본 연구는 원유로부터 면역증진 젖산균을 분리 및 동정하고, 이 균주의 생리적 특성을 규명하여 상업적으로의 이용가능성을 검토하고자 실시하였다. 이를 위해 Modified MRS 분별배지를 사용하여 노란색 집락을 형성하는 균주를 대상으로 면역활성이 높은 균주를 선발한 결과, D205 균주가 최종 선발되었다. D205 균주는 $IL-1{\alpha}$, $TNF-{\alpha}$, NO 값이 각각 2,500pg 이상/mL, 2,000 pg 이상/mL, $11.55{\pm}2.95{\mu}M$로 나타났으며, 동정결과 Lactobacillus fermentum으로 판명되었고, Lactobacillus fermentum 450으로 명명하였다. Lactobacillus fermentum 450의 최적 생장 온도는 $40^{\circ}C$이었으며, 답즙산과 산성의 pH에서 모두 우수한 생존력을나타내었다. 효소활성은 leucine arylamidase와 acid phosphatase가 비교적 높게 나타났다. 항생제 내성 실험 결과, kanamycin, neomycin, polymyxin B에 내성이 있는 반면 novobiocin에 감수성을 나타냈으며, Salmonella Typhimurium에 대해 63.86%의 억제 효과를 지니고 있으나, Escherichia coli와 Staphylococcus aureus에 대해서는 항균력이 거의 없는 것으로 나타났다.
본 연구는 원유로부터 면역증진 젖산균을 분리 및 동정하고, 이 균주의 생리적 특성을 규명하여 상업적으로의 이용가능성을 검토하고자 실시하였다. 이를 위해 Modified MRS 분별배지를 사용하여 노란색 집락을 형성하는 균주를 대상으로 면역활성이 높은 균주를 선발한 결과, D205 균주가 최종 선발되었다. D205 균주는 $IL-1{\alpha}$, $TNF-{\alpha}$, NO 값이 각각 2,500pg 이상/mL, 2,000 pg 이상/mL, $11.55{\pm}2.95{\mu}M$로 나타났으며, 동정결과 Lactobacillus fermentum으로 판명되었고, Lactobacillus fermentum 450으로 명명하였다. Lactobacillus fermentum 450의 최적 생장 온도는 $40^{\circ}C$이었으며, 답즙산과 산성의 pH에서 모두 우수한 생존력을나타내었다. 효소활성은 leucine arylamidase와 acid phosphatase가 비교적 높게 나타났다. 항생제 내성 실험 결과, kanamycin, neomycin, polymyxin B에 내성이 있는 반면 novobiocin에 감수성을 나타냈으며, Salmonella Typhimurium에 대해 63.86%의 억제 효과를 지니고 있으나, Escherichia coli와 Staphylococcus aureus에 대해서는 항균력이 거의 없는 것으로 나타났다.
The aim of this study was to investigate the physiological characteristics and immunomodulatory activity of Lactobacillus fermentum 450 isolated from raw milk. L. fermentum 450 showed optimum growth at $40^{\circ}C$ and exhibited immunomodulatory effects on $interleukin-1{\alpha}$
The aim of this study was to investigate the physiological characteristics and immunomodulatory activity of Lactobacillus fermentum 450 isolated from raw milk. L. fermentum 450 showed optimum growth at $40^{\circ}C$ and exhibited immunomodulatory effects on $interleukin-1{\alpha}$, tumor necrosis $factor-{\alpha}$, and nitrous oxide at concentrations of >2,500 pg/mL, >2,000 pg/mL, and $11.55{\pm}2.95{\mu}M$, respectively. Of the 16 antibiotics tested, L. fermentum 450 exhibited the highest sensitivity to rifampicin, followed by penicillin-G, and the highest resistance to kanamycin, followed by neomycin and polymyxin B. The strain showed high acid phosphatase activity and was comparatively tolerant to bile juice and acid. Moreover, the strain displayed high resistance to Salmonella Typhimurium (63.86%). These results demonstrate that L. fermentum 450 has potential for use as a probiotic with immunomodulatory activity.
