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염화칼슘 농도에 따른 복자기의 생장 및 생리적 반응 특성
The responses of Growth and Physiological traits of Acer triflorum on Calcium Chloride ($CaCl_2$) Concentration 원문보기

한국환경생태학회지 = Korean journal of environment and ecology, v.28 no.5, 2014년, pp.500 - 509  

권민영 (국립산림과학원 생태연구과) ,  김선희 (국립산림과학원 생태연구과) ,  성주한 (국립산림과학원 생태연구과)

초록
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겨울철 눈이 내린 도로의 동결을 방지하기 위해 염화칼슘을 제설제로 사용하는데 이것은 용해되어 도로주변의 수목에 피해를 줄 수 있다. 본 연구는 겨울철 제설제로 이용되는 염화칼슘 처리에 따른 복자기의 생장과 생리적 반응을 알아보기 위해 생장 특성, 광색소함량, 광합성 효율, 엽록소형광반응을 측정하고 식물체 및 토양 분석을 하였다. 실험구는 무처리(대조구), 9mM(0.5%), 18mM(1.0%), 54mM(3.0%)의 총 4개의 처리구로 나누어 용해액을 신초가 나기 전, 일주일 간격으로 2회 500ml씩 살포하였다. 염화칼슘 처리 결과, 처리 후 30일째 염화칼슘 농도가 증가함에 따라 0.5% 처리구부터 총엽록소함량, 광합성율, 증산율, 기공전도도, 광계 II활성이 감소하였고 특히 3.0% 처리구에서 두드러졌다. 반면, 엽록소a/b는 염화칼슘 농도가 높아짐에 따라 증가하였고 수분이용효율은 1.0% 처리구에서부터 증가하였다. 처리 후 50일째 3.0% 처리구는 고사하여 측정할 수 없었고, 모든 처리구에서 대조구에 비해 엽록소a, 엽록소b, 총엽록소함량, 광계II활성, 광계II광화학효율이 감소하였다. 이러한 결과는 $Ca^{2+}$$Cl^-$이 잎과 토양에 축적되어 수분의 흡수와 전자전달의 방해에 기인한 것으로 염화칼슘 처리구에서 수고생장율의 50% 이상 저하를 가져왔다. 염화칼슘의 처리 농도와 시기에 따른 차이는 있었지만 모든 염화칼슘 처리구에서 생장율은 감소하고 생리적 활성은 둔화되었고 이는 시간이 경과함에 따라 심해졌다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

To prevent freezing of the road by fallen snow, Calcium chloride($CaCl_2$) as a deicer is used to very often and it can be harmful to roadside trees. This study was conducted to investigate the effects of Calcium chloride($CaCl_2$) as a deicer on growth and physiological traits...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 그러나 생태적 입지조건이 열악한 도심 내 식재 시에는 공해와 염해에 대한 주의가 필요한 수종이다. 따라서 본 연구는 복자기를 대상으로 염화칼슘 처리에 따른 생장, 생리적 반응의 조사를 통해 가로수의 염류피해에 대한 관리방안 마련을 위한 기초자료를 제공하고자 한다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
본 연구에서 겨울철 제설제로 이용되는 염화칼슘 처리에 따른 복자기의 생장과 생리적 반응을 알아보기 위해서 측정한 것은 무엇인가? 겨울철 눈이 내린 도로의 동결을 방지하기 위해 염화칼슘을 제설제로 사용하는데 이것은 용해되어 도로주변의 수목에 피해를 줄 수 있다. 본 연구는 겨울철 제설제로 이용되는 염화칼슘 처리에 따른 복자기의 생장과 생리적 반응을 알아보기 위해 생장 특성, 광색소함량, 광합성 효율, 엽록소형광반응을 측정하고 식물체 및 토양 분석을 하였다. 실험구는 무처리(대조구), 9mM(0.
염화칼슘은 여름과 겨울에 각각 어떠한 용도로 이용되는가? 최근 겨울철과 이른 봄에 내리는 잦은 강설로 인해 제설제인 염화칼슘(CaCl2)의 사용 빈도와 양이 증가하고 있다. 염화칼슘은 칼슘과 염소의 이온성 화합물로서 습한 여름에는 수분흡수를 하여 습기제거제로 이용되며 겨울에는 물의 어는점을 -55℃까지 낮출 수 있어 눈길이나 빙판길의 얼음을 녹이는 제설제로 이용되고 있다. 하지만, 겨울철 차량과 보행자의 안전을 도모하기 위해 사용된 제설제는 눈에 용해된 염화칼슘이 도로와 토양에 스며들어 주변에 식재된 가로수 생육에 영향을 미친다.
토양 내 염류집적의 증가는 식물에 어떠한 피해를 주는가? 토양 내 염류집적의 증가는 수목에 염스트레스를 유발하며 식물에게 다양한 양상으로 피해를 주게 된다. 우선, 토양 내 염 누적은 삼투압이 증가하여 근권부를 통한 지상부로의 수분 흡수를 방해하고 식물에 흡수된 염은 이온의 농도증가로 식물체 내 독성이 증가하게 된다(Grattan and Grieve, 1999; Parida et al., 2004; Sudhir and Murthy, 2004; Jaleel et al., 2008; Slama et al., 2008). 이온이 과다하게 축적되어 전자전달을 방해하며 이로 인해 광계Ⅱ활성의 저하, 광합성 감소, 엽록소 함량 감소 등의 생리적 변화와 함께 갈변, 조기낙엽, 괴화, 황화현상과 생장 감소 등의 가시적 피해 양상이 같이 나타나게 된다(Schreiber and Bilger, 1993; Jefferies, 1994; Boughalleb et al., 2008; Jaleel et al.
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참고문헌 (48)

