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유세포 분석기와 Neutral Red Retention Assay를 이용한 자연산 참굴(Crassostrea gigas)의 면역력 측정
Assessment of Immune Parameters of the Wild Pacific Oyster (Crassostrea gigas) using a Flow Cytometry and Neutral Red Retention Assay 원문보기

Ocean and polar research, v.34 no.2, 2012년, pp.137 - 149  

홍현기 (제주대학교 해양과학대학 해양의생명과학부) ,  강현실 (제주대학교 해양과학대학 해양의생명과학부) ,  김영옥 (한국해양과학기술원 남해연구소) ,  최광식 (제주대학교 해양과학대학 해양의생명과학부)

초록
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남해의 광양만과 진해만에 서식하는 자연산 참굴의 건강성 평가를 위해 세포성 면역을 담당하는 혈구의 기능들을 유세포 분석기와 Neutral Red Retention(NRR) assay를 이용하여 신속, 정확하게 측정하였다. 광양만과 진해만의 안쪽과 바깥쪽에 서식하는 자연산 참굴의 혈구를 유세포 분석기를 이용하여 형태학적 특성에 따라 혈구의 종류를 분류하고, 혈구 종류별 수, 사멸률, DNA 손상도, 식세포능을 측정하였다. 또한 NRR assay를 이용하여 혈구의 lysosomal membrane stability를 측정하였다. 참굴의 혈구는 granulocytes, hyalinocytes, blast-like cells의 세 가지 종류로 분류되었다. 조사 지역 간의 혈구의 수, 사멸률, DNA 손상도는 유의적 차이가 없었지만, 식세포율과 lysosomal membrane stability와 같은 면역 관련 기능들은 유의적 차이가 있었다. 진해만은 내만과 외만 지역에 서식하는 참굴의 혈구 면역인자들 간에는 유의적 차이가 관찰되지 않았다. 이에 반해, 광양만에 서식하는 참굴은 내만 지역의 섬진대교가 외만 지역의 평산리 지역에 서식하는 참굴보다 낮은 식세포율과 낮은 lysosomal membrane stability를 보여 면역력이 저하되어 있는 것으로 추정된다. 하지만, 해양환경 변화와 시료의 면역력과의 상관관계를 이해하기 위해서는 조사지역의 환경적 특성이나 오염정도, 그리고 시료 내의 오염물질 축적량 등의 객관적인 분석 결과와의 종합적인 고찰이 필요할 것이다. 유세포 분석기와 NRR assay를 이용한 참굴 혈구 집단의 형태 변화 및 면역능 측정 기술은 시료의 전처리 없이 빠른 시간 내에 세포의 특성을 분석할 수 있는 유용한 분석 tool로 활용될 수 있음을 확인하였다.

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Hemocyte parameters of the wild Pacific oyster Crassostrea gigas inhabiting intertidal zones in small bays (Gwangyang and Jinhae Bay) on the southern coast of Korea were evaluated using flow cytometry and neutral red retention (NRR) assay. Morphological features, cell count, mortality, DNA damage, p...