The aim of this study was to investigate the physiological characteristics and immunomodulatory activity of Lactobacillus fermentum 450 isolated from raw milk. L. fermentum 450 showed optimum growth at $40^{\circ}C$ and exhibited immunomodulatory effects on $interleukin-1{\alpha}$, tumor necrosis $factor-{\alpha}$, and nitrous oxide at concentrations of >2,500 pg/mL, >2,000 pg/mL, and $11.55{\pm}2.95{\mu}M$, respectively. Of the 16 antibiotics tested, L. fermentum 450 exhibited the highest sensitivity to rifampicin, followed by penicillin-G, and the highest resistance to kanamycin, followed by neomycin and polymyxin B. The strain showed high acid phosphatase activity and was comparatively tolerant to bile juice and acid. Moreover, the strain displayed high resistance to Salmonella Typhimurium (63.86%). These results demonstrate that L. fermentum 450 has potential for use as a probiotic with immunomodulatory activity.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
따라서 본 연구는 원유로부터 분리․선발된 Lactobacillus fermentum 450을 기능성 식품으로 적용할 수 있는지 알아보기 위해 Lactobacillus fermentum 450의 생리적인 특성과 면역증진 효과를 조사하였다.
본 연구는 원유로부터 면역증진 젖산균을 분리 및 동정하고, 이 균주의 생리적 특성을 규명하여 상업적으로의 이용가능성을 검토하고자 실시하였다. 이를 위해 Modified MRS 분별배지를 사용하여 노란색 집락을 형성하는 균주를 대상으로 면역활성이 높은 균주를 선발한 결과, D205 균주가 최종 선발되었다.
제안 방법
Gilliland와 Walker(1990)의 방법에 따라 MRS 액체배지에서 37℃, 18시간 배양된 L. fermentum 450 균주를 0.05% cysteine이 함유된 MRS 액체배지에 0.3% oxgall을 첨가한 배지와 대조구로서 oxgall을 첨가하지 않은 배지에 MRS 배지에 각각 1% 접종하였다. 37℃의 incubator에서 7시간까지 혐기 배양하면서 시간별로 BCP plate count agar 평판에서 부어 굳인 후 37℃에서 48시간 혐기 배양한 다음 계수하였다.
L. fermentum 450 균주의 genus와 species를 결정하기 위하여 생리적, 생화학적 시험을 하였다. L.
MRS 액체배지에서 30℃, 18시간 동안 배양한 L. fermentum 450 균주를 생리식염수로 희석하여 105~106 CFU/mL 수준의 시료를 조제한 후, API ZYM kit(API bioMerieux, Lyon, France)를 이용하여 30℃에서 5시간 배양한 다음 효소반응시켰다. 효소활성은 표준색상표를 비교하여 0~5의 수치로 표시하였으며, 대조구 이외의 alkaline phosphatase, eterase(C4), esterase lipase(C8), lipase(C14), leucine arylamidase, valine arylamidase, cystine arylamidase, trypsin, chymotrypsin, acid phosphatase, naphthol-AS-BI-phosphohydrolase, α-galactosidase, β-galactosidase, β-glucuronidase, α-glucosidase, β-glucosidase, N-acetyl-β-glucosaminidase, α-mannosidase, β-fucosidase 효소의 활성을 측정하였다.
1% peptone 용액에 적정농도로 희석하였다. 각 항생제가 각 농도 별로 포함된 tryptic soy 액체배지에 105~106 CFU/mL 수준으로 접종하고, 30℃에서 48시간 배양한 후 육안으로 관찰하여 생장 여부를 결정하였다. 항생제 내성 측정은 2배 희석방법을 사용하였으며, 억제된 가장 낮은 농도를 MIC(Minimal inhibitory concentration) 값으로 결정하였다.
fermentum 450 균주는 D-ribose 등 13종으로부터 산을 생성하였다. 그 결과를 ATB identification system에 입력한 결과, Lactobacillus fermentum으로 판명되었으며, 16S rRNA 유전자 부분을 universal primer를 이용한 PCR로 증폭하여 서열 분석하였다. 분석된 염기 서열을 그대로 이용하여 BLAST search한 결과, Lactobacillus fermentum(I.
생균수는 10% 탈지분유 150 mL에 젖산균을 50 μL(9.6×105 CFU/mL)를 접종한 후, 34, 37, 40℃에서 3시간 간격으로 24시간까지 배양한 각 시료를 0.1% peptone 용액에 희석하여 BCP plate count agar 평판에서 부어 굳힌 후, 35℃에서 48시간 배양하여 계수하였고, 온도 및 시간 별로 pH 변화를 측정하였다.
증폭과정은 95℃, 15분을 한 후 95℃, 20초; 50℃, 40초; 72℃, 1분 30초를 30회 시행하였으며, 72℃, 5분으로 마무리하였다. 서열 분석은 PCR product를 solgent PCR purification kit(SolGent, Korea)로 purify한 후 ABI 3730XL DNA sequencer(Applied Biosystems, USA)로 자동 분석하였다.
