본 연구에서는 2012년 8월, 우리나라 울산 소재의 강도다리 양식장에서 뚜렷한 증상 없이 강도다리 폐사가 발생하여 그 원인을 밝히고자 하였다. 기생충, 세균, 바이러스 검사를 수행하였으며, 내부 장기에서 균이 순수 분리되어 해당 분리균주의 표현형 및 유전적 특성을 분석하였다. 순수 배양된 균체를 확인하여 계대 배양하여 생화학적 성상과 16S rRNA 유전자와 capsular polysaccharide (CPS) 유전자의 염기서열 분석 결과 Photobacterium damselae subsp. piscicida으로 동정되었다. Photobacterium damselae subsp. piscicida와 Photobacterium damselae subsp. damselae는 TCBS agar 배지의 균주 배양 유무, 16S rRNA 및 CPS 유전자 분석을 통해 구분할 수 있었다. 실험 균주는 ofloxacin과 gentamycin에 대해서 감수성을 나타냈으며, 배양 온도에 따른 발육시험 시 $18^{\circ}C$ 및 $25^{\circ}C$에서 시험한 다른 균주에 비해 유의적으로 높은 생장율을 나타내었다.
본 연구에서는 2012년 8월, 우리나라 울산 소재의 강도다리 양식장에서 뚜렷한 증상 없이 강도다리 폐사가 발생하여 그 원인을 밝히고자 하였다. 기생충, 세균, 바이러스 검사를 수행하였으며, 내부 장기에서 균이 순수 분리되어 해당 분리균주의 표현형 및 유전적 특성을 분석하였다. 순수 배양된 균체를 확인하여 계대 배양하여 생화학적 성상과 16S rRNA 유전자와 capsular polysaccharide (CPS) 유전자의 염기서열 분석 결과 Photobacterium damselae subsp. piscicida으로 동정되었다. Photobacterium damselae subsp. piscicida와 Photobacterium damselae subsp. damselae는 TCBS agar 배지의 균주 배양 유무, 16S rRNA 및 CPS 유전자 분석을 통해 구분할 수 있었다. 실험 균주는 ofloxacin과 gentamycin에 대해서 감수성을 나타냈으며, 배양 온도에 따른 발육시험 시 $18^{\circ}C$ 및 $25^{\circ}C$에서 시험한 다른 균주에 비해 유의적으로 높은 생장율을 나타내었다.
Starry flounder, Platichthys stellatus (body length $4.4{\pm}0.51cm$) that became sick during an outbreak of disease at mariculture facilities at Ulsan, Korea in August of 2012, were examined to identify the cause of the disease. Diseased fish didn't show a unique sign, but the oxidase-po...
Starry flounder, Platichthys stellatus (body length $4.4{\pm}0.51cm$) that became sick during an outbreak of disease at mariculture facilities at Ulsan, Korea in August of 2012, were examined to identify the cause of the disease. Diseased fish didn't show a unique sign, but the oxidase-positive and gram negative rod was isolated from moribund fish. The bacterium was revealed as Photobacterium damselae subsp. piscicida by biochemical analysis and sequence analysis of the 16S rRNA and capsular polysaccharide (CPS) genes. The isolates (AD5) was carrying susceptible to ofloxacin and gentamycin and showed high growth value at $18^{\circ}C$ and $25^{\circ}C$ compared to four other P. damsela strains.
Starry flounder, Platichthys stellatus (body length $4.4{\pm}0.51cm$) that became sick during an outbreak of disease at mariculture facilities at Ulsan, Korea in August of 2012, were examined to identify the cause of the disease. Diseased fish didn't show a unique sign, but the oxidase-positive and gram negative rod was isolated from moribund fish. The bacterium was revealed as Photobacterium damselae subsp. piscicida by biochemical analysis and sequence analysis of the 16S rRNA and capsular polysaccharide (CPS) genes. The isolates (AD5) was carrying susceptible to ofloxacin and gentamycin and showed high growth value at $18^{\circ}C$ and $25^{\circ}C$ compared to four other P. damsela strains.