주제어

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문제 정의

  • galloprovincialis) 내의 다이옥신류인 polychlorinated dibenzo-p-dioxins(PCDDs)와 polychlorinated dibenzofurans(PCDFs), 브롬계 난연제(flame retardant)의 일종인 polybrominated diphenyl ethers(PBDEs), 그리고 nonyphenol류 물질들을 조사 비교한 결과, 진해만이 Thau lagoon보다 그 오염도가 높은 것으로 확인되었다. 다양한 외래 오염 물질 유입에 의한 광양만과 진해만의 해양생태계 변화를 진단, 평가하는 기술을 개발하여 해양생태계 정보를 공급하기 위한 기초연구로, 이 연구에서는 광양만과 진해만에 서식하는 자연산 참굴의 세포성 면역을 담당하는 혈구의 기능들을 신속, 정확하게 측정할 수 있는 방법을 최적화하여 해산이매패류 건강성 평가를 위한 분석법으로 제시하고자 한다. 광양만과 진해만의 안쪽과 바깥쪽에 서식하는 자연산 참굴의 혈구를 유세포 분석기를 이용하여 형태학적 특성에 따라 종류를 분류하고, 혈구 종류별 수, 사멸률, DNA 손상도, 식세포 작용 능력을 측정하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
미국 국립 해양 대기청에서 굴과 담치류를 지표종으로 이용하여 수행하는 대규모 해양환경 모니터링의 이름은? 그러므로 자연산 굴류의 건강도를 측정하여 해양환경의 장·단기적 변화를 파악하고, 환경 오염이 심각할 시 이들을 통해 간접적인 피해까지 유추해 볼 수 있다. 그 예로, 미국 국립 해양 대기청(National Oceanic and Atmospheric Administration, NOAA)은 1986년부터 굴과 담치류를 지표종으로 이용하여 “Mussel Watch Program”이라는 대규모 해양환경 모니터링을 실시하고 있다.
자연산 굴류란 무엇이며 그 특징은? 자연산 굴류는 조간대의 암반에 부착하여 생활하는 고착성 동물로서 해수 내 부유물을 여과 섭취하여 오염물질들을 체내에 농축하는 정도가 높으며 환경변화에 대해 생리적 안정상태(homeostasis)를 유지하기 위한 다양한 생물·생리학적 변화를 나타낸다. 그러므로 자연산 굴류의 건강도를 측정하여 해양환경의 장·단기적 변화를 파악하고, 환경 오염이 심각할 시 이들을 통해 간접적인 피해까지 유추해 볼 수 있다.
해상 원유 유출 사고로 해산 이매패류의 혈구 기능이 저하된 사례는? 또한 중금속 외에도 해상에 원유 유출 사고로 인해 해산 이매패류의 혈구 기능들이 저하된 연구들도 있다. 1996년 영국 Wales 해안에서 발생한 Sea Empress 유류 유출로 인해 진주담치(Mytilus edulis)는 혈구의 식세포능력과 과산화 이온(superoxide anion) 생산력이 줄어들었으며(Dyrynda et al. 2000), 2002년 스페인에서 발생한 Prestige 유류 유출 사고로 지중해담치(M. galloprovincialis)의 혈구 내 일산화질소(nitric oxide) 생산이 감소되었다(Novas et al. 2007).
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참고문헌 (79)

  1. Aladaileh S, Nair SV, Birch D, Raftos DA (2007) Sydney rock oyster (Saccostrea glomerata) hemocytes: Morphology and function. J Invertebr Pathol 96:48-63 

  2. Ashton-Alcox KA, Ford SE (1998) Variability in molluscan hemocytes: A flow cytometric study. Tissue Cell 30:195-204 

  3. Auffret M, Mujdzic N, Corporeau C, Moraga D (2002) Xenobiotic-induced immunomodulation in the European flat oyster, Ostrea edulis. Mar Environ Res 54:585-589 

  4. Bettencourt R, Dando P, Collins P, Costa V, Allam B, Serrao Santos R (2009) Innate immunity in the deep sea hydrothermal vent mussel Bathymodiolus azoricus. Comp Biochem Phys B 152(2):278-289 

  5. Brousseau P, Pellerin J, Morin Y, Cyr D, Blakley B, Boermans H, Fournier M (2000) Flow cytometry as a tool to monitor the disturbance of phagocytosis in the clam Mya arenaria hemocytes following in vitro exposure to heavy metals. Toxicology 142:145-156 

  6. Chavez-Villalba J, Arreloa-Lizarraga A, Burrola-Sanchez S, Hoyos-Chairez F (2010) Growth, condition, and survival of the Pacific oyster Crassostrea gigas cultivated within and outside a subtropical lagoon. Aquaculture 300:128-136 

  7. Cheng TC (1981) Bivalves. In: Ratcliffe NA, Rowly AF (eds) Invertebrate blood cells. Academic Press, London, pp 233-300 

  8. Cheng TC (2000) Cellular defense mechanisms in oysters. In: Fingerman N, Nagabhushanam (eds) Recent advances in marine biotechnology: Immunobiology and Pathology. Science Publishers, Enfield, NH, pp 43-83 

  9. Cho SM, Jeong WG (2005) Spawning impact on lysosomal stability of the Pacific Oyster, Crassostrea gigas. Aquaculture 244:383-387 

  10. Choquet G, Soudant P, Lambert C, Nicolas JL, Paillard C (2003) Reduction of adhesion properties of Ruditapes philippinarum hemocytes exposed to Vibrio tapetis. Dis Aquat Organ 57:109-116 

