$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

동합금 가두리 망 사육어류, 조피볼락(Sebastes schlegeli)의 혈액 성상과 중금속 축적률
Change of Hematological Characteristic and Heavy Metal Concentration on Rockfish (Sebastes schlegeli) Rearing in the Copper Alloy Mesh 원문보기

Korean journal of Ichthyology = 한국어류학회지, v.26 no.3, 2014년, pp.159 - 170  

양성진 (국립수산과학원 전략양식연구소 양식관리과) ,  전제천 (국립수산과학원 전략양식연구소 양식관리과) ,  박정준 (국립수산과학원 전략양식연구소 양식관리과) ,  명정인 (국립수산과학원 전략양식연구소 양식관리과) ,  신윤경 (국립수산과학원 전략양식연구소 양식관리과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

동합금 가두리망에 6개월간 사육한 조피볼락을 대상으로 동합금 가두리 망에서 유출되는 물질이 어류의 생존, 성장 및 건강도에 미치는 영향을 조사하였다. 대조구와 실험구간의 생존율과 성장률 그리고 혈액 성상은 유의한 차이가 없었으며(P<0.05), 간세포의 형태 및 간 조직 내에 존재하는 모세혈관과 담관의 구조가 특이적인 차이를 보이지 않았다. 구리와 아연 축적량은 실험 초기에 비해 증가하였지만 실험구와 대조구 간의 차이가 없었으며 허용기준치에 비해 매우 낮게 나타나 본 연구에 사용된 동합금망은 어류의 생존, 성장 및 건강도에 영향을 끼치지 않는 것으로 여겨진다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The effect of substances discharged from copper alloy mesh on the survival rate, growth, and health status of Sebastes schlegeli was investigated. Survival rate of experimental group was 10% higher than control group. There was no significant difference in weight gain and SGR between control group a...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 구리와 아연이 주성분인 신규 동합금 소재를 사용하여 한국의 양식장에 적합한 가두리망을 개발하기 위하여 동합금 가두리 시설의 생물학적 기초 연구를 위해 동합금 가두리망에서 6개월간 사육한 조피볼락을 대상으로 생존율, 성장률, 혈액 성상, 중금속 축적률 차이 그리고 간의 조직학적 변화를 조사하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
우리나라 양식 시설의 약 80% 이상이 남해안의 내만에 집중되어 있어 자가 오염이 심해져 생산량이 감소하는데 이를 해결하기 위한 방법으로 무엇이 있는가? 우리나라 양식 시설의 약 80% 이상이 남해안의 내만에 집중되어 있어 한정된 공간에서의 장기간 고밀도 양식으로 인해 자가 오염이 심해져 생산량이 감소하는 추세이다. 이러한 문제점을 해결하는 방법 중 하나로 외해 양식이 논의되고 있다. 외해는 수질은 양호하나 강한 조류와 파도 등으로 기존의 양식 방법을 그대로 적용시키기에는 한계가 있으므로, 시설과 생물 피해를 최소화 할 수 있는 시설물의 개발이 요구되고 있으며 그 중 동합금 가두리망(copper alloy mesh)이 부각되고 있다.
우리나라 양식 시설의 약 80% 이상이 남해안의 내만에 집중되어 있음으로서 생기는 문제는 무엇인가? 우리나라 양식 시설의 약 80% 이상이 남해안의 내만에 집중되어 있어 한정된 공간에서의 장기간 고밀도 양식으로 인해 자가 오염이 심해져 생산량이 감소하는 추세이다. 이러한 문제점을 해결하는 방법 중 하나로 외해 양식이 논의되고 있다.
동합금망의 장점은 무엇인가? 동합금망은 기존의 합성섬유 가두리망에 비해 내구성과그 밖의 많은 이점으로 인해 이미 일본에서는 UR30 소재의 동합금 가두리망을 개발하여 실용화되고 있으며 호주나 칠레에서도 동합금 가두리망으로 대체한 가두리에서 연어를 양식하고 있다. 동합금망은 특히 부식과 생물 부착(biofouling) 방지에 매우 효과적이며(Efird and Anderson, 1975; Powell and Stillman, 2009), 내구성이 뛰어나 그물 손상에 의한 어류의 탈출이나 포식자의 침입 등의 손실을 줄일 수 있으며(Huguenin and Ansuimi, 1975), 그리고 강한 조류나 태풍과 같은 극한의 기상 조건 속에서도 구조적 완전성(structural integrity)과 안정성이 뛰어나다(Tsukrov et al., 2011).
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (63)

  1. Andres, S., F. Ribeyre, J.N. Tourencq and A. Boudou. 2000. Interspecific comparison of cadmium and zinc contamination in the organs of four fish species along a polymetallic pollution gradient (Lot River, France). Sci. Tot. Environ., 248: 11-25. 

