/Visible Spectrophotometer(Beckman, USA)를 사용하여 517 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조군으로는 BHT를 사용하였고, 시료의 DPPH 라디칼에 대한 전자공여능은 아래의 식에 측정된 흡광도 값을 대입하여 산출하였다.
본 실험에서 사용한 서리태는 포항시 숙장면에서 수확된 것으로 국내에서 시판되는 제품을 사용하였다.
암세포 억제 활성을 검색하기 위하여 A-549(인체 폐암세포), G-361(인체 피부암세포), HeLa(인체 자궁암세포), MCF-7(인체 유방암세포)를 한국세포주은행(KCLB)으로부터 분양받아 사용하였다. 세포 배양액으로는 10% FBS와 1% penicillin-K-streptomycin이 첨가된 RPMI 1640을 사용하였다. 배양액에 분주된 세포주는 37℃, 5% CO2 배양기에서 배양하여 실험에 사용하였다.
암세포 억제 활성을 검색하기 위하여 A-549(인체 폐암세포), G-361(인체 피부암세포), HeLa(인체 자궁암세포), MCF-7(인체 유방암세포)를 한국세포주은행(KCLB)으로부터 분양받아 사용하였다. 세포 배양액으로는 10% FBS와 1% penicillin-K-streptomycin이 첨가된 RPMI 1640을 사용하였다.
데이터처리
본 연구의 실험결과는 SPSS(v. 14.0) 프로그램을 이용하여 유의성을 검정하였다. 시료의 농도에 따른 항산화 활성 및 암세포 증식 억제 활성의 농도간, 세포주간의 유의성은 Duncan's multiple range test(p<0.
시료의 농도에 따른 항산화 활성 및 암세포 증식 억제 활성의 농도간, 세포주간의 유의성은 Duncan's multiple range test(p<0.05)를 이용한 one-way ANOVA를 실시하였고, 시료의 항산화활성과 대조구로 사용된 합성 항산화제 간의 유의성은 Student's t-test를 실시하여 검정하였다.
이론/모형
FRAP assay는 Benzie F와 Strain J(1999)의 방법을 사용하였다. FRAP reagent는 37℃에서 300 mM의 acetate buffer(pH 3.
서리태 에탄올 추출물의 MTT assay는 Carmichael J 등(1987)의 방법을 이용하여 측정하였다. 우선 1×10⁴ cells/mL의 농도로 희석한 암세포 180 µL를 96 well plate의 각 well에 분주하고 5% CO2 배양기에서 37℃로 24시간 선배양하였다.
서리태 에탄올 추출물의 SRB assay는 Doll R과 Peto R(1981)의 방법을 이용하여 측정하였다. 암세포를 96 well plate의 각 well에 5×10⁴ cell/mL 농도로 100 µL씩 첨가하여 24시간 동안 37℃, 5% CO2 조건에서 배양한 후, 각 well당 시료를 100 µL씩 첨가하여 48시간 동안 37℃, 5% CO2에서 재배양하였다.
서리태 에탄올 추출물의 전자공여능은 Blois MS(1958)의 방법으로 측정하였다. 0.
서리태 에탄올 추출물의 플라보노이드 함량은 Nieva Moreno MI 등(2000)의 방법으로 측정되었다. 1 M aqueous potassium acetate 0.
총 폴리페놀 함량은 Folin-Ciocalteu(FC)법(Pellegrini N 등 1999)에 의해 측정되었다. 증류수 5 mL와 시료 1 mL, FC reagent 0.
800 ppm에서 A-549와 HeLa에 대한 서리태 에탄올 추출물의 암세포 증식 억제 활성은 각각 76.48%와 75.67%로 나타나 G-361와 MCF-7에 대한 암세포 증식 억제 활성에 비해 유의적으로 높게 나타났다(p<0.05).