  11. Chu FLE (2000) Defense mechanisms of marine bivalves. In: Fingerman N, Nagabhushanam R (eds) Recent advances in marine biotechnology: Immunobiology and Pathology. Science Publishers, Enfield, NH, pp 1-42 

  12. Cima F, Marin MG, Matozzo V, Da Ros L, Ballarin, K (2000) Biomarkers for TBT immunotoxicity studies on the cultivated clam Tapes philippinarum (Adams & Reeve, 1850): Morphofunctional characterization. Fish Shellfish Immun 10:677-693 

  13. Coles JA, Farley SR, Pipe RK (1995) Alteration of the immune response of the common marine mussel Mytilus edulis resulting from exposure to cadmium. Dis Aquat Organ 22:59-65 

  14. da Silva PM, Hegaret H, Lambert C, Wikfors GH, Le Goic N, Shumway SE, Soudant P (2008) Immunological responses of the Manila clam (Ruditapes philippinarum) with varying parasite (Perkinsus olseni) burden, during a long-term exposure to the harmful algae, Karenia selliformis, and possible interactions. Toxicon 51:563-573 

  15. da Silva PM, Soudant P, Carballal MJ, Lambert C, Villalba A (2005) Flow cytometric DNA content analysis of neoplastic cells in haemolymph of the cockle Cerastoderma edule. Dis Aquat Organ 67:133-139 

  16. Darzynkiewicz Z, Crissman H, Jacobberger JW (2004) Cytometry of the cell cycle: Cycling through history. Cytom A 58:21-32 

  17. Delaporte M (2001) Effet de la qualite lipidique du regime nutritif sur la composition des membranes des hemocytes de C. gigas. Impact sur les capacites de defense. Memoire de fin d'etudes. Diplome d'etudes approfondies Biologie et Productions Animales, Option: Biologie Aquacole (Ms dissertation) Universite Rennes I-Ecole Nationale Superieure Agronomique de Rennes, 36 p 

  18. Donaghy L, Hong HK, Lee HJ, Jun JC, Park YJ, Choi KS (2010) Hemocyte parameters of the Pacific oyster Crassostrea gigas a year after the Hebei Spirit oil spill off the west coast of Korea. Helgoland Mar Res 64(4): 349-355 

  19. Donaghy L, Kim BK, Hong HK, Park HS, Choi KS (2009a) Flow cytometry studies on the populations and immune parameters of the hemocytes of the Sumino oyster, Crassostrea ariakensis. Fish Shellfish Immun 27:296-301 

  20. Donaghy L, Lambert C, Choi KS, Soudant P (2009b) Hemocytes of the carpet shell clam (Ruditapes decussatus) and the Manila clam (Ruditapes philippinarum): Current knowledge and future prospects. Aquaculture 297:10-24 

  21. Dridi S, Romdhane MS, Elcafsi M (2007) Seasonal variation in weight and biochemical composition of the Pacific oyster, Crassostrea gigas in relation to the gametogenic cycle and environmental conditions of the Bizert lagoon, Tunisia. Aquaculture 263:238-248 

  22. Dyrynda EA, Law RJ, Dyrynda PEJ, Kelly CA, Pipe RK, Ratcliffe NA (2000) Changes in immune parameters of natural mussel Mytilus edulis populations following a major oil spill ('Sea Empress', Wales, UK). Mar Ecol-Prog Ser 206:155-170 

  23. Fisher WS, Oliver LM, Winstead JT, Long ER (2000) A survey of oyster Crassostrea virginica from Tampa Bay, Florida: Association of internal defense measurements with contaminant burdens. Aquat Toxicol 51:115-138 

  24. Fisher WS, Wishkovsky A, Chu FLE (1990) Effects of tributyltin on defense-related activities of oyster hemocytes. Arch Environ Con Tox 19:354-360 

  25. Flye-Sainte-Marie J, Soudant P, Lambert C, Le Goic N, Goncalvez M, Travers MA, Paillard C, Jean F (2009) Variability of the hemocyte parameters of Ruditapes philippinarum in the field during an annual cycle. J Exp Mar Biol Ecol 377:1-11 

  26. Gagnaire B, Soletchnik P, Madec P, Geairon P, Le Moine O, Renault T (2006) Diploid and triploid Pacific oyster, Crassostrea gigas (Thunber) at two heights above sediment in Marennes-Oleron Basin, France: Difference in mortality, sexual maturation and hemocyte parameters. Aquaculture 254:606-616 