  2. Arellano, J.M., V. Storch and C. Sarasquete. 1999. Histological changes and copper accumulation in liver and gills of the Senegal sole, Solea senegalensis. Ecotoxicol. Environ. Saf., 44: 62-72. 

  3. Bradley, R.W. and J.B. Sprague. 1985. The influence of pH, water hardness, and alkalinity on the acute lethality of zine to rainbow trout (Salmo gairdneri). Can. J. Fish. Aquat. Sci., 42: 731-736. 

  4. Buckley, J.T., M. Roch, J.A. McCarter, C.A. Rendell and A.T. Matheson. 1982. Chronic exposure of coho salmon to sublethal concentrations of copper, and on copper tolerance. Comp. Biochem. Physiol. C., 72: 15-19. 

  5. Bury, N.R., P.A. Walker and C.N. Glover. 2002. Nutritive metal uptake in teleost fish (Review). J. Exp. Biol., 206: 11-23. 

  6. Canli, M. and G. Atli. 2003. The relationships between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Environ. Pollut., 121: 129-136. 

  7. Chapman, G.A. 1999. An acute TRV for Rainbow trout and Bull trout. Report prepared for the Montana Natural Resources Damage Program, Helena, MT, USA. 

  8. Cinier, C.C., M. Petit-Ramel, R. Faure, D. Garin and Y. Bouvet. 1999. Kinetics of cadmium accumulation and elimination in carp Cyprinus carpio tissues. Comp. Biochem. Physiol., 122: 345-352. 

  9. Collvin, L. 1984. Uptake of copper in gills and liver of perch, Perca fluviatilis. Ecol. Bull. (Stockholm), 36: 57-61. 

  10. Collvin, L. 1985. The effect of copper on growth, food consumption and food conversion of perch Perca fluviatilis L. offered maximal food rations. Aquat. Toxicol., 6: 105-113. 

  11. Cotou, E., M. Henry, C. Zeri, G. Rigos, A. Torreblanca and V.A. Catsiki. 2012. Short-term exposure of the European sea bass Dicentrarchus labrax to copper-based antifouling treated nets: Copper bioavailability and biomarkers responses. Chemosphere, 89: 1091-1097. 

  12. Cousins, R.J. 1985. Absorption, transport, and hepatic metabolism of copper and zinc: special reference to metallothionein and ceruloplasmin. Physiol. Rew., 65: 238-309. 

  13. Dean, R.J., T.M. Shimmield and K.D. Black. 2007. Copper, zinc and cadmium in marine cage fish farm sediments: An extensive survey. Environ. Pollut., 145: 84-95. 

  14. Drummond, R.A., W.A. Spoor and G.F. Olson. 1973. Some shortterm indicators of sublethal effects of copper on brook trout, Salvelinus fontinalis. J. Fish Res. Board Can., 30: 698-701. 

  15. Efird, K.D. and D.B. Anderson. 1975. Sea Water Corrosion of 90-10 and 70-30 Cu-Ni: 14 Year Exposures. Materials Performance, 14: 37-40. 

  16. FAO/WHO. 2010. Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives, Summary report of the seventy-third meeting of JECFA in the WHO Technical Report Series, Geneva, Switzerland, 12-13. 

  17. Filho, W. 1996. Fish antioxidant defenses. A comparative approach. Braz. J. Med. Bio. Res., 29: 1735-1742. 

  18. Friberg, L. and J. Vostal. 1972. Mercury in the environment. In: Friberg, L. and J. Vostal (eds.), An epidemiological and toxicological appraisal. CRS Press, Cleveland, pp. 29-90. 

  19. Furness, R.W. and P.S. Rainbow. 1990. Heavy metals in the marine environment. CRC press, Florida. 

  20. Gamperl, A.K., M.M. Vigayan and R.G. Boutilier. 1994. Experimental control of stress hormone levels in fishes: techniques and applications. Rev. Fish Biol. Fish., 4: 215-255. 

  21. Handy, R.D., D.W. Sims, A. Giles, H.A. Cambell and M.M. Musonda. 1999. Metabolic trade-off between locomotion and detoxification for maintence of blood chemistry and growth parameters by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during chronic dietary exposure to copper. Aquat. Toxicol., 47: 23-41. 

  22. Hawbaker, J.A., V.C. Speer, V.W. Hays and D.V. Catron. 1961. Effect of copper sulfate and other chemotherapeutics in growing swine rations. J. A. Sci., 20: 163-167. 

  23. Hodson, P.V., M. McWhirter, K. Ralph, B. Gray, D. Thivierge, J.H. Carey, G. Van-Der-Kraak, D.M. Whittle and M.C. Levesque. 1992. Effects of bleached kraft mill effluent on fish in the St. Maurice River, Quebec. Environ. Toxcicol. Chem., 11: 1635-1651. 