22 FeSO₄ eq. mM(4,400 mM/g)의 환원력을 나타내어 서리태 에탄올 추출물의 환원력이 더 높은 것으로 나타났다. 또한 Choi JI 등(2009)에 의해 보고된 칠면초 열수 추출물의 경우 0.
31 FeSO₄ eq. mM의 환원력을 보여 서리태 에탄올 추출물의 환원력이 더 높은 것으로 나타났다.
59 mg/g으로 분석되었다. 또한 서리태 에탄올 추출물(800 ppm)은 MTT assay에서 인체 폐암세포인 A-549에 대해 76.48%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었고, SRB assay에서 인체 자궁암세포인 HeLa에 대해 80.54%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었다. 이들 결과는 서리태 에탄올 추출물이 높은 항산화 활성과 우수한 암세포 증식 억제 활성을 가지고 있음을 나타낸 것으로 서리태 에탄올 추출물의 천연 기능성 소재로서의 이용 가능성을 보여주었다.
본 실험의 서리태 에탄올 추출물은 500 µg/assay(166.67 ppm)에서 63.75%의 전자공여능을 나타낸 반면, Myung JE와 Hwang IK(2008)의 연구에서는 400 ppm의 청자콩 에탄올 추출물의 전자공여능이 22.1%로 보고되어 콩의 종류에 따라 전자공여능에 차이가 있음을 볼 수 있었으며, 서리태의 전자공여능이 비교적 높음을 확인할 수 있었다.
서리태 에탄올 추출물에 함유된 총 폴리페놀 함량과 총 플라보노이드 함량은 각각 1.65±0.29 mg/g과 0.59±0.11 mg/g으로 나타났다(Table 4).
서리태 에탄올 추출물은 200 µg/assay(64.52 µg/mL)의 농도에서 가장 낮은 환원력을 나타내었고, 400 µg/assay(129.03 µg/mL) 이상의 농도에서 환원력이 증가하여 800 µg/assay(258.08 µg/mL)의 농도에서는 가장 높은 환원력인 0.84 FeSO₄ eq.
서리태 에탄올 추출물은 A-549, G-361, HeLa, MCF-7 세포 모두에 대하여 600 ppm의 농도에서 암세포 증식 억제 활성이 크게 증가하기 시작하여 800 ppm의 농도에서 가장 높은 암세포 증식 억제 활성을 나타내었다. 800 ppm에서 A-549와 HeLa에 대한 서리태 에탄올 추출물의 암세포 증식 억제 활성은 각각 76.
서리태 에탄올 추출물은 가장 낮은 농도인 50 ppm에서 MCF-7(0.34%)에 대한 암세포 증식 억제 활성이 가장 낮게 나타났으며, G-361(7.33%)에 비해서도 A-549(25.77%)와 HeLa(28.93%)에 대한 암세포 증식 억제 활성이 유의적으로 높게 나타났다(p<0.05).
서리태 에탄올 추출물의 DPPH 및 ABTS 라디칼에 대한 전자공여능은 500 µg/assay의 농도에서 각각 63.75%와 87.68%로 나타났고, IC50 값은 각각 385.39 µg/assay와 209.39 µg/assay로 나타났으며, 항산화 활성 물질로 알려져 있는 총 폴리페놀 함량과 총 플라보노이드 함량은 각각 1.65 mg/g과 0.59 mg/g으로 분석되었다.
이러한 양상은 가장 높은 농도인 800 ppm에서도 유사하게 나타났다. 서리태 에탄올 추출물의 HeLa(80.54%)와 A-549(78.98%)에 대한 암세포 증식 억제 활성이 G-361(56.96%)와 MCF-7(56.86%)에 대한 암세포 증식 억제 활성보다 유의적으로 높아, 인체 폐암세포인 A-549와 인체 자궁암세포인 HeLa는 서리태 에탄올 추출물 대한 감수성이 높음을 알 수 있었다. 한편 사삼으로 알려져 있는 한약재인 잔대의 에탄올 추출물은 1,000 ppm의 농도에서 HeLa와 MCF-7에 대한 암세포 증식 억제능이 각각 78.