젖산균의 동정은 Hammes 등(1992)의 방법에 의하여 실시하였다. 순수 분리된 균주는 Gram 염색, 포자생성, 호기적 및 혐기적 생장, Catalase 생성, 15℃ 및 45℃에서의 생장, glucose로부터 가스 생성, arginine으로부터 ammonia 생성을 측정하였으며, 현미경 관찰과 API 50CHL kit(API bioMerieux, France)를 이용한 당 발효 실험을 실시하였다. 젖산균의 DNA sequence 분석에는 universal primer 27F(5'-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3')와 1492R(5'-GGT TAC CTT GTT ACG ACT T-3')를 사용하였으며, solgent EF-Taq을 사용하여 PCR을 실시하였다.
여기에 기질(3,3’,5,5’-tetramethyl benzidine)을 100 μL 첨가하여 25℃에서 30분간 발색반응을 시킨 후 1.0 N sulfuric acid를 100 μL씩 가해 반응을 정지시킨 다음, ELISA reader로 450 nm에서 흡광도를 측정하여 작성한 표준 곡선에서 TNF-α 함량을 계산하였다.
이것을 ELISA reader(Molecular device, USA)로 450nm에서 흡광도를 측정하여 작성한 표준 곡선에서 IL-1α 함량을 계산하였다.
젖산균의 DNA sequence 분석에는 universal primer 27F(5'-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3')와 1492R(5'-GGT TAC CTT GTT ACG ACT T-3')를 사용하였으며, solgent EF-Taq을 사용하여 PCR을 실시하였다.
젖산균의 DNA sequence 분석에는 universal primer 27F(5'-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3')와 1492R(5'-GGT TAC CTT GTT ACG ACT T-3')를 사용하였으며, solgent EF-Taq을 사용하여 PCR을 실시하였다. 증폭과정은 95℃, 15분을 한 후 95℃, 20초; 50℃, 40초; 72℃, 1분 30초를 30회 시행하였으며, 72℃, 5분으로 마무리하였다. 서열 분석은 PCR product를 solgent PCR purification kit(SolGent, Korea)로 purify한 후 ABI 3730XL DNA sequencer(Applied Biosystems, USA)로 자동 분석하였다.
각 항생제가 각 농도 별로 포함된 tryptic soy 액체배지에 105~106 CFU/mL 수준으로 접종하고, 30℃에서 48시간 배양한 후 육안으로 관찰하여 생장 여부를 결정하였다. 항생제 내성 측정은 2배 희석방법을 사용하였으며, 억제된 가장 낮은 농도를 MIC(Minimal inhibitory concentration) 값으로 결정하였다. 항생제는 Sigma(USA)로부터 구매하여 사용하였다.
Gilliland와 Speck(1977)의 방법에 따라 항균력 측정에 사용한 지시균인 Escherichia coli, Salmonella Typhimurium 및 Staphylococcus aureus는 한국식품연구원으로부터 분양 받았으며, 지시균의 증식배지로서 Escherichia coli, Salmonella Typhimurium, Staphyloccous aureus는 nutriunt 액체배지에서 호기적으로 37℃, 24시간 배양하였다. 혼합배양 및 대조군에 사용된 배지는 MRS 액체배지로써 젖산균과 지시균을 각각 접종하여 37℃에서 24시간 배양하였다.
이 때 ELISA reader(Molecular Device, USA) 로 540 nm에서의 흡광도를 측정하였다. NO의 표준물질로는 sodium nitrite를 사용하였다.
세포배양시 사용된 배지는 DMEM(Dulbecco's modified Eagle's medium, with or without phenol red, Gibco)을 사용하였다. 배양 플라스크, 피펫, microplate(96-well) 등은 멸균된 제품들을 이용하였으며, 배양병 등 초자기구들은 autoclave에서 121℃, 15 lb에서 15분간 가압 멸균한 후 사용하였다. 배지는 3차 증류수로 용해한 후 sterilized filter(0.
분리·선정된 D205 균주는 MRS 액체배지에서 2회 이상 계대 배양하여 활성을 높인 후 실험에 사용하였다.
