반응 표면 분석법을 사용한 Bacillus subtilis NC1 유래 cellulase 생산 배지 최적화 Optimization of a Medium for the Production of Cellulase by Bacillus subtilis NC1 Using Response Surface Methodology원문보기
이전에 토양으로부터 cellulase와 xylanase 생산 균주로 단리하였다. 단리한 균주 유래의 16S rRNA 유전자 및 API 50 kit를 분석한 결과 Bacillus subtilis와 약 99.5%의 높은 상동성을 보였기에 본 균주를 B. subtilis NC1으로 명명하였다. Bacillus subtilis NC1 균주 유래 cellulase와 xylanase 유전자를 cloning 하여 유전자 배열을 규명하였다. 또한, 두 효소의 아미노산 배열을 이용하여 상동성을 검토한 결과 cellulase는 Glycoside hydrolase family (GH) 5 그리고 xylanase는 GH30에 속하는 효소임을 밝혔다. 본 연구에서는 B. subtilis NC1 의 cellulase 생산을 위한 배지성분의 최적 농도를 결정하기 위해 중심합성계획법(central composite design, CCD)을 기반으로 한 반응표면 분석법(Response Surface Methodology) 을 수행하였다. 세가지 독립변수로는 tryptone, yeast extract, 그리고 NaCl이 조사되었다. 반응값에 대하여 분산분석을 실시한 결과 결정계수(R2)는 0.96이었으며 전체 모델에 대한 유의확률이 0.0001로 매우 높은 유의성을 지님을 확인하였다. 반응표면분석법을 통하여 얻어진 B. subtilis NC1의 cellulase 활성을 위한 최적화 배지의 각 변수 농도는 tryptone 2.5%, yeast extract 0.5%, 그리고 NaCl 1.0%로 예측 되었다. 최적화 배지에서의 B. subtilis NC1의 cellulase 활성을 검증한 최적화를 실시하기 이전인 대조구의 cellulase 활성 0.5U/ml와 비교하면 24% 활성이 향상된 0.62U/ml의 높은 활성을 보였다.
이전에 토양으로부터 cellulase와 xylanase 생산 균주로 단리하였다. 단리한 균주 유래의 16S rRNA 유전자 및 API 50 kit를 분석한 결과 Bacillus subtilis와 약 99.5%의 높은 상동성을 보였기에 본 균주를 B. subtilis NC1으로 명명하였다. Bacillus subtilis NC1 균주 유래 cellulase와 xylanase 유전자를 cloning 하여 유전자 배열을 규명하였다. 또한, 두 효소의 아미노산 배열을 이용하여 상동성을 검토한 결과 cellulase는 Glycoside hydrolase family (GH) 5 그리고 xylanase는 GH30에 속하는 효소임을 밝혔다. 본 연구에서는 B. subtilis NC1 의 cellulase 생산을 위한 배지성분의 최적 농도를 결정하기 위해 중심합성계획법(central composite design, CCD)을 기반으로 한 반응표면 분석법(Response Surface Methodology) 을 수행하였다. 세가지 독립변수로는 tryptone, yeast extract, 그리고 NaCl이 조사되었다. 반응값에 대하여 분산분석을 실시한 결과 결정계수(R2)는 0.96이었으며 전체 모델에 대한 유의확률이 0.0001로 매우 높은 유의성을 지님을 확인하였다. 반응표면분석법을 통하여 얻어진 B. subtilis NC1의 cellulase 활성을 위한 최적화 배지의 각 변수 농도는 tryptone 2.5%, yeast extract 0.5%, 그리고 NaCl 1.0%로 예측 되었다. 최적화 배지에서의 B. subtilis NC1의 cellulase 활성을 검증한 최적화를 실시하기 이전인 대조구의 cellulase 활성 0.5U/ml와 비교하면 24% 활성이 향상된 0.62U/ml의 높은 활성을 보였다.
Previously, cellulase and xylanase producing microorganism, Bacillus subtilis NC1, was isolated from soil. Based on the 16S rRNA gene sequence and API 50 CHL test the strain was identified as Bacillus subtilis, and named as B. subtilis NC1. We cloned and sequenced the genes for cellulase and xylanas...