서리태 에탄올 추출물의 농도별 전자공여능을 측정한 결과는 Table 1과 같다. 서리태 에탄올 추출물의 농도가 증가할수록 전자공여능도 함께 증가하였다. 300 µg/assay 이하의 농도에서는 서리태 에탄올 추출물의 전자공여능이 50% 미만으로 나타났으나, 400µg/assay의 농도에서는 51.
서리태 에탄올 추출물의 각 암세포에 대한 농도별 암세포 증식 억제 활성을 측정한 결과는 Table 6과 같다. 서리태 에탄올 추출물의 암세포 증식 억제 활성은 4가지 암세포 모두에 대하여 600 ppm의 농도에서 암세포 증식 억제 활성이 증가하기 시작하여 800 ppm의 농도에서 가장 높은 암세포 증식 억제 활성을 나타냄으로써 앞에서 MTT법으로 측정한 암세포 증식 억제 활성의 결과와 동일한 양상을 나타내었다. 서리태 에탄올 추출물은 가장 낮은 농도인 50 ppm에서 MCF-7(0.
54%의 암세포 증식 억제 활성을 나타내었다. 이들 결과는 서리태 에탄올 추출물이 높은 항산화 활성과 우수한 암세포 증식 억제 활성을 가지고 있음을 나타낸 것으로 서리태 에탄올 추출물의 천연 기능성 소재로서의 이용 가능성을 보여주었다.
특히 서리태 에탄올 추출물의 농도가 100 µg/assay에서 200 µg/assay으로 증가함에 따라 ABTS 라디칼에 대한 소거 활성이 2배 이상 증가하여 항산화 활성의 증가폭이 상당히 높았다.
후속연구
Moon 등(2003)에 의한 측정방법에 따른 콩 성분의 항산화 효과 비교에서는 DPPH법으로 항산화 활성을 측정했을 때 gentisic acid와 syringic acid, ferulic acid 등의 phenolic acid의 활성이 높게 나타났고 isoflavones의 효과는 매우 낮게 나타난 것으로 보고되었다. 이와 같은 선행 연구 결과들을 고려할 때 서리태 에탄올 추출물에서도 폴리놀 및 플라보노이드 화합물 이외에 phenolic acid와 토코페롤 등이 항산화 활성에 영향을 줄 수 있는 것으로 사료되었으며, 항산화 활성을 가지고 있는 서리태 성분에 대한 연구들이 더 이루어져야 할 것으로 보인다. 또한, 항산화 활성에 영향을 미치는 이들 물질들은 항산화 활성뿐만 아니라 산화적 DNA의 손상을 막아 여러 항돌연변이와 항암 활성 등에 유익한 물질로 보고되어 있다(Wei H 등 1993, Wei H 등 1996).
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
검정콩은 예로부터 어떻게 사용해왔다고 보고되었는가?
검정콩은 콩과(Leguminosae)에 속하며 특정한 한 종류의 콩을 가리키는 것이 아니라 검은빛을 띄는 콩을 총칭하는 말이며 ‘흑태(黑太)’, ‘서리태’, ‘서목태(鼠目太)’가 이에 속한다. 예로부터 대두권(大豆券) 또는 대두벽(大豆蘗)이라고도 불리는 대두황권(大豆黃卷)으로 만들어 약으로도 사용해왔고, 중국 명나라 때의 약학 서적인 ‘본초강목’에 검은콩은 신장을 다스리며 혈액순환을 돕고 해독작용을 한다고 기록되어 있으며, 노인성 치매예방에도 효과가 있다고 보고되었다(Shin HC 등 2001). 콩은 항산화 능력이 뛰어난 것으로 알려져 있는데 검정콩이 황색콩이나 녹색콩보다 항산화력이 더 높은 것으로 보고되었다(Myung JE와 Hwang OK 2008).
활성 산소종은 무엇에 의해 생성되는가?