  24. Hogstrand, C. and C.M. Wood. 1996. The physiology and toxicology of zinc in fish. In: Taylor, E.W. (ed.), Toxicology of Aquatic Pollution: Physiological, Cellular and Molecular Approaches. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 61-84. 

  25. Huguenin, J.E. and F.J. Ansuini. 1975. The advantages and limitations of using copper materials in marine aquaculture. Proceedings of the OCEAN 75 Conference, Marine Technology Society, San Diego, CA, USA, pp. 444-453. I 

  26. to, Y. and T. Murata. 1990. Changes in glucose, protein contents and enzyme activities of serum in carp administered orally with PCB. Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 46: 465-468. 

  27. James, R., K. Sampath and P. Selvamani. 2000. Effect of ion-exchanging agent zeolite on removal of copper in water and improvement of growth in Oreochromis mossambicus (Peters). Asian Fish. Sci., 13: 317-325. 

  28. James, R., K. Sampath, S. Jothilakshmi, I. Vasudhevan and R. Thangarathinam. 2008. Effects of copper toxicity on growth, reproduction and metal accumulation in chosen ornamental fishes. Ecohydrol. Hydrobiol., 8: 89-97. 

  29. Jos, A., S. Pichardo, A.I. Prieto, G. Repetto, C.M. Vazquez, I. Moreno and A.M. Camean. 2005. Toxic cyanobacterial cells containing microcystins induce oxidative stress in exposed tilapia fish (Oreochromis sp.) under laboratory conditions. Aquat. Toxicol., 72: 261-271. 

  30. Kirk, R.S. and J.W. Lewis. 1993. An evaluation of pollutant induced changes in the gills of rainbow trout using scanning electron microscopy. Environ. Technol., 14: 577-585. 

  31. Kirchgessner, M. and F.J. Schwarz. 1986. Mineral content (major and trace element) of carp (Cyprinus carpio L.) fed with different protein and energy supplies. Aquaculture, 54: 3-9. 

  32. Kraemer, L.D., P.G. Campbell and L. Hare. 2005. Dynamics of Cd, Cu and Zn accumulation in organs and sub-cellular fractions in field transplanted juvenile yellow perch (Perca flavescens). Environ. Pollut., 138: 324-337. 

  33. Langlois, B.E., G.L Cromwell and V.W. Hays. 1978. Influence of type of antibiotic and length of antibiotic feeding period on performance and persistence of antibiotic resistant enteric bacteria in growing-finishing swine. J. Ani. Sci., 46: 1383-1396. 

  34. Lewis, A.G. and A. Metaxas. 1991. Concentrations of total dissolved copper in and near a copper-treated salmon net pen. Aquaculture, 99: 269-276. 

  35. Lorentzen, M., A. Maage and K. Julshamn. 1998. Supplementing copper to a fish meal based diet fed to Atlantic salmon parr affects liver copper and selenium concentrations. Aquaculture Nutrition, 4: 67-77. 

  36. MAFF. 1995. Monitoring and Surveillance of Non-radioactive Contaminants in the Aquatic Environment and Activities Regulating the Disposal of Wastes at Sea, Directorate of Fisheries Research, Lowestoft, Aquatic Environment Monitoring Report No.44. 

  37. McCarter, J.A. and M. Roch. 1984. Chronic exposure of coho salmon to sub-lethal concentrations of copper. III. Kinetics of metabolism of metallothionein. Comp. Biochem. Physiol., 77: 83-87. 

  38. Miles, R.D., S.F. O'eefe and P.R. Henry. 1988. The effect of dietary supplementation with copper sulfate or tribasic copper chloride on broiler performance, relative copper bioavaulability, and dietary prooxidant activity. Poultry Science, 77: 416-425. 

  39. O'ell, B.L. 1976. Biochemistry of copper. Symposium on trace elements. The Medical clinics of North America, 60: 697-703. 

  40. Oliva, M., M.C. Garrido, D. Sales Marquez and M.L. Gonzalez de Canales. 2009. Sublethal and lethal toxicity in juvenile Senegal sole (Solea senegalensis) exposed to copper: A preliminary toxicity range-finding test. Exp. Toxicol. Pathol., 61: 113-121. 

  41. Olsson, P.E. 1996. Metallothioneins in fish: induction and use in environmental monitoring. In: Taylor, E.W. (ed.), Toxicology of Aquatic Pollution. Cambridge University Press, Cambridge, UK, pp. 187-204. 

  42. Ortiz, J.B., M.L. Gonzalez de Canales and C. Sarasquete. 1999. Quantification and histopathological alterations produced by sublethal concentrations of copper in fundulus heteroclitus. Ciencias Marinas, 25: 119-143. 