서울우유 중부, 남부, 서부지도소 관할 원유검사소(경기도 및 강원도 일부), 전북 축산시험연구소 및 경북 가축위생시험소에서 지원받아 목장 별 원유를 채취하여 MRS 배지에서 Bromcresol purple과 sodium azide를 첨가한 plate에 smear한 후, 37℃에서 48시간 배양한 다음 노란색 colony 중 각기 다른 모양의 colony를 선발하였고, 순수분리를 위해 MRS agar에 streaking하여 얻어진 colony를 tryptic soy agar(Difco, USA) slant에 37℃에서 18시간 배양하여 보관하였다. 발효유에 적합하기 위해서는 skim milk를 응고시킬 수 있는 산 생성 능력이 있어야 하므로 10% 탈지분유에 분리 균주를 접종한 후, 37℃에서 24시간 배양하여 응고된 균주를 선발하였다.
세포배양시 사용된 배지는 DMEM(Dulbecco's modified Eagle's medium, with or without phenol red, Gibco)을 사용하였다.
항생제 내성 측정은 2배 희석방법을 사용하였으며, 억제된 가장 낮은 농도를 MIC(Minimal inhibitory concentration) 값으로 결정하였다. 항생제는 Sigma(USA)로부터 구매하여 사용하였다. 항생제는amikacin, gentamicin, kanamycin, neomycin, streptomycin, penicillin-G, methicillin, oxacillin, ampicillin, bacitracin, rifampicin, novobiocin, lincomycin, polymyxin B 및 cloramphenicol을 시험에 사용하였다.
항생제는 Sigma(USA)로부터 구매하여 사용하였다. 항생제는amikacin, gentamicin, kanamycin, neomycin, streptomycin, penicillin-G, methicillin, oxacillin, ampicillin, bacitracin, rifampicin, novobiocin, lincomycin, polymyxin B 및 cloramphenicol을 시험에 사용하였다.
데이터처리
결과는 평균±표준편차(SD)로 나타내고, 통계분석은 Statistical Package for Social Sciences(SPSS, SPSS Inc., USA)로 실시하였다.
유의차는 one-way ANOVA로 통계처리하였고, Duncan’s multiple range tests를 사용하여 유의성 5% 수준에서 검정하였다.
이론/모형
Clark 등(1993)의 방법에 따라 37% HCl을 증류수에 섞어 pH 1, 2, 3용액과 대조구로써 pH 6.4 용액을 제조하였고, 제조된 pH 용액 10 mL에 0.05% cysteine이 함유된 MRS 액체배지에서 37℃, 24시간 배양된 L. fermentum 450 균주를 1 mL씩 섞은 후, 37℃에서 혐기 배양하면서 0, 1, 2, 3시간 후의 생균수를 BCP plate count agar 평판에서 부어 굳힌 후 37℃에서 48시간 혐기 배양한 다음 계수하였다.
RAW264.7(2×105/well) 100 μL와 시료 20 μL를 96-well plate에 넣어 37℃, 5%의 CO2 incubator에서 48시간 동안 배양한 후 상징액을 취해 대식세포가 분비하는 Interleukin-1α(IL-1α)을 enzyme-linked immuno-sorbent assay(ELISA)를 이용하여 측정하였다.
7(2×105/well) 100 μL를 넣고 48시간 동안 CO2 incubator에서 37℃를 유지하면서 배양하였다. 배양액 중의 NO 농도는 microplate assay를 이용하여 측정하였다. 먼저 48시간 동안 배양한 후 상징액 50 μL aliquots를 취하여 같은 용량의 Griess 시약(1% sulfanilamide/0.
분리·선정된 D205 균주는 MRS 액체배지에서 2회 이상 계대 배양하여 활성을 높인 후 실험에 사용하였다. 젖산균의 동정은 Hammes 등(1992)의 방법에 의하여 실시하였다. 순수 분리된 균주는 Gram 염색, 포자생성, 호기적 및 혐기적 생장, Catalase 생성, 15℃ 및 45℃에서의 생장, glucose로부터 가스 생성, arginine으로부터 ammonia 생성을 측정하였으며, 현미경 관찰과 API 50CHL kit(API bioMerieux, France)를 이용한 당 발효 실험을 실시하였다.
성능/효과
Benzopyrene을 발암성 물질로 전환시키는 발암효소인 β-glucuronidase의 경우에는 효소활성이 0으로 효소활성이 없는 것으로 나타나, 안전성을 확인할 수 있었다.