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문제 정의
본 연구에서는 2012년 8월, 우리나라 울산 소재의 강도다리 양식장에서 뚜렷한 증상 없이 강도다리 폐사가 발생하여 그 원인을 밝히고자 하였다. 기생충, 세균, 바이러스 검사를 수행하였으며, 내부 장기에서 균이 순수 분리되어 해당 분리균주의 표현형 및 유전적 특성을 분석하였다.
제안 방법
(b) 16S rRNA 및 CPS 유전자에 대한 염기서열 분석 분리균의 종 동정을 위해 16S rRNA 및 capsular polysaccharide (CPS) 유전자에 대한 염기서열 분석을 실시하였다. 분리균의 genomic DNA 추출과 PCR 분 석은 상기와 동일하게 High pure template preparation kit (Roche, Germany)와 ExTaq Ⓡ (Takara, Japan)을 사용하였다.
디스크 확산법으로 ofloxacin, nalidixic acid, oxolinic acid, gentamycin, clindamycin, clavulanic acid, ampicillin, doxycycline, tetracycline, erythromycin, trimethoprim, sulfisoxazole에 관한 감수성을 시험하였다. 1.5% NaCl이 첨가된 BHIA 배지에서 순수 배양된 세균을 0.85% NaCl이 첨가된 생리식염수에 현탁한 후, 300 ㎕를 1.5% NaCl이 첨가된 Muller-Hinton agar (BD, USA)에 도말하고 그 위에 항균제 디스크 (Becton Dickinson, USA)를 접종하여 25℃에서 24시간 동안 배양하였다. 배양 후 나타난 발육저지대의 지름을 측정하여 CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute)의 일반적인 Enterobacteriaceae세균에 대한 2012년 기준으로 내성 (resistant), 중간 내성 (intermediate resistant), 감수성 (susceptible)으로 구분 하여 분석하였다.
AD5를 포함한 참조 균주의 16S rRNA 유전자 PCR결과, 시험한 모든 균주에서 약 1,404bp의 증폭 산물이 형성되어 그 염기 서열을 분석하였다. AD5의 16S rRNA의 염기 서열 분석결과 P.
검사용 시료는 감염어를 무균적으로 해부하여 적출한 신장, 비장 및 뇌를 사용하였다. PCR을 위한 DNA는 시판되는 High pure PCR template preparation kit (Roche, Germany)를 사용하여 매뉴얼에 따라 분리하였으며, RNA는 매뉴얼에 따라 TRIZOL Ⓡ Reagent (Invitrogen, USA)로 분리한 후, SuperScript TM Ⅱ Reverse Transcriptase (Invitrogen, USA)를 이용하여 cDNA를 합성하였다. RSIV의 PCR 분석을 위해 분리된 DNA를 template로 사용하였으며, 그 외 VHSV, VNNV, HRV 및 MBV의 PCR 분석을 위해 분리된 RNA에서 합성한 cDNA를 사용하였다.
PCR을 위한 DNA는 시판되는 High pure PCR template preparation kit (Roche, Germany)를 사용하여 매뉴얼에 따라 분리하였으며, RNA는 매뉴얼에 따라 TRIZOL Ⓡ Reagent (Invitrogen, USA)로 분리한 후, SuperScript TM Ⅱ Reverse Transcriptase (Invitrogen, USA)를 이용하여 cDNA를 합성하였다. RSIV의 PCR 분석을 위해 분리된 DNA를 template로 사용하였으며, 그 외 VHSV, VNNV, HRV 및 MBV의 PCR 분석을 위해 분리된 RNA에서 합성한 cDNA를 사용하였다. PCR 분석은 ExTaqⓇ (TaKaRa, Japan)을 이용하여 매뉴얼에 따랐으며, 사용된 primer set 및 PCR 조건은 Table 1에 나타내었다.