활성 산소종(reactive oxygen species)은 대부분의 전자운반 과정 혹은 에너지대사 과정 중 불완전하게 환원되거나 cytokine 등 다양한 작용의 자극에 의해 생성된다. 정상적인 경우에는 체내에 존재하는 항산화 시스템에 의해 활성 산소종이 제거되지만 이 시스템의 작동이 원활하지 못하면 세포는 산화적 손상을 입게 된다.
검정콩에 속하는 것들은 무엇인가?
콩의 원산지는 한반도와 동북아시아 일대라고 알려져 있고, 우리나라에서 콩을 재배한 지는 4,000여년이 넘었으며(Sohn Jh 등 2001), 현재에도 콩은 주식과 부식으로 널리 이용되고 있다. 검정콩은 콩과(Leguminosae)에 속하며 특정한 한 종류의 콩을 가리키는 것이 아니라 검은빛을 띄는 콩을 총칭하는 말이며 ‘흑태(黑太)’, ‘서리태’, ‘서목태(鼠目太)’가 이에 속한다. 예로부터 대두권(大豆券) 또는 대두벽(大豆蘗)이라고도 불리는 대두황권(大豆黃卷)으로 만들어 약으로도 사용해왔고, 중국 명나라 때의 약학 서적인 ‘본초강목’에 검은콩은 신장을 다스리며 혈액순환을 돕고 해독작용을 한다고 기록되어 있으며, 노인성 치매예방에도 효과가 있다고 보고되었다(Shin HC 등 2001).
참고문헌 (53)
오상진. 2005. 인체노화. 탐구당. 서울. pp 204-205
지희연, 김선림, 허온숙. 2007. 검정콩으로 제조한 청국장과 메주의 항산화 효과 및 아질산염 소거효과. 한국작물학회 학술발표대회 논문집 11(1):258
Arai S, Morinaga Y, Yoshika T, Ichiishi E, Kiso Y, Yamazaki M. 2002. Recent trends in functional foods science and industry in Japan. Biosci Biotechnol Biochem 66(10):2017-2029
Astadi IR, Astuti M, Santoso U, Nugraheni PS. 2009. In vitro antioxidant activity of anthocyanins of black soybean seed coat in human low density lipoprotein (LDL). Food Chem 112(3):659-663
Bae EA, Moon GS. 1997. A study on the antioxidative of Korean soybeans. J Korean Soc Food Sci Nut 26(2):203-208
Bandoniene D, Pukalskas A, Venskutomis PR, Gruzdiene D. 2000. Preliminary screening of antioxidants of some plants extracts in rapeseed oil. Food Res Intl 23:785-791
Benzie F, Strain J. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": The FRAP assay. Anal Biochem 239(1):70-76
Blois MS. 1958. Antioxidant determination by use of a stable free radical. Nature 81(4617):1199-1200
Brand-Williams W, Cubelier ME, Berset C. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. Lebensmittel-Wissenschaft und-Technologie 28(1):25-30
Carmichael J, Degraff WG, Gazdar AF, Minna JD, Mitchell JB. 1987. Evaluation of a tetrazolium-based semiautomated colorimetric assay : Assessment of chemosensitivity testing. Cancer Res 47:936-942
Cheng Z, Ren J, Li Y, Chang W, Chen Z. 2002. Study on the multiple mechanisms underlying the reaction between hydroxyl radical and phenolic compounds by qualitative structure and activity relationship. Bioorg Med Chem 10:4067-4073
Choi JI, Kim YJ, Kim JH, Song BS, Yoon YH, Byun MW, Kwon JH, Chun SS, Lee JW. 2009. Antioxidant Activities of the Extract Fractions from Suaeda japonica. J Korean Soc Food Sci Nut 38(2):131-135
Doll R, Peto R. 1981. The causes of cancer : quantitative estimates of avoid able risks of cancer in the united states today. J Natl Cancer Inst 66(6):1191-1308
Han SH, Woo NRY, Lee SD, Kang MH. 2006. Antioxidative and antibacterial activities of endemic plants extracts in Korea. Korean J Medicinal Crop Sci 14(1):49-55
Ham YA, Choi HJ, Kim SH, Chung MJ, Ham SS. 2009. Antimutagenic and anti tumor effect of Adenophora triphylla extracts. J Korean Soc Food Sci Nut 38(1):25-31
Ito N, Fukushima S, Hagiwara A, Shibata M, Ogiso T. 1983. Carcinogenicity of butylated hydroxyanisole in F344 rats. J Natl Cancer Inst 70(2):343-352