Fig. 1에서 보는 바와 같이 L. fermentum 450의 최적 생장온도를 알기 위하여 MRS broth 150 mL에 젖산균 배양액을 10 μL 접종한 후 34℃, 37℃, 40℃ 별로 3시간 간격으로 24시간까지 배양 시험한 결과, L. fermentum 450 균주는 대수기까지 6시간이 소요되었고, 37℃, 40℃에서 거의 비슷하게 성장하였으나, 40℃가 약간 빠른 생장률을 보였다.
fermentum 450 균주의 genus와 species를 결정하기 위하여 생리적, 생화학적 시험을 하였다. L. fermentum 450 균주는 Gram 양성을 나타내었고, 현미경으로 관찰 시 Rod 형태의 hetero균이며, 산소 유무와 상관없이 잘 생장하였고, catalase와 운동성은 음성으로 나타났다. 45℃에서는 생장하나, 15℃에서는 생장하지 않았으며, glucose와 arginine으로부터 각각 gas와 암모니아를 생성하지 않아 genus Lactobacillus에 속하였다.
fermentum 450이 식중독균에 대해 어느 정도 억제하는지를 측정하기 위해 혼합배양을 실시한 결과는 Table 5와 같다. L. fermentum 450 균주는 Salmonella Typhimurium에 대해 63.86%로서 비교적 높은 항균력을 보인 반면, Escherichia coli와 Staphylococcus aureus에 대해 항균력이 없었다. 배양 후 pH의 변화를 보았을 때 대조구인 식중독균은 pH 6.
, 2000). L. fermentum 450 균주의 담즙 내성 결과는 Fig. 3에서 보는 바와 같이 7시간 동안 배양 후 생균수를 비교해 보았을 때, 0.3% oxgall을 첨가하지 않은 경우와 첨가한 경우 약간의 차이는 있었지만, 비슷하게 성장하는 추세를 보였다. 생균수는2.
95 µM로 나타났으며, 동정결과 Lactobacillus fermentum으로 판명되었고, Lactobacillus fermentum 450으로 명명하였다. Lactobacillus fermentum 450의 최적 생장 온도는 40℃이었으며, 답즙산과 산성의 pH에서 모두 우수한 생존력을 나타내었다. 효소활성은 leucine arylamidase와 acid phosphatase가 비교적 높게 나타났다.
45℃에서는 생장하나, 15℃에서는 생장하지 않았으며, glucose와 arginine으로부터 각각 gas와 암모니아를 생성하지 않아 genus Lactobacillus에 속하였다. Species를 정하기 위하여 API 50CHL kit(BioMereux, France)를 이용하여 49종의 당 발효 시험을 실시한 결과(Table 2), L. fermentum 450 균주는 D-ribose 등 13종으로부터 산을 생성하였다. 그 결과를 ATB identification system에 입력한 결과, Lactobacillus fermentum으로 판명되었으며, 16S rRNA 유전자 부분을 universal primer를 이용한 PCR로 증폭하여 서열 분석하였다.
각 지역의 원유를 채취한 후, Modified MRS 배지를 사용하여 노란색 집락을 형성하는 1,054개의 단일 균주를 분리하였고, 산 생성 능력을 보기 위해 10% 탈지분유에 분리균주를 접종한 후, 37℃에서 18시간 및 24시간 배양하여 응고된 균주를 선발한 결과, 598개의 균주가 선발되었다.
그 결과, kanamycin에 대한 항생제 내성의 MIC 농도가 3,200 μg/mL로서 가장 내성이 높았고, neomycin, polymyxin B 순이었다.
대조구인 pH 6.4에서의 균수와 비교한 결과, L. fermentum 450 균주는 pH 2에서 0시간일 때 2.4×108 CFU/mL이던 것이 1시간 경과 후 1.7×108 CFU/mL, 2시간 경과 후 1.6×108 CFU/mL, 3시간 경과 후 1.6×108 CFU/mL로서 젖산균 수가 33% 감소하는 것으로 나타났다.
Leucine arylamidase에 대해 효소활성이 5이었고, acid phosphatase는 효소활성이 4를 나타내었다. 또한 naphtol-AS-BIphosphohydrolase가 3을 나타내 효소활성이 다른 효소들에 비해 높게 나타났으나, 전반적으로 효소활성이 높지 않은 것으로 나타났다. Benzopyrene을 발암성 물질로 전환시키는 발암효소인 β-glucuronidase의 경우에는 효소활성이 0으로 효소활성이 없는 것으로 나타나, 안전성을 확인할 수 있었다.
반면, novobiocin에 대한 MIC 농도는 2.5 μg/mL로서 가장 감수성이 높았고, gentamycin, lincomycin, chloramphenicol 등도 감수성이 높은 것으로 나타났다.
