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추출 방법에 따른 비파엽 추출물의 미백 및 항염활성에 관한 연구
A Study on Whitening and Anti-inflammatory Effects of Eriobotrya Japonica Leaf Extracts with Different Extraction Methods 원문보기

大韓化粧品學會誌 = Journal of the society of cosmetic scientists of Korea, v.41 no.2, 2015년, pp.151 - 157  

박정옥 (대봉엘에스(주) 천연물소재응용연구소) ,  박진오 (대봉엘에스(주) 천연물소재응용연구소) ,  주철규 (대봉엘에스(주) 천연물소재응용연구소)

초록
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본 연구에서는 기능성 화장품 소재 개발을 위하여 비파엽 추출물을 제조하고 효소 및 세포 활성평가를 진행하였다. 활성평가는 tyrosinase 측정법을 이용한 미백 효능, NO 측정법을 이용한 항염 효능에 대한 활성등을 분석하였다. 미백 효능 관련 tyrosinase 활성 저해는 10% 농도의 비파엽 초임계 추출물에서 미약한 활성을 나타내었다. 항염 효능 관련 NO 활성 저해 분석 결과, 초임계 추출물, 에탄올 환류 추출물, 열수 추출물의 순서로 NO 억제 활성을 나타내었다. MTT assay를 실시한 결과, 70% 에탄올 환류 추출물 5% 처리를 제외하고는 모든 농도에서 세포독성이 관찰되지 않았다. 미백 효능 관련 멜라닌 생성 저해는 5% 처리 농도에서 30%, 70% 에탄올 환류 추출물이 강하게 멜라닌 생성을 억제하는 결과를 보였다. 이상의 연구결과들로부터 비파엽 추출물 제조를 통한 우수한 항염 효능 및 미백 효능 관련 활성을 나타내는 추출조건을 도출하였으며, 향후 기능성 화장품 소재 개발을 위한 기초 연구용 자료로서의 역할을 제시할 수 있을 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, we prepared Eriobotrya japonica leaf extracts by several extraction processes and then evaluated their biological activities for their potential application as a new raw material of functional cosmetic. Their whitening effects were measured by tyrosinase inhibitory activities, and ant...

주제어

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문제 정의

  • 현재 비파엽을 이용한 다양한 기능성에 관한 연구가 보고되고 있으나 화장품 소재로 이용할 수 있는 미백활성과 항염활성의 연구결과는 미비하다. 본 연구에서는 비파엽을 이용하여 추출물을 제조하고 이에 대한 미백, 항염 효능을 분석하고 평가하여 기능성에 적합한 추출조건을 탐색하고 향후 기능성 화장품 소재 개발을 위한 기초 연구용 자료를 제공하고자 한다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
멜라닌은 무엇인가? 피부에 존재하는 흑색색소인 멜라닌은 색소 침착과 피부의 흑화현상의 원인물질이며, 머리카락의 색상을 결정하는 주요한 인자로서 자외선으로부터 피부세포를 보호하기 위한 역할을 가지고 있다[1]. 그러나 과도한 멜라닌의 축적은 주근깨, 기미, 검버섯 등의 원인이 된다[2,3].
염증반응에서 NO의 주된 역할은 무엇인가? 염증반응은 피부손상 및 노화의 주요 원인의 일종으로서 발생하며, 이 과정은 체내 세포 조직에 어떠한 기질적 변화를 가져오는 침습이 가해질 때, 생체가 재생이나 회복 등을 하기 위한 방어적 반응을 나타내는 것이다[9,10]. 이 과정에서 활성산소종(reactive radical species)의 일종인 nitric oxide (NO)는 대식세포와 같은 면역세포에 의해 생성되어 각종 생리 및 병리적 과정에 있어 중요한 역할을 한다[11-13]. 하지만 과도하게 생성된 NO는 부작용을 일으켜 혈관투과성, 부종 등의 염증반응을 촉진시킬 뿐만 아니라 염증매개체의 생합성을 촉진하여 급성과 만성 염증에 대한 반응으로 조직의 손상 및 유전자 변이 등을 일으킬 수 있다[14-16].
멜라닌에는 어떤 타입이 있는가? 그러나 과도한 멜라닌의 축적은 주근깨, 기미, 검버섯 등의 원인이 된다[2,3]. 멜라닌 형성과정은 melanocyte specific enzymes인 tyrosinase와 tyrosinase-related proteins (TRPs) 등에 의해 조절되며[4,5] 크게 두 가지 타입의 멜라닌이 만들어지는데, 노란색에서 붉은색의 색소를 보이는 pheomelanin과 검은색에서 갈색을 띠는 eumelanin이다[6]. Tyrosinase는 phenylalanine의 한 종류인 tyrosine을 DOPAquinone과 DOPAchrome으로 산화시켜각각 멜라닌의 종류인 eumelanin, pheomelanin으로의 합성을 활성화 시키는 효소이다[7].
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참고문헌 (25)

  1. B. A. Gilchrest and M. S. Eller, DNA photodamage stimulates melanogenesis and other photoprotective responses, J. Investig. Dermatol. Symp. Proc., 4(1), 35 (1999). 

  2. J. A. Kim, J. Y. Choi, A. R. Son, S. H. Park, G. H. Xu, J. G. Lee, I. S. Oh, J. J. Kim, H. W. Chang, S. R. Chung, T. S. Jang, and S. H. Lee, Inhibitory effect of some natural polyphenols isolated from Euphobiaceae plants on melanogenesis, Kor. J. Pharmacogn., 35, 157 (2004). 

