$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

Pseudoalteromonas donghaensis HJ51의 체외 단백질 분해효소 특성과 생산 조건
Characterization and optimum production condition of extracellular protease from Pseudoalteromonas donghaensis HJ51 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.51 no.1, 2015년, pp.75 - 80  

오지성 (충북대학교 자연과학대학 미생물학과) ,  최윤수 (충북대학교 자연과학대학 미생물학과) ,  노동현 (충북대학교 자연과학대학 미생물학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

동해에서 분리된 Pseudoalteromonas donghaensis HJ51는 체외분비 단백질 분해효소를 생산하는 신종 미생물로 보고되었다. 체외 단백질 분해효소의 특성과 최적 생산 조건을 결정하기 위해 crude supernatant을 사용하여 단백질 분해효소의 최적 활성 온도와 pH를 조사한 결과 $40^{\circ}C$와 pH 7.5-10.5이었으며, pH 11에서도 88%의 높은 상대적인 효소 활성을 나타내었다. 효소의 금속 요구성을 조사한 결과, $Fe^{3+}$를 10 mM로 첨가하였을 때 최대 효소활성 증가를 보였다. 최대의 효소생산 조건을 탐색한 결과, 기본배지인 PY-ASW (peptone 0.5%, yeast extract 1.0%, artificial seawater)에 탄소원을 첨가하지 않는 것이 가장 높았으며, 질소원으로는 peptone 보다 beef extract, tryptone, casmino acids을 각각 첨가했을 때 활성이 21, 7, 4% 증가하였다. 이러한 결과를 종합해 볼 때 P. donghaensis HJ51이 생산하는 효소는 알칼리성 pH 환경 및 저온환경에서 활성이 필요한 분야에 응용이 가능할 것으로 사료된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Pseudoalteromonas donghaensis HJ51, isolated from the East Sea, has been reported as a novel strain to produce extracellular protease. Crude supernatant was used to determine optimal activity and optimal production conditions for the enzyme. It was found that the optimal temperature and pH of the pr...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • , 2000). P. donghaensis HJ51로부터 생산된 체외분비 단백질 분해 효소가 저온성 효소의 특성을 가지는지 알아보기 위하여 반응온도에 대한 효소의 활성을 조사한 결과 Fig. 1과 같았다. 반응온도에 대한 효소의 활성은 4°C부터 점진적으로 증가하여 40°C에서 약 1,409 unit/ml의 최적 활성을 나타내었다.
  • , 2009). 본 연구에서는 동해 해양 환경으로부터 분리되어 신종 미생물로 보고된 P. donghaensis HJ51이 생산하는 체외분비 단백질 분해효소의 특성 및 생산에 대해 보고하는 바이다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
단백질 분해효소란? 단백질 분해효소는 단백질의 구성성분인 아미노산 간 펩타이드 결합의 가수분해를 촉매 하는 효소이며, 생명체 내외에서 중요한 생리적 역할과 기능을 수행하는 효소로 알려져 있다. 이러한 단백질 분해효소는 산업적인 관점에서 화학적 방법을 대체하여 사용할 수 있는 고부가가치 자원으로 주목을 받고 있으며, 식품공업, 제약산업, 피혁가공업 및 세제공업 등의 다양한 산업에 응용되어 세계 공업효소 판매량의 60%를 차지하는 것으로 추정되고 있다(Rao et al.
해양 세균으로 알려진 Pseudoalteromonas 속 미생물들이 수행하는 역할은? 해양 세균으로 알려진 Pseudoalteromonas 속 미생물들은 다양한 생물학적 활성 분자 및 체외 분비 효소들을 생산함으로써 해양 서식처에 중요 상호작용 역할을 수행하는 것으로 알려져 있다(Holmström and Kjelleberg, 1999; Bowman,2007). 특히 이들 미생물에 의해 생산된 단백질 분해효소들은 저온 또는 고염 등의 극한 환경에서 높은 활성을 보유하거나, 해양 미세 조류 성장의 억제 등 다양한 특성을 지니는 것으로 알려져 있다(Lee et al.
저온성 효소들의 고유 활성도는 30–50°C 사이의온도에서 최적의 활성을 알 수 있는 결과는? 1과 같았다. 반응온도에 대한 효소의 활성은 4°C부터 점진적으로 증가하여 40°C에서 약 1,409 unit/ml의 최적 활성을 나타내었다. 최적온도 이후 활성이 서서히 감소하여 45°C에서 약 97%의 활성을 보였으며, 그 후 50°C에서 활성이 급격하게 감소하여 약 63%의 활성을 나타내었다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (28)

  1. Bajaj, B.K. and Jamwal, G. 2013. Thermostable alkaline protease production from Bacillus pumilus D-6 by using agro-residues as substrates. Adv. Enzyme Res. 1, 30-36. 

  2. Bowman, J.P. 2007. Bioactive compound synthetic capacity and ecological significance of marine bacterial genus Pseudoalteromonas. Mar. Drugs 5, 220-241. 

  3. Cha, I.T., Lim, H.J., and Roh, D.H. 2007. Isolation of Pseudoalteromonas sp. HJ47 from deep sea water of East Sea and characterization of its extracellular protease. Kor. J. Life Sci. 17, 272-278. 

  4. Cha, I.T., Oh, Y.S., Cho, W.D., Lim, C.S., Lee, J.K., Lee, O.S., and Roh, D.H. 2009. Production condition and characterization of extracellular protease from Micrococcus sp. HJ19. Kor. J. Microbiol. 45, 69-73. 

  5. Cho, W.D., Lee, J.K., Lim, C.S., Park, A.R., Oh, Y.S., and Roh, D.H. 2010. Isolation of Pseudoxanthomonas sp. WD12 and WD32 producing extracellular protease. Kor. J. Microbiol. 46, 63-69. 