강도다리의 아가미, 체표 및 지느러미 점액, 각내부 장기 (뇌, 신장, 비장)를 생검 시료로 제작한 후 검경하여 기생충 감염 여부를 확인하였다.
본 연구에서는 2012년 8월, 우리나라 울산 소재의 강도다리 양식장에서 뚜렷한 증상 없이 강도다리 폐사가 발생하여 그 원인을 밝히고자 하였다. 기생충, 세균, 바이러스 검사를 수행하였으며, 내부 장기에서 균이 순수 분리되어 해당 분리균주의 표현형 및 유전적 특성을 분석하였다. 순수 배양된 균체를 확인하여 계대 배양하여 생화학적 성상과 16S rRNA 유전자와 capsular polysaccharide (CPS) 유전자의 염기서열 분석 결과 Photobacterium damselae subsp.
damselae KCTC12279, ATCC33539와국립수산과학원 병리연구과에서 분양 받은 넙치 유래의 FP3487도 함께 시험 분석하였다. 또 일부 시험을 위해서는 Vibrio harveyi AD10 균주를 사용하여 Vibrio 속 세균과 비교도 수행하였다.
5% NaCl을 첨가한 BHIA배지에서 25℃, 24시간 배양된 균주를 사용하였다. 먼저 상법에 따라 Gram stain 염색성과 형태를 관찰하고 세균의 운동성을 판정하였다. Oxidase test는 Cytochrome oxidase 시험지법, Catalase test는 3% H2O2를 이용한 slide 반응법으로 실시하였다.
배양 온도에 따른 발육시험을 위해, 25℃에서 24 시간 배양된 분리균액 (OD600=1.0)을 200 ㎕를 1.5% NaCl이 첨가된 1% pepton water 20ml에 접종하였다. 접종액은 온도별로 5℃, 18℃, 25℃, 30℃에서 3일간 배양하면서 매일 OD600에서 흡광도를 측정하여 발육정도를 측정하였다.
5% NaCl이 첨가된 Muller-Hinton agar (BD, USA)에 도말하고 그 위에 항균제 디스크 (Becton Dickinson, USA)를 접종하여 25℃에서 24시간 동안 배양하였다. 배양 후 나타난 발육저지대의 지름을 측정하여 CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute)의 일반적인 Enterobacteriaceae세균에 대한 2012년 기준으로 내성 (resistant), 중간 내성 (intermediate resistant), 감수성 (susceptible)으로 구분 하여 분석하였다.
(b) 16S rRNA 및 CPS 유전자에 대한 염기서열 분석 분리균의 종 동정을 위해 16S rRNA 및 capsular polysaccharide (CPS) 유전자에 대한 염기서열 분석을 실시하였다. 분리균의 genomic DNA 추출과 PCR 분 석은 상기와 동일하게 High pure template preparation kit (Roche, Germany)와 ExTaq Ⓡ (Takara, Japan)을 사용하였다. 16S rRNA 유전자 및 CPS 유전자 (Rajan et al.
시험어를 무균적으로 해부하여 신장, 비장, 간 등의 내부 장기 및 체표 환부를 NaCl 1.5% 첨가 BHIA 배지와 TCBS agar 배지에 접종하여 25℃, 24∼48시간 배양하여 균의 성상을 확인하였으며 이를 계대 배양하여 이후의 실험에 사용하였다.
에서 제공되는 BLAST program 정보를 이용하여 상동성을 비교하였다.
, 2008) 감염증 이외에는 세균성 질병에 관한 보고가 전무한 실정이다. 이에 본 연구에서는 2012년 8월, 우리나라 울산 소재의 강도다리 양식장에서 뚜렷한 증상없이 강도다리 폐사가 발생하여 기생충, 세균, 바이러스 검사를 수행하였으며, 내부 장기에서 균이 순수 분리되어 세균을 동정하고 해당 분리 균주의 표현형 및 유전적 특성을 분석하였다.