Jeon YH, Kil JH, Lim SM, Kim MH, Kim MR. 2008a. Analysis of antioxidative activity and antimutagenic effect of ethanol extract from Schizandra Chinensis Baillon. J East Asian Soc Dietary Life. 18(5):746-752
Jeon YH, Kim MH, Kim MR. 2008b. Antioxidative, antimutagenic, and cytotoxic activities of ethanol extracts from Cornus Officianalis. J Korean Soc Food Sci Nut 37(1):1-7
Jeong JA, Kwon SH, Kim YJ, Shin CS, Lee CH. 2007. Investigation of antioxidative and tryosinase inhibitory activities of the seed extracts. Korean J Plant Res 20(2):177-184
Jung SJ, Lee JH, Song HN, Seong NS, Lee SE, Beak NI. 2004. Screening for antioxidant activity of plant medicinal extracts. J Korean Soc Appl Bio Chem 47(1):135-140
Kanatt SR, Chander R, Radhakrishna P, Sharma A. 2005. Potato peel extract a natural antioxidant for retarding lipid peroxidation in radiation processed lamb meat. J Agric Food Chem 53:1499-1504
Kim HS, Hong MJ, Kang IY, Jung JY, Kim HK, Shin YS, Jun HJ, Suh JK, Kang YH. 2009. Radical scavenging activities and antioxidant constituents of oriental melon extract. J Bio-Environment Control 18(4):442-447
Kim KS, KimMJ, Lee KA, Kwon DY. 2003. Physico-chemical properties of Korean traditional soybeans. J Korean Food Sci Technol 35(3):335-341
Kim MH, Kim JB, Lee SY, Kim CY, Lee JR. 2008. Quantification of tocopherols and phytosterols from the Korean native soybeans germplasm. Korean J Intl Agri 20(4):296-300
Kim SA, Kim J, Woo MK, Kwak CS, MS Lee. 2005. Antimutagenic and cytotoxic effecs of ethanol extracts from five kinds of seaweed. J Korean Soc Food Sci Nut 34(4):451-459
Kim SH, Kwon TW, Lee YS, Choung MG, Moon GS. 2005. A major antioxidative components and comparison of antioxidative activities in black soybean. J Korean Food Sci Technol 37(1):73-77
Kim SH, Lim SB, Ko YH, Oh CK, Oh MC, Park CS. 1994. Extraction yields of Hizikia fusiforme by solvents and their antimicrobial effects. Bull Korean Fish Soc 27(5):462-468
Kim YH. 1999. Chemical composition and hardness of black-colored soybean seed. Soonchunhyang J Nat Sci 5(2):301-306
Kim YH, Lee JH, Lee YS, Yun HT . 2006. Antioxidant activity and extraction efficiency of anthocyanin pigments in black colored soybean. Korea Soybean Diegest 23(1):1-9
Kim YH, Kim DS, Woo SS, Kim HH, Lee YS, Kim HS, Ko KO, Lee SK. 2008. Antioxidant activity and cytotoxicity on human cancer cells of anthocyanin extracted from black soybean. J Korean Crop Sci 53(4):407-412
Kusunoki T, Higashi H, Hosai S, Hata D, Sugie K, Mayumi M, Migawa H. 1992. Tryosine phosphorylation and its possible role in superoxide production by human neutrophils stimulated with FMLP and IgG. Biochem Biophys Res Com 183:789-796
Lee HS, Lee HA, Hong CO, Yang SY, Hong SY, Park SY, Lee HJ, Lee KW. 2009. Quantification of caffeic acid and rosmarinic acid and antioxidant activities of hot-water extracts from leaves of Perilla frutescens. J Korean Food Sci Technol 41(3):302-306