  27. Givan AL (2001) Flow Cytometry: First Principles, 2nd ed. Wiley-Liss, Somerset, 273 p 

  28. Goedken M, De Guise S (2004) Flow cytometry as a tool to quantify the oyster defence mechanisms. Fish Shellfish Immun 16:539-552 

  29. Gorinstein S, Leontowicz M, Leontowicz H, Namiesnik J, Jastrzebski Z, Drzewiecki J, Park YS, Ham KS, Heo BG, Trakhtenberg S (2008) Influence of mussels (Mytilus galloprovincialis) from polluted and non-polluted area on some atherosclerosis indices in rats fed cholesterol. Food Chem 111:381-386 

  30. Gosling E (2003) Reproduction, settlement and recruitment In: Elizabeth G (ed) Bivalve Molluscs: Biology, Ecology and Culture. Blackwell Science, UK, pp 131-168 

  31. Grigoryan RS, Yang B, Keshelava N, Barnhart JR, Reynolds CP (2007) Flow cytometry analysis of single-strand DNA damage in nueroblastoma cell lines using the F7-26 monoclonal antibody. Cytom Part A 71:951-960 

  32. Guidi P, Frenzilli G, Benedetti M, Bernardeschi M, Falleni A, Fattorini D, Regoli F, Scarcelli V, Nigro M (2010) Antioxidant, genotoxic and lysosomal biomarkers in the freshwater bivalve (Unio pictorum) transplanted in a metal polluted river basin. Aquat Toxicol 100:75-83 

  33. Hauton C, Hawkins LE, Hutchinson S (1998) The use of the neutral red retention assay to examine the effects of temperature and salinity on haemocytes of the European flat oyster Ostrea edulis (L). Comp Biochem Phys B 119:619-623 

  34. Hauton C, Hawkins LE, Hutchinson S (2001) Response of haemocyte lysosomes to bacterial inoculation in the oysters Ostrea edulis L. and Crassostrea gigas (Thunberg) and the scallop Pecten maximus (L). Fish Shellfish Immun 11:143-153 

  35. Hegaret H, da Silva P, Sunila I, Shumway SE, Dixon MS, Alix J, Wikfors GH, Soudant P (2009) Perkinsosis in the Manila clam Ruditapes philippinarum affects responses to the harmful-alga, Prorocentrum minimum. J Exp Mar Biol Ecol 371:112-120 

  36. Hegaret H, Wikfors GH, Soudant P (2003) Flow-cytometric analysis of haemocytes from eastern oyster, Crassostrea virginica, subjected to a sudden temperature elevation I. Heamocyte type and morphology. J Exp Mar Biol Ecol 293:237-248 

  37. Hegaret H, Wikfors GH, Soudant P, Delaporte M, Alix JH, Smith BC, Dixon MS, Quere C, Le Coz JR, Paillard C, Moal J, Samain JF (2004) Immunological competence of eastern oysters, Crassostrea virginica, fed microalgal diets experimentally varied in both quantity and quality, before and after a sudden temperature elevation. Aquaculture 234:541-560 

  38. Hine PM (1999) The inter-relationships of bivalve haemocytes. Fish Shellfish Immun 9:367-385 

  39. Hong SH, Kannan N, Yim UH, Choi JW, Shim WJ (2011) Polychlorinated biphenyls (PCBs) in a benthic ecosystem in Gwangyang Bay, South Korea. Mar Pollut Bull 62: 2863-2868 

  40. Hong SH, Munschy C, Kannan N, Tixier C, Tronczynski J, Heas-Moisan K, Shim WJ (2009) PCDD/F, PBDE, and nonylphenol contamination in a semi-enclosed bay (Masan Bay, South Korea) and a Mediterranean lagoon (Thau, France). Chemosphere 77:854-862 

  41. Kang CK, Kang YS, Choy EJ, Kim DS, Shim BT, Lee PY (2007) Condition, reproductive activity, and gross biochemical composition of the Manila clam, Tapes philippinarum in natural and newly created sandy habitats of the southern coast of Korea. J Shellfish Res 26:401-412 