86%로서 비교적 높은 항균력을 보인 반면, Escherichia coli와 Staphylococcus aureus에 대해 항균력이 없었다. 배양 후 pH의 변화를 보았을 때 대조구인 식중독균은 pH 6.40~6.49이며, 혼합배양액은 pH 5.42~5.46으로 혼합배양과정에서 생성된 젖산의 영향으로 억제효과가 약간은 있었지만, 크게 좌우하지는 않은 것으로 사료되었다. 균주의 항균력은 같은 종의 균주라 하더라도 병원균의 종류에 따라 젖산균에 의한 생장 억제 정도가 다르다는 것을 보여준다(Jacobsen et al.
분리된 젖산균을 대상으로 10% 탈지분유에서 37℃에서 24시간 배양하여 응고된 균주만 선택하여 면역활성을 측정한 결과, L. fermentum 450 균주의 IL-1α, TNF-α, NO 값이 각각 2,500 pg 이상/mL, 2,000 pg 이상/mL, 11.55±2.95 μM으로 나타났다(Table 1).
그 결과를 ATB identification system에 입력한 결과, Lactobacillus fermentum으로 판명되었으며, 16S rRNA 유전자 부분을 universal primer를 이용한 PCR로 증폭하여 서열 분석하였다. 분석된 염기 서열을 그대로 이용하여 BLAST search한 결과, Lactobacillus fermentum(I.D. 99%)으로 동정되었고, Lactobacillus fermentum 450으로 명명하였다.
생균수는2.1×109 CFU/mL, 0.3% oxgall을 첨가하였을 때의 생균수는 1.2×109 CFU/mL로 약간 억제 를 받기는 하였으나, 담즙 내성이 있는 것으로 나타났다.
본 연구는 원유로부터 면역증진 젖산균을 분리 및 동정하고, 이 균주의 생리적 특성을 규명하여 상업적으로의 이용가능성을 검토하고자 실시하였다. 이를 위해 Modified MRS 분별배지를 사용하여 노란색 집락을 형성하는 균주를 대상으로 면역활성이 높은 균주를 선발한 결과, D205 균주가 최종 선발되었다. D205 균주는 IL-1α, TNF-α, NO 값이 각각 2,500 pg 이상/mL, 2,000 pg 이상/mL, 11.
효소활성은 leucine arylamidase와 acid phosphatase가 비교적 높게 나타났다. 항생제 내성 실험 결과, kanamycin, neomycin, polymyxin B에 내성이 있는 반면 novobiocin에 감수성을 나타냈으며, Salmonella Typhimurium에 대해 63.86%의 억제 효과를 지니고 있으나, Escherichia coli 와 Staphylococcus aureus에 대해서는 항균력이 거의 없는 것으로 나타났다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
Probiotics가 면역체계를 조절하는 방법은?
Probiotics는 숙주의 장내 균총의 능력을 개선시킴으로써 숙주동물에 매우 유익한 효과를 주는 살아있는 미생물로 항암효과, 항균작용, 혈중콜레스테롤 저하, 면역체계 조절 등의 다양한 효능을 나타내고 있다(Sanders, 1999; Gill, 2003; Seo and Lee, 2007). 이러한 유익한 젖산균은 macrophage와 lymphocyte 활성, T-cell과 B-cell 증식, natural killer-cell 기능 등의 면역기능을 자극하여 면역체계를 조절함으로써 면역증강 효과에 기여하고 있다.
Probiotics란?
Probiotics는 숙주의 장내 균총의 능력을 개선시킴으로써 숙주동물에 매우 유익한 효과를 주는 살아있는 미생물로 항암효과, 항균작용, 혈중콜레스테롤 저하, 면역체계 조절 등의 다양한 효능을 나타내고 있다(Sanders, 1999; Gill, 2003; Seo and Lee, 2007). 이러한 유익한 젖산균은 macrophage와 lymphocyte 활성, T-cell과 B-cell 증식, natural killer-cell 기능 등의 면역기능을 자극하여 면역체계를 조절함으로써 면역증강 효과에 기여하고 있다.
Probiotics의 효능은?
Probiotics는 숙주의 장내 균총의 능력을 개선시킴으로써 숙주동물에 매우 유익한 효과를 주는 살아있는 미생물로 항암효과, 항균작용, 혈중콜레스테롤 저하, 면역체계 조절 등의 다양한 효능을 나타내고 있다(Sanders, 1999; Gill, 2003; Seo and Lee, 2007). 이러한 유익한 젖산균은 macrophage와 lymphocyte 활성, T-cell과 B-cell 증식, natural killer-cell 기능 등의 면역기능을 자극하여 면역체계를 조절함으로써 면역증강 효과에 기여하고 있다.