PCR 분석은 ExTaqⓇ (TaKaRa, Japan)을 이용하여 매뉴얼에 따랐으며, 사용된 primer set 및 PCR 조건은 Table 1에 나타내었다. 증폭된 산물은 전기영동으로 확인하였으며, 모든 PCR 분석은 양성 대조 및 음성 대조를 함께 비교하였다.
대상 데이터
2012년 8월부터 울산시 울주군 소재의 육상 수조 양식장의 사육되는 강도다리 (평균체장 4.6 ± 0.51 ㎝)가 뚜렷한 증상 없이 보름동안 폐사를 나타내었다.
piscicida KCTC12268 및 표준균주 Photobacterium damselae subsp. damselae KCTC12279, ATCC33539와국립수산과학원 병리연구과에서 분양 받은 넙치 유래의 FP3487도 함께 시험 분석하였다. 또 일부 시험을 위해서는 Vibrio harveyi AD10 균주를 사용하여 Vibrio 속 세균과 비교도 수행하였다.
검사용 시료는 감염어를 무균적으로 해부하여 적출한 신장, 비장 및 뇌를 사용하였다. PCR을 위한 DNA는 시판되는 High pure PCR template preparation kit (Roche, Germany)를 사용하여 매뉴얼에 따라 분리하였으며, RNA는 매뉴얼에 따라 TRIZOL Ⓡ Reagent (Invitrogen, USA)로 분리한 후, SuperScript TM Ⅱ Reverse Transcriptase (Invitrogen, USA)를 이용하여 cDNA를 합성하였다.
총 사육량 15만 마리 중 매일 100∼300마리가 폐사하여, 15일간 누적 폐사량이 3%로 확인되었다. 외부증상을 나타내지 않는 빈사상태의 강도다리 29 마리를 시험어로 사용하였다.
이론/모형
먼저 상법에 따라 Gram stain 염색성과 형태를 관찰하고 세균의 운동성을 판정하였다. Oxidase test는 Cytochrome oxidase 시험지법, Catalase test는 3% H2O2를 이용한 slide 반응법으로 실시하였다. 그 외의 다양한 생화학적 시험은 MacFaddin (2000)의 방법에 따라 API 20E kit (bioMerieux sa.
RSIV의 PCR 분석을 위해 분리된 DNA를 template로 사용하였으며, 그 외 VHSV, VNNV, HRV 및 MBV의 PCR 분석을 위해 분리된 RNA에서 합성한 cDNA를 사용하였다. PCR 분석은 ExTaqⓇ (TaKaRa, Japan)을 이용하여 매뉴얼에 따랐으며, 사용된 primer set 및 PCR 조건은 Table 1에 나타내었다. 증폭된 산물은 전기영동으로 확인하였으며, 모든 PCR 분석은 양성 대조 및 음성 대조를 함께 비교하였다.
Oxidase test는 Cytochrome oxidase 시험지법, Catalase test는 3% H2O2를 이용한 slide 반응법으로 실시하였다. 그 외의 다양한 생화학적 시험은 MacFaddin (2000)의 방법에 따라 API 20E kit (bioMerieux sa., France)와 API zym kit (Bio-Merieux, Spain)를 사용하였으며, 모든 시험을 4회반복하였다. 표준균주 Photobacterium damselae subsp.
해산어에서 주로 검출되는 바이러스인 참돔 이리도 바이러스 (Red seabream iridovirus; RSIV), 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스 (Viral hemorrhagic septicaemia virus; VHSV)를 포함하여 바이러스성 신경 괴사증 바이러스 (Viral nervous necrosis virus; VNNV), 히라메 랩도 바이러스 (Hirame rhabdovirus; HRV) 및 해산 버나 바이러스 (Marine birnavirus; MBV)를 검사 대상으로 하여 polymerase chain reaction (PCR) 법으로 검사하였다 (Table 1).