  6. Denkin, S.M. and Nelson, D.R. 1999. Induction of protease activity in Vibrio anguillarum by gastrointerstinal mucus. Appl. Environ. Microbiol. 65, 3555-3560. 

  7. Fernandez, J., Mohedano, A.F., Polanco, M.J., Medina, M., and Nunez, M. 1996. Purification and characterization of an extracellular cysteine proteinase produced by Micrococcus sp. INIA 528. J. Appl. Microbiol. 81, 27-34. 

  8. Gupta, R., Beg, Q.K., and Lorenz, P. 2002. Bacterial alkaline proteases: molecular approaches and industrial applications. Appl. Microbiol. Biotechnol. 59, 15-32. 

  9. He, H., Chen, X., Li, J., Zhang, Y., and Gao, P. 2004. Taste improvement of refrigerated meat treated with cold-adapted protease. Food Chem. 84, 307-311. 

  10. Holmstrom, C. and Kjelleberg, S. 1999. Marine Pseudoalteromonas species are associated with higher organisms and produce biologically active extracellular agents. FEMS Microbiol. Ecol. 30, 285-293. 

  11. Huston, A.L., Krieger-brockett, B.B., and Deming, J.W. 2000. Remarkably low temperature optima for extracellular enzyme activity from Arctic bacteria and sea ice. Environ. Microbiol. 2, 383-388. 

  12. Kulakova, L., Galkin, A., Kurihara, T., Yoshimura, T., and Esaki, N. 1999. Cold-active serine alkaline protease from the psychrotrophic bacterium Shewanella strain Ac10: gene cloning and enzyme purification and characterization. Appl. Environ. Microbiol. 65, 611-617. 

  13. Kwon, Y.T., Lee, H.H., and Rho, H.M. 1993. Cloning, expression and sequencing of the minor protease encoding gene from Serratia marcescens ATCC 21074. Gene 125, 75-80. 

  14. Lee, S.O., Kato, J., Takiguchi, N., Kuroda, A., Ikeda, T., Mitsutani, A., and Ohtake, H. 2000. Involvement of an extracellular protease in algicidal activity of the marine bacterium Pseudoalteromonas sp. strain A28. Appl. Environ. Microbiol. 66, 4334-4339. 

  15. Lee, Y.K., Oh, Y.S., and Roh, D.H. 2012. Production properties on extracellular protease from Chryseobacterium novel strain JK1. Kor. J. Microbiol. 48, 48-51. 

  16. Lyman, J. and Fleming, R.H. 1940. Composition of sea water. J. Mar. Res. 3, 134-146. 

  17. Nadeem, M., Qazi, J.I., Baig, S., and Syed, Q. 2008. Effect of medium composition on commercially important alkaline protease production by Bacillus licheniformis N-2. Food Technol. Biotechnol. 46, 388-394. 

  18. Nascimento, W.C.A. and Martins, M.L.L. 2004. Production and properties of an extracellular protease from thermophilic Bacillus sp. Braz. J. Microbiol. 35, 91-96. 

  19. Oh, Y.S., Park, A.R., Lee, J.K., Lim, C.S., Yoo, J.S., and Roh, D.H. 2011. Pseudoalteromonas donghaensis sp. Nov., isolated from seawater. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 64, 351-355. 

  20. Rao, M.B., Tanksale, A.M., Ghatge, M.S., and Deshpande, V.V. 1998. Molecular and biotechnological aspects of microbial proteases. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62, 597-635. 

  21. Sanchez-porro, C., Mellado, E., Bertoldo, C., Antranikian, G., and Ventosa, A. 2003. Screening and characterization of the protease CP1 produced by moderately halophilic bacterium Pseudoalteromonas sp. Strain CP76. Extremophiles 7, 221-228. 

  22. Secades, P. and Guijarro, J.A. 1990. Purification and characterization of an extracellular protease from the fish pathogen Yersinia ruckeri and effect of culture conditions on production. Appl. Environ. Microbiol. 65, 3969-3975. 

  23. Thangam, E.B. and Rajkumar, G.S. 2002. Purification and characterization of alkaline protease from Alcaligenes faecalis. Biotechnol. Appl. Biochem. 35, 149-154. 

  24. Wang, Q.F., Hou, Y.H., Xu, Z., Miao, J.L., and Li, G.Y. 2008a. Purification and properties of an extracellular cold-active protease from the psychrophilic bacterium Pseudoalteromonas sp. NJ276. Biochem. Engin. J. 38, 362-368. 

  25. Wang, S.L., Yang, C.H., Liang, T.W., and Yen, Y.H. 2008b. Optimization of conditions for protease production by Chryseobacterium taeanense TKU001. Bioresour. Technol. 99, 3700-3707. 

  26. Windle, H.J. and Kelleher, D. 1997. Identification and characterization of a metalloprotease activity from Helicobacter pylori. Infect. Immun. 65, 3132-3137. 

  27. Yan, B.Q., Chen, X.L., Hou, X.Y., He, H., Zhou, B.C., and Zhang, Y.Z. 2009. Molecular analysis of the gene encoding a cold-adapted halophilic subtilase from deep-sea psychrotolerant bacterium Pseudoalteromonas sp. SM9913: cloning, expression, characterization and function analysis of the C-terminal PPC domains. Extremophiles 13, 725-733. 

  28. Zeng, R., Zhang, R., Zhao, J., and Lin, N. 2003. Cold-active serine alkaline protease from the psychrophilic bacterium Pseudomonas strain DY-A: Enzyme purification and characterization. Extremophiles 7, 335-337. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로