  1. Aghaleh, M., V. Niknam and H. Ebrahimzadeh (2009) Salt stress effect on growth, pigments, proteins and lipid peroxidation in Salicornia persica and S. europaea. Bio. Plant. 53(2): 243-248. 

  2. Anderson, J. M. (1986) Photoregulation of the composition, function, and structure of thylakoid membranes. Ann. Rev. Plant Physiol. 37:93-136. 

  3. Arnon, D. I. (1949) Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiol. 24: 1-15. 

  4. Baker, N. R. (2008) Chlorophyll fluorescence a probe of photosynthesis in vivo. Ann. Rev. PlantBiol. 59: 89-113. 

  5. Barhoumia, Z., W. Djebalib, A. Smaouic, W. Chaibib and C. Abdellya (2007) Contribution of NaCl excretion to salt resistance of Aeluropus littoralis (Willd) Parl. J. Plant Physiol. 164(7): 842-850. 

  6. Bernstein, L., L. E. Francois and R. A. Clark (1974) Interactive effects of salinity and fertility on yields of grains and vegetables. Agron. J. 66(3): 412-421. 

  7. Bernstein, L. and H. E. Hayward (1958) Physiology of salt tolerance. Ann. Rev. PlantPhysiol. 9: 25-46. 

  8. Binkley, D., R. Stottlemyer, F. Suarez and J. Cortina (1994) Soil nitrogen availability in some arctic ecosystems in northwest Alaska: responses to temperature and moisture. Ecoscience 1: 64-70. 

  9. Boughalleb, F., M. Denden and B. B. Tiba (2008) Photosystem-II photochemistry and physiological parameters of three fodder shrubs, Nitraria retusa, Atriplex halimus and Medicago arborea under salt stress. Acta Physiol.Plant. 31: 463-476. 

  10. Brugnoli, E. and O. Bjorkman (1992) Growth of cotton under continuous salinity stress: influence on allocation pattern, stomatal and non-stomatal components of photosynthesis and dissipation of excess light energy. Planta 187: 335-347. 

  11. Chaves, M. M., J. Flexas and C. Pinheiro (2009) Photosynthesis under drought and salt stress: regulation mechanisms from whole plant to cell. Ann. Bot. 103(4): 551-560. 

  12. Chow, W. S., M. C. Ball and J. M. Anderson (1990) Growth and photosynthetic responses of spinach to salinity: implications of $K^+$ nutrition for salt tolerance. Aust. J. Plant Physiol. 17(5): 563-578. 