참고문헌 (37)
Arunachalam, K., Gill, H. S. and Chandra, R. K. 2000. Enhancement of natural immune function by dietary consumption of Bifidobacterium lactis (HN019). Eur. J. Clin. Nutr. 54: 263-267.
Bao, Y., Zhang, Y., Zhang, Y., Liu, Y., Wang, S., Dong, X., Wang, Y. and Zhang, H. 2010. Screening of potential probiotic properties of Lactobacillus fermentum isolated from traditional dairy products. Food Control 21(5):695-701.
Borriello, S. P., Hammes, W. P., Holzapfel, W., Marteau, P., Schrezenmeir, J., Vaara, M. and Valtonen, V. 2003. Safety of probiotics that contain Lactobacillus or Bifidobacteria. Clin. Infect. Dis. 36:775-780.
Cho, M. K., Kim, K., Kim, C. H. and Kim, K. Y. 2000. Isolation and characterization of Lactobacillus fermentum YL-3 as a poultry probiotics. Kor. J. Appl. Microbial. Biotechnol. 28(5):279-284.
Cho, S. A., Kim, K. S., Do, J. R., Kim, S. H. and Lim, S. D. 2010. Physiological characteristics and immunomodulating activity of Streptococcus macedonicus LC743 isolated from raw milk. Korean J. Food Sci. Ani. Resour. 30(6):957-965.
Clark, P. A., Cotton, L. N. and Martin, J. H. 1993. Selection of bifidobacteria for use as dietary adjuncts in cultured dairy foods: II-Tolerance to simulated pH of human stomachs. Cul. Dairy Prod. J. 28:11-14.
Gill, H. S. 2003. Probiotics to enhance anti-infective defences in the gastrointestinal tract. Best Prac. Res. CI. EM. 17(5): 755-773.
Gilliand, S. E. and Speck, M. L. 1977. Deconjugation of bile acids by intestinal lactobacilli. Appl. Environ. Micobiol. 33:15-18.
Gilliland, S. E. and Walker, D. K. 1990. Factors to consider when selecting a culture of Lactobacillus acidophilus as a dietary adjunct to produce a hypocholesterolemic effect in humans. J. Dairy Sci. 73:905-911.
Gilliland, S. E., Staley, T. E. and Bush, L. J. 1984. Importance of bile tolerance of Lactobacillus acidophilus used as a dietary adjunct. J. Dairy Sci. 67:3045-3051.
Hammes, W. P., Weiss, N. and Holzapfel, W. 1992. The genera Lactobacilli and Carnobacterium. pages 1563-1578 in The Prokaryotes. 2nd, Springer-Verlag, New York. USA.
Havinaar, R., Brink, B. T. and Veid, J. H. J. I. 1992. Selection of strains for probiotic use. In Probiotics. Springer Netherlands. pp 209-224.
Hirose, Y., Murosaki, S., Yamamoto, Y., Yoshikai, Y. and Tsuru, T. 2006. Daily intake of heat-killed Lactobacillus plantarum L-137 augments acquired immunity in healthy adults. J. Nutr. 36(12):3069-3073.
Jacobsen, C. N., Nielsen, V. R., Hayford, A. E., Moller, P. L., Michaelsen, K. F., Paerregaard, A., Sandstrom, B., Tvede, M. and Jakobsen, M. 1999. Screening of probiotic activities of forty-seven strains of Lactobacillus spp. by in vitro techniques and evaluation of the colonization ability of five selected strains in humans. Appl. Environ. Microbiol. 65:4949-4956.
Kim, C. 2009. Immunomodulatory effects of lactic acid bacteria and bioactive peptides derived from milk. Korean J. Dairy Sci. Tecnol. 27(1):37-43.
Kim, S. Y., Shin, K. S., and Lee, H. 2004. Immunopotentiating activities of cellular components of Lactobacillus brevis FSB-1. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 33(9):1552-1559.
Larsen, A. G., Vogensen, F. K. and Josephsen, J. 1993. Antimicrobial activity of lactic acid bacteria isolated from sour doughs: Purification and characterization of bavaricin A, a bacteriocin produced by Lactobacillus bavaricus MI401. J. Appl. Bacteriol. 75:113-122.