Lee SE, Seong NS, Park CG, Seong JS. 2002. Screening for antioxidative activity of oriental medicinal plant materials. J Korean Medicinal Crop Sci 10(3):171-176
Liu BG, Yang JG, Guo Y, Ning ZX, Gao JH. 2010. Division of antioxidant functional regions of flavonoids based on quantum chemistry analysis. 食品科學 31(15):167-170
Moon GS, Kwon TW, Ryu SH. 2003. Comparison of antioxidative activities of soybean components by different assays. Korean Soybean Digest 20(1):28-36
Myung JE, Hwang IK. 2008. Functional components and antioxidative activities of soybean extracts. Korea Soybean Digest 25(1):23-29
Nieva Moreno MI, Isla MI, Sampietro AR, Vattuone MA. 2000. Comparison of the free radical-scavenging activity of propolis from several regions of Argentina. J Ethnopharmacol 71:109-114
Park YO, Lim HS. 2009. Antioxidant acticities of bamboo (Sasa Borealis) leaf extract according to extraction solvent. J Korean Soc Food Sci Nutr 38(12):1640-1648
Pellegrini N, Re R, Yang M, Rice-Evans C. 1999. Screening of dietary carotenoids and carotenoid-rich fruit extracts for antioxidant activities applying, 2'-Azinobis (3-ethylenebenzo thiazoline-6-sulfonic acid) radical cation decolorization assay. Methods Enzymol 299:379-389
Plochmann K, Korte G, Koutsilieri E, Richling E, Riederer P, Rethwilm A, Schreier P, Scheller C. 2007. Structure-activity relationships of flavonoid-induced cytotoxicity on human leukemia cells. Arch Biochem Biophys 460(1):1-9
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannaia A, Yang M, Rice-Evans C. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol Med 26 (9-10):1231-1237
Rice-Ecans CA, Miller NJ, Paganga G. 1996. Inhibition of UV light and Fenton reaction-induced oxidative DNA damage by the soybean isoflavone genistein. Carcinogenesis 17:73-77
Shin HC, Sung HS, Lee YS, Sohn HS. 2001. Nutritional adequacy and beneficial effects of soy formula. Korea Soybean Digest 18:10-25
Sohn Jh, Choung MG, Choi HJ, Jang UB, Sohn GM, Byun MW, Choi C. 2001. Physiological effect of Korean black soybean pigment. J Korean Food Sci Technol 33(6):764-768
Wang SY, Lin HS. 2000. Antioxidant activity in fruits and leaves of blackberry, raspberry and strawberry varies with cultivar and developmental stage. J Agric Food Chem 48:140-146
Wei H, Cai Q, Rahn RO. 1996. Inhibition of UV light and fenton reaction-induced oxidative DNA damage by the soybean isoflavone genistein. Carcinogenesis 17:73-77
Wei H, Wei L, Frenkel K, Bowen R, Barnes S. 1993. Inhibition of tumor promotor-induced hydrogen peroxide formation in vitro and in vivo by genistein. Nutr Cancer 20:1-12
Williams GM, Iatropoulos MJ, Whysner J. 1999. Safety assessment of butylated hydroxyanisole and butylated hydroxytoluene as antioxidant food additives. Food Chem Toxicol 37:1027-1038
Xu JR, Zhang MW, Liu XH, Liu ZX, Zhang RF, Sun L, Qiu LJ. 2007. Correlation between antioxidation and the content of total phenolics and anthocyanin in black soybean accessions. Agric Sci China 6(2):150-158
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.