성능/효과
AD5는 Gram 음성 curved rod로, catalase와 oxidase를 생성하였으며 API 20E kit를 이용한 결과, Voges-Proskauer에서는 양성을 보이는 대신 Glucose 를 제외한 당 이용능은 음성으로 나타났다. API zym kit를 사용한 효소 활성에서는 alkaline phosphatase, esterase (C4), esterase lipase (C8), leucine arylamidase, acid phosphatase, naphthol-AS-BI-phosphohydrolase, N-acetyl-β-glucosaminidase는 양성 반응은 나타내었다 (Table 3).
damselae subsp. damselae KCTC12279, FP3487, ATCC33539 균주와는 1개의 염기가 차이를 나타내어 99%의 상동성을 나타내었다 (Fig. 1). CPS 유전자 PCR 결과, 분리균주 AD5와 P.
damselae subsp. damselae KCTC12279, FP3487, ATCC33539는 18℃에서 가장 잘 증식하였으며, 5℃에서 가장 낮은 발육을 보였다. 또한 30℃로 갈수록 증식이 감소하였으나, AD5는 18℃ 및 25℃에서 damselae subsp.
damselae subsp. damselae KCTC12279, FP3487, ATCC33539에 비해 유의적으로 높은 생장율을 나타 내었다. 본 연구에서는 강도다리 분리 균주의 이러한 생장율의 차이의 정확한 원인을 밝히지는 못하였으나, 균이 분리 당시의 2012년 8월 강원 남부 앞바다의 평균수온이 24.
damselae KCTC12279, FP3487, ATCC33539에비해 전체적으로 현저히 높은 발육능을 보였다 (p<0.05) (Fig. 3).
damselae subsp. piscicida KCTC12268도 AD5과 같은 양상을 보였으나 BHIA 배지에서 AD5가 24 시간 후 colony 수가 늘어난데 반해 KCTC12268는 48시간 배양 후 colony 수가 증가하여 늦은 배양 속도를 나타냈다. P.
damselae subsp. piscicida의 CPS 유전자 (GenBank accession no: AB074290)와 1bp 차이로 99% 상동성을 나타내었다.
강도다리의 아가미, 체표 및 내부 장기를 생검하여 검경한 결과, 기생충이 관찰되지 되지 않았으며, RSIV, VHSV, VNNV, HRV 및 MBV에 대한 PCR 분석을 실시한 결과, 검사된 29마리 강도다리 모두에서 어떠한 바이러스도 검출되지 않았다 (data not shown).
damselae는 TCBS agar 배지의 균주 배양 유무, 16S rRNA 및 CPS 유전자 분석을 통해 구분할 수 있었다. 실험 균주는 ofloxacin 과 gentamycin에 대해서 감수성을 나타냈으며, 배양 온도에 따른 발육시험 시 18℃ 및 25℃에서 시험한 다른 균주에 비해 유의적으로 높은 생장율을 나타내 었다.
총 사육량 15만 마리 중 매일 100∼300마리가 폐사하여, 15일간 누적 폐사량이 3%로 확인되었다.
후속연구
damselae subsp. piscicida가 분리 동정되었으며, 향후 본 연구에서 분리된 AD5 균주의 강도다리를 이용한 감염시험을 실시, 강도다리에 대한 병원성을 평가할 필요가 있겠다.
damselae subsp. piscicida의염기서열을 바탕으로 제작한 CPS primer 제작하였기에 상이한 결과가 나왔을 것으로 추측하며, 추후 이에 관한 추가실험이 필요할 것으로 생각된다.
