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극지 미생물들의 배양온도에 따른 성장률 및 protease activity 영향 연구
Effect of Temperature on Growth Rate and Protease Activity of Antarctic Microorganisms 원문보기

한국미생물·생명공학회지 = Korean journal of microbiology and biotechnology, v.42 no.3, 2014년, pp.293 - 296  

김현도 (전남대학교 생물공학과) ,  최종일 (전남대학교 생물공학과)

초록
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본 논문에서는 극지미생물의 저온 활성 protease 생산에 관한 연구를 수행하였다. 먼저 protease를 생산하는 극지미생물인 PAMC 25641, 25614, 25719, 25617을 16s rDNA 염기서열 분석을 이용하여 동정하였다. 그 후, 다양한 온도($5^{\circ}C$, $10^{\circ}C$, $15^{\circ}C$, $20^{\circ}C$)에서의 성장률 및 protease activity, specific activity를 확인하였다. 각 미생물의 온도별 성장률은 대체로 비슷한 경향을 보였으나 25617은 $20^{\circ}C$에서 급격한 성장률 증가를 확인할 수 있었다. 또한, specific activity는 25641이 5, 15, $20^{\circ}C$에서 가장 높은 specific activity를 갖는 것을 확인하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was conducted to investigate the effect of culture temperature on the growth rate and protease activity of Antarctic microorganisms. The Antarctic microorganisms PAMC 25641, 25614, 25719 and 25617 were obtained from the Polar and Alpine Microbial Collection (PAMC) at the Korea Polar Resea...

주제어

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문제 정의

  • 논문에서는 저온 활성 효소들 중에 현재 산업적으로 가장 넓은 범위에 이용되고 있는 protease에 관하여 관심을 가지고 연구를 진행하였으며, 극지방에서 채취된 미생물들 가운데 protease 생산력이 우수한 미생물을 확인하고 여러 protease 이용산업에 활용 가능성을 알아보고자 그들이 생산하는 protease의 기초적인 온도조건에 관한 실험에서 얻은 결과들을 보고하고자 작성되었다.
  • 연구에서는 저온 활성 효소들 중에 현재 산업적으로 가장 넓은 범위에 이용되고 있는 protease에 관하여 관심을 가지고 연구를 진행하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
본 연구에서 미생물들의 성장률을 측정한 방법은 무엇인가? 각각의 미생물들의 성장률은 UV/Vis spectrophotometer (Mecasys Co., Seoul, South Korea)를 사용하여 600 nm에서 흡광도를 측정하였다. 배양액을 200 μl 취하여 멸균된 각각의 액체 배지 800 μl에 넣어 5배 희석하여 흡광도를 측정하였고, 멸균된 각각의 액체 배지를 blank로 사용하였다.
Janthinobacterium의 maximum growth를 달성하는 온도는 몇도인가? Janthinobacterium은 30℃의 온도에서 maximum growth를 갖는 것이 확인되었으며, Pseudomonas 역시 30℃에서 가장 잘 성장하는 것으로 확인되었다. 또한, 두 미생물은 5℃에서도 성장이 가능한 저온적응성 미생물이라는 것 역시 보고되었다[14, 15].
미생물들이 내냉성을 지녔다고 판단된 이유는 무엇인가? 위의 미생물들은 모두 5-20℃에서 성장이 가능하였으며, 대부분 20℃에서 가장 잘 성장하였다. 이러한 결과를 볼 때 본 연구에서 사용된 미생물들은 모두 내냉성(psychrotolerant)의 특성을 지니고 있는 것을 알 수 있다[3].
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (17)

  1. Antranikian G, Egorova K. 2007. Extremophiles, a unique resource of biocatalysts for industrial biotechnology, pp. 361-406. Physiology and biochemistry of extremophiles. ASM Press. Washington, D.C. 

  2. Cavicchioli R, Siddiqui KS, Andrews D, Sowers KR. 2002. Low-temperature extremophiles and their application. Curr. Opin. Biotechnol. 13: 253-261. 

  3. Cavicchioli R. 2006. Cold-adapted archaea. Nat. Rev. Nicrobiol. 4: 331-343. 

  4. Chun DS, Kang DK, Kim HK. 2002. Isolation and enzyme production of a neutral protease-strain, Bacillus sp. DS-1. Korean J. Microbiol. Biotechnol. 30: 346-351. 

  5. Dastager SG, Dayanand A, Li WJ, Kim CJ, Lee JC, Park DJ. et al. 2008. Proteolytic activity from an alkali-thermotolerant Streptomyces gulbargensis sp. nov. Curr. Microbiol. 57: 638-642. 

  6. Decedue CJ, Broussard EA, Larson AD, Braymer HD. 1979. Purification and characterization of the extracellular proteinase of Serratia marcescens. Biochemica et Biophysica Acta (BBA)-Enzymology 569: 293-301. 

  7. Fox PE. 1982. Proteolysis in milk and dairy products. Biochemical Society Transactions 10: 282. 

  8. Fujii M, Takagi M, Imanaka T, Aiba S. 1983. Molecular cloning of a thermostable neutral protease gene from Bacillus stearothermophilus in vector plasmid and its expression in Bacillus stearothermophilus and Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 154: 831-837. 

  9. Gerday C, Aittaleb M, Bentahir M, Chessa JP, Claverie P, Collins T. et al. 2000. Cold-adapted enzymes: from fundamentals to biotechnology. Trends. Biotechnol. 18: 103-107. 

  10. Gusek TW, Grimmont F. 1978. Properties and potential applications of a unique heat-stable protease. Food Tech. 42: 102. 

  11. Huston AL. 2008. Biotechnological aspects of cold-adapted enzymes, pp. 347-363. In Psychrophiles: from biodiversity to biotechnology. Springer. Berlin. Heidelberg. 

  12. Kim DK, Park HJ, Lee YM, Hong SG, Lee HK, Yim JH. 2010. Screening for cold-active protease-producing bacteria from the culture collection of polar microorganisms and characterization of proteolytic activities. Korean J. Microbiol. 46: 73-79. 

  13. Lane DJ. 1991. 16S-23S rRNA sequencing, pp. 115-175. In Stackebrandt E, Goodfellow M (eds.), Nucleic Acid Techniques in Bacterial Systematics. Wiley, New York. 

  14. Lee HJ, Rho JK, Yoon SC. 2004. Growth temperature-dependent conversion of de novo-synthesized unsaturated fatty acids into polyhydroxyalkanoic acid and membrane cyclopropane fatty acids in the psychrotrophic bacterium Pseudomonas fluorescens BM07. J. Microbiol. Biotechnol. 14: 1217-1226. 

  15. Lee YM, Kim SY, Jung J, Kim EH, Cho KH, Schinner F. et al. 2011. Cultured bacterial diversity and human impact on alpine glacier cryoconite. J. Microbiol. 49: 355-362. 

  16. Nichols D, Bowman J, Sanderson K, Nichols CM, Lewis T, McMeekin T. et al. 1999. Developments with Antarctic microorganisms: culture collections, bioactivity screening, taxonomy, PUFA production and cold-adapted enzymes. Curr. Opin. Biotechnol. 10: 240-246. 

  17. Peng Y, Yang X, Zhang Y. 2005. Microbial fibrinolytic enzymes: an overview of source, production, properties, and thrombolytic activity in vivo. Appl. Microbiol. Biotechnol. 69: 126-132. 

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