  13. Downton, W. J. S., W. J. R. Grant and S. P. Robinson (1985) Photosynthetic and stomatal responses of spinach leaves to salt stress. Plant Physiol. 77: 85-88. 

  14. Gama, P. B., S. Inanaga, K. Tanaka and R. Nakazawa (2007) Physiological response of common bean (Phaseolus Vulg. L.) seedlings to salinity stress. African. J. Biotechnol. 6(2): 79-88. 

  15. Garg, N. and R. Singla (2004) Growth, photosynthesis, nodule nitrogen and carbon fixation in the chickpea cultivars under salt stress. Braz. J. Plant Physiol. 16: 37-146. 

  16. Grattan, S. R. and C. M. Grieve (1999) Salinity-mineral nutrient relations in horticultural crops. Sci. Hort. 78: 127-157. 

  17. Hichem, H., E. A. Naceur and D. Mounir (2009) Effects of salt stress on photosynthesis, PSII photochemistry and thermal energy dissipation in leaves of two corn (Zea mays L.) varieties. Photosynthetica 47: 517-526. 

  18. Hughes, A. P. and P. R. Freeman (1967) Growth analysis using frequent small harvests. J. appl. ecol. 4: 553-560. 

  19. Jaleel, C. A., B. Sankar, R. Sridharan and R. Panneereslvam (2008) Soil salinity alters growth, chlorophyll content, and secondary metabolite accumulation in Catharanthus roseus. Turk. J. Biol. 32:79-83. 

  20. Jefferies, R. A.(1994) Drought and chlorophyll fluorescence in field grown potato (Solanum tuberosum). Plant Physiol. 90: 93-97. 

  21. Kautsky, H. and A. Hirsch(1931) Neue Versuche zur Kohlens aureassimilation. Naturwissenschaften 19(48): 964. 

  22. Kim P. G. and E. J. Lee (2001) Ecophysiology of Photosynthesis 1: effects of light intensity and intercellular $CO_2$ pressure on photosynthesis. Korean. J. Agric. For. Meteorol. 3(2): 126-133. (in Korean with English abstract) 

  23. Korea Biodiversity Information System, http://www.nature.go.kr (2014. 07. 01) 

  24. Krause, G. H. and E. Weis (1991) Chlorophyll fluorescence and photosynthesis: the basics. Ann. Rev. PlantBiol. 42: 313-349. 

  25. Kwon, H. B. and T. J. Kim (2008) Evaluation of the Coating Liquid Sprayed on Landscape Plants to Prevent De-icing Stresses -Focus on Chlorophyll Fluorescence Analysis-. J. Korean. Inst. Landsc. Archit. 35(6): 29-36. (in Korean with English abstract) 

  26. Lee, S. Y., W. T. Kim, J. H. Ju and Y. H. Yoon (2013) Effect of calcium chloride concentration on roadside ground cover plant growth. J. Korean. Inst. Landsc. Archit. 41(4): 17-23. (in Korean with English abstract) 

  27. Liu, J. and D. C. Shi (2010) Photosynthesis, chlorophyll fluorescence, in organic ion and organic acid accumulations of sunflower in response to salt and salt-alkaline mixed stress. Photosynthetica 48: 127-134. 

  28. Moradi, F. and A. M. Ismail (2007) Responses of photosynthesis, chlorophyll fluorescence and ROS scavenging system to salt stress during seedling and reproductive stages in rice. Ann. Bot. 99: 1161-1173. 

  29. Morsy, M. H. (2003) Growth ability of mango cultivars irrigated with saline water. Acta horticulture 609: 475-482. 

  30. Parida, A., A. B. Das and P. Das (2002) NaCl stress causes changes in photosynthetic pigments, proteins, and other metabolic components in the leaves of a true mangrove, Bruguiera parviflora, in hydroponic cultures. Biol. Plant.45(1): 28-36. 

  31. Parida, A. K., A. B. Das and B. Mittra (2004) Effects of salt on growth, ion accumulation, photosynthesis and leaf anatomy of the mangrove, Bruguiera parviflora. Trees 18: 167-174. 