  42. Kang DH, Chu FL, Yang HS, Lee CH, Koh HB, Choi KS (2010) Growth, reproductive condition, and digestive tubule atrophy of Pacific oyster Crassostrea gigas in Gamakman Bay off the southern coast of Korea. J Shellfish Res 29(4):839-845 

  43. Kang CK, Choy EJ, Lee WC, Kim NJ, Park HJ, Choi KS (2011) Physiological energetics and gross biochemical composition of the ascidian Styela clava cultured in suspension in a temperate bay of Korea. Aquaculture 319:168-177 

  44. Labreuche Y, Lambert C, Soudant P, Boulo V, Huvet A, Nicolas JL (2006) Cellular and molecular hemocyte responses of the Pacific oyster, Crassostrea gigas, following bacterial infection with Vibrio aestuarianus strain 01/32. Microb Infect 8:271-2724 

  45. Lambert C, Soudant P, Degremont L, Delaporte M, Moal J, Boudry P, Jean F, Huvet A, Samain JF (2007) Hemocyte characteristics in families of oysters, Crassostrea gigas, selected for differential survival during summer and reared in three sites. Aquaculture 270:276-288 

  46. Lee RF, Steinert S (2003) Use of the single cell gel electrophoresis/comet assay for detecting DNA damage in aquatic (marine and freshwater) animals. Mutat Res-Rev Mutat 544:43-64 

  47. Li Y, Qin JG, Li X, Benkendorff K (2010) Assessment of metabolic and immune changes in postspawning Pacific oyster Crassostrea gigas: Identification of a critical period of vulnerability after spawning. Aquac Res 1:1-11 

  48. Liu J, Pan LQ, Zhang L, Miao J, Wang J (2009) Immune responses, ROS generation and the haemocyte damage of scallop Chlamys farreri exposed to Aroclor 1254. Fish Shellfish Immun 26:422-428 

  49. Lopez C, Carballal MJ, Azevedo C, Villalba A (1997) Morphological characterization of the hemocytes of the clam, Ruditapes decussatus (Mollusca: Bivalvia). J Invertebr Pathol 69:51-57 

  50. Lowe DM, Fossato VU, Depledge MH (1995a) Contaminant induced lysosomal membrane damage in blood cells of mussels Mytilus galloprovincialis from Venice Lagoon:An in vitro study. Mar Ecol-Prog Ser 129:189-196 

  51. Lowe DM, Moore MN, Evans BM (1992) Contaminant impact on interactions of molecular probes with lysosomes in living hepatocytes from dab Limanda limanda. Mar Ecol-Prog Ser 91:135-140 

  52. Lowe DM, Soverchia C, Moore MN (1995b) Lysosomal membrane responses in the blood and digestive cells of mussels experimentally exposed to fluoranthene. Aquat Toxicol 33:105-112 

  53. Luzio JP, Pryor PR, Bright NA (2007) Lysosomes: Fusion and function. Nat Rev Mol Cell Biol 8(8):622-632 

  54. MacKenzie NM, Pinder AC (1987) Flow cytometry and its applications to veterinary medicine. Res Vet Sci 42:131-139 

  55. Matozzo V, Ballarin L, Pampanin DM, Marin MG (2001) Effects of copper and cadmium exposure on functional responses of hemocytes in the clam, Tapes philippinarum. Arch Environ Con Tox 41(2):163-170 

  56. Mayrand E, St-Jean SD, Courtenay SC (2005) Haemocytes responses of blue mussels (Mytilus edulis L.) transferred from a contaminated site to a reference site: Can the immune system recuperate? Aquacult Res 36:962-971 

  57. Moore MN (1980) Cytochemical determination of cellular responses to environmental stressors in marine organisms. Rap Proces 170:7-15 

  58. Ngo TTT, Berthe FCJ, Choi KS (2003) Prevalence and infection intensity of the ovarian parasite Marteilioides chungmuensis during an annual reproductive cycle of the oyster Crassostrea gigas. Dis Aquat Organ 56:259-267 

  59. Ngo TTT, Choi KS (2004) Seasonal changes of Perkinsus and Cercaria infections in the Manila clam Ruditapes philippinarum from Jeju, Korea. Aquaculture 239:57-68 

  60. Novas A, Barcia R, Ramos-Martinez JI (2007) After the Prestige oil spill modifications in NO production and other parameters related to the immune response were detected in hemocytes of Mytilus galloprovincialis. Aquat Toxicol 85:285-290 