Lee, N. K., Kim, T. H., Choi, S. Y. and Park, H. D. 2004. Identification and probiotic properties of Lactobacillus lactis NK24 isolation from jetgal, a Korean fermented food. Food Sci. Biotechnol. 13:417-420.
Lim, S. D., Kim, K. S. and Do, J. R. 2011. Physiological characteristics and production of vitamin K2 by Lactobacillus fermentum LC272 isolated from raw milk. Korean J. Food Sci. Ani. Resour. 31:513-520.
Lin, W. H., Yu, B., Jang, S. H. and Tsen, H. Y. 2007. Different probiotic properties for Lactobacillus fermentum strains isolated from swine and poultry. Anaerobe 13(3):107-113.
Makras, L., Triantafyllou, V., Fayol-Messaoudi, D., Adriany, T., Zoumpopoulou, G., Tsakalidou, E., Serivin, A. and De Vuyst, L. 2006. Kinetic analysis of the antibacterial activity of probiotic lactobacilli towards Salmonella enterica serovar Typhimurium reveals a role for lactic acid and other inhibitory compounds. Res. Microbiol. 157(3):241-247.
Marin, M. L., Lee, J. H., Murtha, J., Ustunol, Z. and Pestka, J. J. 1997. Differential cytokine production in clonal macrophage and T-cell lines cultured with bifidobacteria. J. Dairy Sci. 80:2713-2720.
Mcdonald, L. C., Fleming, H. P. and Hassan, H. M. 1990. Acid tolerance of Leuconostoc mesenteroides and Lactobacillus casei. Appl. Environ. Microbial. 53:2124-2128.
Parente, E. and Ricciardi, A. 1999. Production, recovery and purification of bacteriocins from lactic acid bacteria. Appl. Microbiol. Biotechnol. 52(5): 628-638.
Park, S. H., Kim, Y. A., Lee, D. K., Lee, S., Chung, M. J., Kang, B. Y., Kim, K. and Ha, N. J. 2007. Antibacterial activity and macrophage activation of lactic acid bacteria. J. Environ. Toxicol. 22(4):287-297.
Park, S. Y., Shim, H. Y., Kim, K. S. and Lim, S. D. 2013. Physiological characteristics and GABA production of Lactobacillus plantarum K74 isolated from kimchi. Korean J. Dairy Sci. Technol. 31(2):143-152.
Perdigon, G., de Macias, M. E. N., Alvarez, S., Medici, M., Oliver, G., de Ruiz, H. and Pesce, A. 1986a. Effect of a Mixture of Lactobacillus casei and Lactobacillus acidophilus administered orally on the immune system in mice. J. Food Prot. 49(12):986-993.
Perdigon, G., de Macias, M. E., Alvarez, S., Oliver, G., and de Ruiz Holgado, A. A. 1986b. Effect of perorally administered lactobacilli on macrophage activation in mice. Infect. Immunity 53(2):404-410.
Reid, G. and Burton, J. 2002. Use of Lactobacillus to prevent infection by pathogenic bacteria. Microbes Infect. 4(3):319-324.
Saarela, M., Mogensen, G., Fonden, R., Matto, J. and Mattila-Sandholm, T. 2000. Probiotic bacteria: Safety, functional and technological properties. J. Biotechnol. 84:197-215.
Sanders, M. E. 1999. Probiotics. Food Technol. 53(11):67-77.
Sanni, A. I., Morlon-Guyot, J. and Guyot, J. P. 2002. New efficient amylase-producing strains of Lactobacillus plantarum and L. fermentum isolated from different Nigerian traditional fermented foods. Int. J. Food Microbiol. 72(1):53-62.
Seo, J. H. and Lee, H. 2007. Characteristics and immunomodulating activity of lactic acid bacteria for the potential probiotics. Korean J. Food Sci. Technol. 39(6):681-687.
Strompfova, V., Marci？akova, M., Simonova, M., Bogovic-Matijasic, B. and Laukova, A. 2006. Application of potential probiotic Lactobacillus fermentum AD1 strain in healthy dogs. Anaerobe 12(2):75-79.
Zoumpopoulou, G., Foligne, B., Christodoulou, K., Grangette, C., Pot, B. and Tsakalidou, E. 2008. Lactobacillus fermentum ACA-DC 179 displays probiotic potential in vitro and protects against trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS)-induced colitis and Salmonella infection in murine models. Int. J. Food Microbiol. 121(1):18-26.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.