, 2005)에질병을 일으켰다는 보고가 있어왔지만, 우리나라 양식 강도다리, Platichthys stellatus에 대한 감염 피해의 발생 예는 알려져 있지 않다. 본 연구 결과 빈사 상태의 강도다리에서 Photobacterium damselae가 우점적으로 순수 분리되었으며, 다른 어류 병원체가 검출되지 않은 것으로 보아, Photobacterium damselae가 강도다리의 병원체일 가능성이 시사되었으며, 차후 추가적으로 분리균의 병원성 관련 연구가 필요하겠다.
damselae KCTC12279, FP3487, ATCC33539에 비해 유의적으로 높은 생장율을 나타 내었다. 본 연구에서는 강도다리 분리 균주의 이러한 생장율의 차이의 정확한 원인을 밝히지는 못하였으나, 균이 분리 당시의 2012년 8월 강원 남부 앞바다의 평균수온이 24.69℃, 10월에는 18.68℃ (http;//egov.nfrdi.re.kr-종합상황정보)인 점을 감안한다면 생장율 및 질병 발생 시기의 관계는 있을 것을 판단되지만, 이에 대한 차후 추가적인 실험을 통한 특성 규명이 필요할 것으로 생각된다.
, 1964) 는 sulfisoxazole에만 저항성을 나타내었다. 이러한 항생제에 대한 내성 획득에 관한 추가적인 연구가 더 필요할 것으로 생각된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
강도다리의 특징은 무엇인가?
강도다리, Platichthys stellatus는 가자미목 가자미 과의 어류로서 일반적으로 몸길이가 30∼40 cm 정도 자라며, 북태평양에 넓게 분포하는데 미국 서부 연안과 Bering해로부터 동해에 이르는 지역의 수심 80∼ 350 m 정도의 부드러운 모래질이 분포한 해역에서 많이 잡힌다 (Orcutt, 1950; Kramer et al., 1995; Cho et al.
우리나라에서 강도다리의 증가하는 수요를 충족하기 위해 어떠한 노력을 하고 있는가?
, 2012). 이를 해결하기 위해 완전 양식 기술 개발과 함께 자원회복 및증강, 어민 소득 증대를 위해 동해 바다목장 해역에 강도다리 종묘를 방류 관리하고 있다 (Byun et al., 2008; MIFAFF, 2010; Hwang et al.
우리나라의 양식 강도다리에 대해 유일하게 세균성 질병 보고가 이루어진 것은?
하지만 현재 까지 우리나라에서는 양식 강도다리에 대해 Streptococcus parauberis (Cho et al., 2008) 감염증 이외에는 세균성 질병에 관한 보고가 전무한 실정이다. 이에 본 연구에서는 2012년 8월, 우리나라 울산 소재의 강도다리 양식장에서 뚜렷한 증상없이 강도다리 폐사가 발생하여 기생충, 세균, 바이러스 검사를 수행하였으며, 내부 장기에서 균이 순수 분리되어 세균을 동정하고 해당 분리 균주의 표현형 및 유전적 특성을 분석하였다.
참고문헌 (26)
Byun, S.G., Jeong, M.H., Lee, J.H., Lee, B.L., Ku, H.D., Park, S.U., Kim, Y.C. and Chang, Y.J.: Diel rhythm of oxygen consumption of the starry flounder, Platichthys stellatus by water temperature. J. Kor. Fish Soc., 41(2):113-118, 2008.
Cho, M.Y., Lee, J.I., Kim, M.S., Choi, H.J., Lee, D.C. and Kim, J.W.: Isolation of Streptococcus parauberis from starry flounder, Platichthys stellatus Pallas. J. Fish Pathol., 21:209-217, 2008.
Colwell, R.R. and Grimes, D.J.: Vibrio diseases of marine fish populations. Helgol, Meeresunters, 37:265-287, 1984.
Fouz, B., Larsen, J.L. and Toranzo, A.E.: Vibrio damsela as a pathogenic agent causing mortality in cultured turbot (Scophthalmus maximus). Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol., 11:81-81, 1991.
Fujioka, R.S., Greco, S.B., Cates, M.B. and Schroeder, J.P.: Vibro damsela from wounds in bottlenose dolphins Tursiops truncatus. Dis. Aquat. Org., 4:1-8, 1998.
Grimes, D.J., Colwell, R.R., Stemmler, J., Hada, H., Manval, D., Hetrick, F.M., May, E. B., Jones, R. T. and Stoskopf, M.: Vibrio species associated with mortality of sharks held in captivity. Microb. Ecol., 10:271-282, 1984.