  32. Percival, G C. and G.A. Fraser (2001) Measurement of the salinity and freezing tolerance of Crataegus genotypes using chlorophyll fluorescence. J. Arboric. 27(5):233-245. 

  33. Pinheiro, H. A., J. V. Silva, L. Endres, V. M. Ferreira, C. A. Camara, F. F. Cabral, J. F. Oliveira, L. W. T. de Carvalho, J. M. dos Santos and B.G. dos Santos Filho (2008) Leaf gas exchange, chloroplastic pigments and dry matter accumulation in castor bean (Ricinus communis L) seedlings subjected to salt stress conditions. Ind. Crops Prod. 27: 385-392. 

  34. Qiu, N. W., Q. T. Lu and C. M. Lu (2003) Photosynthesis, photosystem II efficiency and the xanthophyll cycle in the salt-adapted halophyte Atriplex centralasiatica. New Phytol. 159: 479-486. 

  35. Reddy, M. P. and A. B. Vora (1986) Changes in pigment composition, hill reaction activity and saccharide metabolism in bajra (Pennisetum typhoides S&H) leaves under NaCl salinity. Photosynthetica 20: 50-55. 

  36. Robinson, S. P., W. J. S. Downton and J. A. Millhouse (1983) Photosynthesis and ion content of leaves and isolated chloroplasts of salt-stressed spinach. Plant Physiol. 73: 238-242. 

  37. Schreiber, U. and W. Bilger (1993) Progress in chlorophyll fluorescence research: major developments during the past years in retrospect. Progr. Bot. 54: 151-173. 

  38. Seemann, J. R. and C. Critchley (1985) Effects of salt stress on the growth, ion content, stomatal behaviour and photosynthetic capacity of a salt-sensitive species, Phaseolus vulgaris L. Planta 164: 151-162. 

  39. Shin, S. S., S. D. Park, H. S. Kim and K. S. Lee (2010) Effects of calcium chloride and eco-friendly deicer on the plant growth. J. Korean. Soc. Environ. Eng. 32(5): 487-498. (in Korean with English abstract) 

  40. Silva, E. N., R. B. Ribeiro, S. L. Ferreira-Silva, R. A. Viegas and J. A. G. Silveira (2010) Comparative effects of salinity and water stress on photosynthesis, water relations and growth of Jatropha curcas plants. J. Arid. Environ. 74: 1130-1137. 

  41. Slama, I., T. Ghnaya, A. Savoure and C. Abdelly (2008) Combined effects of long term salinity and soil drying on growth, water relations, nuturient status and proline accumulation of Sesuvium portulacastrum. Comptes rendus biologies 331: 442-451. 

  42. Stepien, P. and G. Klobus (2006) Water relations and photosynthesis in Cucumis sativus L. leaves under salt stress. Biol. Plant.50:610-616. 

  43. Sudhir, P. and S. D. S. Murthy (2004) Effects of salt stress on basic porcesses of photosynthesis. Photosynthetica 42(4): 481-486. 

  44. Sultana, N., T. Ikeda and R. Itoh (1999) Effect of NaCl salinity on photosynthesis and dry matter accumulation in developing rice grains. Environ. exp. Bot. 42: 211-220. 

  45. Sung J. H., S. M. Je, S. H. Kim and Y. K. Kim (2009) Effect of calcium chloride ( $CaCl_2$ ) on the characteristics of photosynthetic apparatus, stomatal conductance, and fluorescence image of the leaves of Cornus kousa. Korean. J. Agric. For. Meteorol. 11(4): 143-150. (in Korean with English abstract) 

  46. Sung J. H., S. M. Je, S. H. Kim and Y. K. Kim (2010) Effect of calcium chloride ( $CaCl_2$ ) on chlorophyll fluorescence image and photosynthetic apparatus in the leaves of Prunus sargentii. J. Korean. For. Soc. 99(6): 922-928. (in Korean with English abstract) 

  47. Takahashi, S. and N. Murata (2008) How do environmental stresses accelerate photoinhibition. Trends. Plant Sci. 13:178-182. 

  48. Yang, X. and C. Lu (2005) Photosynthesis is improved by exogenous glycinebetaine in salt­stressed maize plants. Physiol. Plant. 124: 343-352. 

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