  61. Oweson C, Hernroth B (2009) A comparative study on the influence of manganese on the bactericidal response of marine invertebrates. Fish Shellfish Immun 27:500-507 

  62. Pampanin DM, Volpato E, Marangon I, Nasci C (2005) Physiological measurements from native and transplanted mussel (Mytilus galloprovincialis) in the canals of Venice. Survival in air and condition index. Comp Biochem Phys A 140:41-52 

  63. Park KI, Choi MS, Park SW, Park KH, Choi SH, Yoon JM (2009) Cellular immune responses of the Manila clam, Ruditapes philippinarum, exposed to cadimium chloride. Korean J Malacol 25:135-143 

  64. Park KI, Park HS, Kim JM, Park YJ, Hong JS, Choi KS (2006) Flow cytometric assessment of immune parameters of the Manila clam (Ruditapes philippinarum). J Korean Fish Soc 39:123-131 

  65. Park KI, Tsutsumi H, Hong JS, Choi KS (2008) Pathology survey of the short-neck clam Ruditapes philippinarum occurring on sandy tidal flats along the coast of Ariake Bay, Kyushu, Japan. J Invertebr Pathol 99:212-219 

  66. Pipe RK, Coles JA (1995) Environmental contaminants influencing immune function in marine bivalves molluscs. Fish Shellfish Immun 5:581-595 

  67. Pipe RK, Coles JA, Carissan FMM, Ramanathan K (1999) Copper induced immunomodulation in the marine mussel, Mytilus edulis. Aquat Toxicol 46:43-54 

  68. Raidal SL, Bailey GD, Love DN (1998a) The flow cytometric evaluation of phagocytosis by equine peripheral blood neutrophils and pulmonary alveolar macrophages. Vet J 156:107-116 

  69. Raidal SL, Bailey GD, Love DN (1998b) Flow cytometric determination of oxidative burst activity of equine peripheral blood bronchoalveolar lavage derived leucocytes. Vet J 156:117-126 

  70. Riley RS, Mahin EJ, Ross W (1993) Clinical Applications of Flow Cytometry. Igaku-Shoin Press, New York, 914 p 

  71. Sauve S, Brousseau P, Pellerin J, Pmorin Y, Senecal L, Goudreau P, Fournier M (2002) Phagocytic activity of marine and freshwater bivalves: in vitro exposure of hemocytes to metals (Ag, Cd, Hg and Zn). Aquat Toxicol 58:189-200 

  72. Soudant P, Paillard C, Choquet G, Lambert C, Reid HI, Marhic A, Donaghy L, Birkbeck TH (2004) Impact of season and rearing site on the physiological and immunological parameters of the Manila clam Venerupis (Tapes, Ruditapes) philippinarum. Aquaculture 229:401-418 

  73. Tripp MR (1992) Phagocytosis by hemocytes of the hard clam, Mercenaria mercenaria. J Invertebr Pathol 59:222-227 

  74. Uddin MJ, Park KI, Kang DH, Park YJ, Choi KS (2007) Comparative reproductive biology of Yezo scallop, Patinopecten yessoensis, under two different culture systems on the east coast of Korea. Aquaculture 265:139-147 

  75. Winstead JT (1995) Digestive tubule atrophy in eastern oysters, Crassostrea virginica (Gmelin, 1791), exposed to salinity and starvation stress. J Shellfish Res 14:105-111 

  76. Xue QG, Renault T, Chilmonczyk S (2001) Flow cytometric assessment of haemocyte sub-populations in the European flat oyster, Ostrea edulis, haemolymph. Fish Shellfish Immun 11:557-567 

  77. Yang HS, Park KJ, Choi KS (2010) Pathologic survey on the Manila clam Ruditapes philippinarum (Adams and Reeve 1850) from Haeju off the western coastal Yellow Sea. Ocean Sci J 45(2):93-100 

  78. Zhang Z, Li X (2006) Evaluation of the effects of grading and starvation on the lysosomal membrane stability in pacific oysters, Crassostrea gigas (Thunberg) by using neutral red retention assay. Aquaculture 256:537-541 

  79. Zhao C, Li X, Luo S, Chang Y (2011) Assessments of lysosomal membrane responses to stresses with neutral red retention assay and its potential application in the improvement of bivalve aquaculture. Afr J Biotechnol 10:13968-13973 

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