Hwang, I.J., Lee, J.B., Choi, S.J., Kim, S.K. Cha, H.K., Oh, T.Y. and Baek, H.J.: Reproductive Capacity in starry flounder Platichthys stellatus from Uljin Marine Ranching Area, Korea. Kor. J. Fish Aquat. Sci., 45:253-261, 2012.
Kwon, M.G., Park, S.U., Bang, J.D. and Park, S.I.: Isolation of pathogenic Photobacterium damselae subsp. damselae from olive flounder, Paralichthys olivaceus. J. Fish Pathol., 18:205-214, 2005.
Lim, H.K., Byun, S.K., Lee, J.H., Park, S.U. and Kim, Y.C.: Sexual maturity and reproductive cycle of starry flounder, Platichthys stellatus cultured in indoor tank. J Aquaculture., 20:212-218, 2007.
Love, M., Fisher, D.T., Hose, J.E., Farmer, J.J., Hickman, F.W. and Fanning, G.R.: Vibrio damsela, a marine bacterium, causes skin ulcer on the damselfish Chromis punctipinnis, Science, 214:1140-1141, 1981.
MacFaddin, J.E.: Individual biochemical tests. In: Biochemical tests for identification of medical bacteria. pp.1-456, 3rd ed., Lippincott Williams and Wilkins, Philadelphia, 2000.
MIFAFF (Ministry of Food, Agriculture, Forestry and Fisheries): Studies on the development of marine ranching program 2009 in the East, West and Jeju coast of Korea. Gwachean, Korea, p.1269, 2010.
Obendorf, D.L., Carson, J. and McManus, T.J.: Vibrio damsela infection in a stranded leatherback turtle (Dermchelys coriacea). Wildl. Dis., 23:666-668, 1987.
Orcutt, H.G.: The life history of the starry flounder Platichthys stellatus (Pallas). Calif. Fish Bull., 78:25-32, 1950.
Rajan, P.R., Lin, J.H.Y., Ho, M.S. and Yang H.L.: Simple and rapid detection of Photobacterium damselae subsp. piscicida by a PCR technique and plating method. J. Appl. Microbiol., 95:1375-1380, 2003.
Renault, T., Haffner, P., Malfondet, C. and Weppe, M.: Vibrio damsela as a pathogenic agent causing mortalities in cultured sea bass (Lates calcarifer). Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol., 14:117-119, 1994.
Sakata, T., Matsuura, M. and Shimokawa, Y.: Characteristics of Vibrio damsela isolated from diseased yellowtail (Seriola quinqueradiata). Nippon Suisan Gakkashi, 55:135-141, 1989.
Snieszko, S.F., Bullock, G.L., Hollis, E., Boone, J.G.: Pasteurella sp. from an epizootic of white perch (Roccus americanus) in Chesapeake Bay tidewater areas. J. Bacteriol. 88:1814-1845, 1964.
Thyssen, A., Grisez, L., van Houdt, R. and Ollevier, F.: Phenotypic characterization of the marine pathogen Photobacterium damselae subsp. piscicida. International Journal of Systematic Bacteriology, 48:1145-1151, 1998.
Toranzo, A.E., Barreiro, S., Casal, J.F., Figueras, A., Magarinos, B. and Barja, J.: Pasteurellosis in cultured gilt-head seabrea (Sparus aurata): first report in Spain. Aquaculture, 99:1-15, 1991.
Vera, P., Navas, J.L. and Fouz, B.: First isolation of Vibrio damsela from seabream (Sparus aurata). Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol., 11:112-113, 1991.
Zorrilla, I., Balebona, M.C., Morinigo, M.A., Sarasquete, C. and Borrego, J.J.: Isolation and characterization of the causative agent of pasteurellosis, Photobacterium damsela ssp. piscicida, from sole, Solea senegalensis (Kaup). J. Fish Dis., 22:167-172, 1999.
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