  43. Paul, J.D. and I.M. Davies. 1986. Effects of copper- and tin-based anti-fouling compounds on the growth of scallops (Pecten maximus) and oysters (Crassostrea gigas). Aquaculture, 54: 191-203. 

  44. Peterson, L.K., J.M.D. Auria, B.A. McKeown, K. Moore and M. Shum. 1991. Copper levels in the muscle and liver tissues of farmed Chinook salmon, Oncorhynchus tshawytscha. Aquaculture, 9: 105-115. 

  45. Powell, C. and H. Stillman. 2009. Corrosion Behavior of Copper Alloys used in Marine Aquaculture. International Copper Association (ICA), http://www.copper.org/applications/cuni/pdf/marine_aquaculture.pdf(Retrieved October 15. 2010). 

  46. Rau, M.A., J. Whitaker, J.H. Freedman and R.T.D. Giulio. 2004. Differential susceptibility of fish and rat liver cells to oxidative stress and cytotoxicity upon exposure to prooxidants. Comp. Biochem. Physiol., 137: 335-342. 

  47. Roesijadi, G., W.E. Robinson. 1994. Metal regulation in aquatic animals: mechanisms of uptake, accumulation and release. In: Malins, D.C. and G.K. Ostrander (eds.), Aquatic toxicology. Boca Raton: Lewis Publishers, pp. 387-420. 

  48. Shaw, B.J., G. Al-Bairuty and R.D. Handy. 2012. Effects of waterborne copper nanoparticles and copper sulphate on rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss): Physiology and accumulation. Aquat. Toxicol., 116-117: 90-101. 

  49. Shich, M.S. 1978. Changes of blood enzymes in brook trout induced by infection with Aeromonas salmonicida. J. Fish Biol., 11: 13-18. 

  50. SINTEF report. 2005. Application of brass net cages in Norwegian aquaculture-environmental analysis, Project number 840145. 

  51. Smith, A.C. and F. Ramos. 1980. Automated chemical analysis in fish health assessment. J. Fish Biol., 17: 445-450. 

  52. Solberg, C.B., L. Sæthre and K. Julshamn. 2002. The effect of copper-treated net pens on farmed salmon (Salmo salar) and other marine organisms and sediments. Mar. Pollut. Bull., 45: 126-132. 

  53. Sorensen, E.M. 1991. Metal Poisoning in Fish. CRC Press, Inc., Boca Raton. pp. 374. 

  54. Spear, P.A. 1981. Zinc in the Aquatic Environment: Chemistry, Distribution, and Toxicology. National Research Council of Canada, NRCC Associate Committee on Scientific Criteria for Environmental Quality, Environmental Secretariat, Ottawa. 

  55. Takeda, Y., A. Ichihara, H. Tanioka and H. Inoue. 1964. The Biochemistry of animal cells: I. The effect of corticosteroids on leakage of enzymes from dispersed rat liver cells. J. Biol. Chem., 239: 3590-3596. 

  56. Thomas, P. and L. Robertson. 1991. Plasma cortisol and glucose stress responses of red drum (Sciaenops ocellatus) to handling and shallow water stressors and anesthesia with MS-222, quinaldine sulfate and metomidate. Aquaculture, 96: 69-86. 

  57. Torres, P., L. Tort and R. Flos. 1987. Acute toxicity of copper to Mediterranean dogfish. Comp. Biochem. Physiol., 86: 169-171. 

  58. Tsukrov, I., A. Drach, J. DeCew, M.R. Swift and B. Celikkol. 2011. Characterization of geometry and normal drag coefficients of copper nets. Ocean Engineering, 38: 1979-1988. 

  59. Turkmen, M., A. Turkmen and Y. Tepe. 2008. Metal contaminations in five fish species from Black, Marmara, Aegean and Mediterranean Seas. Turkey, J. Chilean Chem. Soc., 53: 1435-1439. 

  60. Vallee, B.L. and K.H. Falchuk. 1993. The biochemical basis of zinc physiology. Physiological Reviews, 73: 79-118. 

  61. Van Raaij, M.T.M., G.E.E.J.M. Van den Thillart, G.J. Vianen, D.S.S. Pit, P.H.M. Balm and A.B. Steffens. 1996. Substrate mobilization and hormonal changes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss L.) and common carp (Cyprinus carpio L.) during deep hypoxia and subsequent recovery. J. Comp. Physiol., 166: 443-452. 

  62. Watanabe, T., V. Kiron and S. Satoh. 1997. Trace minerals in fish nutrition. Aquaculture, 151: 185-207. 

  63. Ytreberg, E., J. Karlsson and B. Eklund. 2010. Comparison of toxicity and release rates of Cu and Zn from antifouling paints leached in natural and artificial brackish seawater. Sci. Total Environ., 408: 2459-2466. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로