  3. Y. Mishima, S. Hatta, and Y. Ohyama M. Inazu Induction of melanogenesis wuppression: cellular pharmacology and mode of differential action. Pigment Cell Res., 1(6), 367 (1988). 

  4. V. J. Hearing and M. Jimenez, Analysis of mammalian pigmentation at the molecular level, Pigment Cell Res., 2(2), 75 (1989). 

  5. V. J. Hearing and K. Tsukamoto, Enzymatic control of pigmentation in mammals, FASEB J., 5(14), 2902 (1991). 

  6. T. Kobayashi, W. D. Vieira, B. Potterf, C. Sakai, G. Imokawa, and V. J. Hearing, Modulation of melanogenic protein expression during the switch from euto pheomelanogenesis, J. Cell Sci., 108(6), 2301 (1995). 

  7. L. D. P. Uyen, D. H. Nguyen, and E. K. Kim, Mechanism of skin pigmentation, B-iotechnology and Bioprocess Engineering, 13(4), 383 (2008). 

  8. D. H. Nguyen, D. T. M. Nguyen, L. H. La, S. H. Yang, H. B. Lee, R. J. Kim, J. H. Shin, D. M. Kim, and E. K. Kim, Depigmenting effect of Cinnamomum cassia Presl in B16F10 melanoma cells, Korean J. Chem. Eng., 24(5), 827 (2007). 

  9. H. Kawamata, H. Ochiai, N. Mantani, and K. Terasawa, Enhanced expression of inducible nitric oxide synthase by Juzen-taiho-to in LPS-activated RAW 264.7 cells, a murine macrophage celline, Am. J. Chin Med., 28(2), 217 (2000). 

  10. The newest immunology, ed. Y. T. Lee, Jipmoondang, 355, Seoul (1989). 

  11. B. G. Lee, S. H. Kim, O. P. Zee, H. Y. Lee, J. W. Han, and H. W. Lee, Suppression of inducible nitric oxide synthase expression in RAW 264.7 macrophages by two b-carboline alkaloids extracted from Melia azedarach, Eur. J. Pharmacol., 406, 301 (2000). 

  12. C. F. Nathan and J. B. Hibbs J, Role of nitric oxide synthesis in macrophage antimicrobial activity, Curr. Opinion. Immunol., 3(1), 65 (1991). 

  13. B. H. Lee, D. S. Baik, S. U. Yun, J. M. Shin, J. H. Kim, S. Y. Yun, B. H. Kim, S. B. Kim, J. E. Shin, and I. H. Song, Peripheral nitric oxide activity in patients with liver cirrhosis. Korean. J. Med., 73(3), 251 (2007). 

  14. M. M. Mu, D. Chakravortty, T. Sugiyama, N. Koide, K. Takahashi, L. Mori, T. Yoshida, and T. Yokochi, The inhibitory action of quercetin on lipopolysaccharide- induced nitric oxide production in RAW 264.7 macrophage cells, J. Endotoxin. Res., 7(6), 431 (2001). 

  15. K. Y. Stokes, D. Cooper, A. Tailor, and D. N. Granger, Hypercholesterolemia promotes inflammation and microvascular dysfunction: role of nitric oxide and superoxide, Free Radical. Biol. Med., 33(8) (2002). 

  16. J. H. Ryu, H. Ahn, J. Y. Kim, and Y. K. Kim, Inhibitory activity of plant extracts on nitric oxide synthesis in LPS-activated macrophages, Phytother. Res., 17(5), 485 (2003). 

  17. X. Jin, X. H. Zhang, and N. C. Zhao, Effects of petroleum ether extract of Peucedanum praeruptorum Dunn on rabbit trachea smooth muscles, Zhongguo Zhong Yao Za Zhi, 19(6), 365 (1994). 

  18. Y. C. Huang, J. H. Guh, Z. J. Cheng, Y. L. Chang, T. L. Hwang, C. H. Liao, C. C. Tzeng, and C. M. Teng, Inhibition of the expression of inducible nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 in macrophages by 7HQ derivatives : Involvement of IkappaB- alpha stabilization, Eur. J. Pharmacol., 418(1-2), 133 (2001). 

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  20. Y. S. Jeong, H. K. Jung, K. S. Youn, M. O. Kim, and J. H. Hong, Physiologocal activities of the hot water extract from Eriobotrya japonica Lindl, J. Korean Soc. Food Sci. Nitr., 38(8), 977-982 (2009). 

  21. S. J. Kim, J. O. Park and S. N. Park, Antioxidative effect and component analysis of Eriobotrya japonica leaf extracts, J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 38(1), 57 (2012). 

  22. X. G. He, L. Z. Lin, L. Z. Lian, and M. Lindenmaier, Liquid chromatography- electrospray mass spectrometric analysis of curcuminoids and sesquiterpenoids in turmeric (Curcuma longa), 818(1), 127 (1998). 

  23. M. Seiberg, Keratinocyte-melanocyte interaction during melanosome transfer. Pigment Cell Res., 14(4), 236 (2001). 

  24. W. Tang and G. Eisenbrand, Chinese drugs of plant origin, chemistry, pharmacology, and use in traditional and modern medicine, 401, Springer, Berlin (1992). 

  25. S. B. Han, S. S. Kwon, B. J. Kong, K. J. Kim, and S. N. Park, Antioxidative effect and tyrosinase inhibitory activity of the unripened fruit extract of Rubus coreanus Miquel, J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 39(4), 295 (2013). 

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