Previously, cellulase and xylanase producing microorganism, Bacillus subtilis NC1, was isolated from soil. Based on the 16S rRNA gene sequence and API 50 CHL test the strain was identified as Bacillus subtilis, and named as B. subtilis NC1. We cloned and sequenced the genes for cellulase and xylanase. Plus, the deduced amino acid sequences from the genes of cellulase and xylanase were determined and were also identified as glycosyl hydrolases family (GH) 5 and 30, respectively. In this study to optimize the medium parameters for cellulase production by B. subtilis NC1 the RSM (response surface methodology) based on CCD (central composite design) model was performed. Three factors, tryptone, yeast extract, and NaCl, for N or C source were investigated. The cellulase activity was measured with a carboxylmethyl cellulose (CMC) plate and the 3,5-dinitrosalicylic acid (DNS) methods. The coefficient of determination (R2) for the model was 0.960, and the probability value (p=0.0001) of the regression model was highly significant. Based on the RSM, the optimum conditions for cellulase production by B. subtilis NC1 were predicted to be tryptone of 2.5%, yeast extract of 0.5%, and NaCl of 1.0%. Through the model verification, cellulase activity of Bacillus subtilis NC1 increased from 0.5 to 0.62 U/ml (24%) compared to the original medium.
Previously, cellulase and xylanase producing microorganism, Bacillus subtilis NC1, was isolated from soil. Based on the 16S rRNA gene sequence and API 50 CHL test the strain was identified as Bacillus subtilis, and named as B. subtilis NC1. We cloned and sequenced the genes for cellulase and xylanase. Plus, the deduced amino acid sequences from the genes of cellulase and xylanase were determined and were also identified as glycosyl hydrolases family (GH) 5 and 30, respectively. In this study to optimize the medium parameters for cellulase production by B. subtilis NC1 the RSM (response surface methodology) based on CCD (central composite design) model was performed. Three factors, tryptone, yeast extract, and NaCl, for N or C source were investigated. The cellulase activity was measured with a carboxylmethyl cellulose (CMC) plate and the 3,5-dinitrosalicylic acid (DNS) methods. The coefficient of determination (R2) for the model was 0.960, and the probability value (p=0.0001) of the regression model was highly significant. Based on the RSM, the optimum conditions for cellulase production by B. subtilis NC1 were predicted to be tryptone of 2.5%, yeast extract of 0.5%, and NaCl of 1.0%. Through the model verification, cellulase activity of Bacillus subtilis NC1 increased from 0.5 to 0.62 U/ml (24%) compared to the original medium.
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문제 정의
본 연구자는 이전에 토양으로부터 CM-cellulose와 Beech- wood xylan에 대하여 각각 높은 효소 활성을 보이는 cellulase 와 xylanase 생산 균주 B. subtilis NC1에 대해 보고한 바 있으며[10], 본 연구에서는 RSM을 이용하여 B. subtilis NC1유래의 cellulase 효소 대량생산을 위한 발효 최적 조건을 확립하였다.
제안 방법
B. subtilis NC1로부터 cellulase 활성 증가를 위한 배지 성분의 농도 최적화를 위하여 반응표면분석법을 실시하였다. 독립변수는 선행연구를 기반으로 하여 tryptone (X1), yeast extract (X2), 그리고NaCl (X3)를 3가지 요인 변수로 설정하고 5개 수준의 실험계획을 수립하여 cellulase 활성를 측정하였다.
Cellulase 효소 활성의 정성 분석은 carboxylmethyl cellu- lose (CMC, Sigma, St. Louis, MO, U.S.A)을 기질로 선택하여 1% CMC를 함유한 CMC agar 배지를 제조하여 측정하였다. 효소 분비능 측정 배지에 각 균주의 배양 상등액을 0.
subtilis NC1로부터 cellulase 활성 증가를 위한 배지 성분의 농도 최적화를 위하여 반응표면분석법을 실시하였다. 독립변수는 선행연구를 기반으로 하여 tryptone (X1), yeast extract (X2), 그리고NaCl (X3)를 3가지 요인 변수로 설정하고 5개 수준의 실험계획을 수립하여 cellulase 활성를 측정하였다. 각각의독립변수에 대한 종속변수(Y, celllulase 활성)의 반응값은 Table 1과 같으며, 반응값에 대한 모델식의 예측은 Design ex- pert 프로그램을 사용하여 분석하였고, cellulase 활성에 대한회귀방정석은 아래와 같다.
선발 단리된 균주는 16S rRNA 유전자 분석(Gene Bank Accession number, AB701293)과 API 50 kit를 이용하여 탄소원으로 당이나 당 유도체의 이용성을 분석을 통해 Bacillus subtilis NC1 로 명명하였다[10]. 또한, 본 균주 유래의 cellulase와 xylanase의 활성에 대한 조건 및 기질특이성을 검토하였으며 두 효소 유전자 cellulase와 xylanase 를 cloning 한 후 효소 유전자의 염기배열 및 단백질의 아미노산 서열을 규명하였다.
또한, 환원당 측정법을 이용하여 효소 활성을 측정하였다. 1% CMC를 50 mM acetic acid 완충용액(pH 5.
A)을 이용하여 다음과 같이 측정하였다[9]. 반응 시간 종료 후 효소 반응을정지시키기 위하여 900 μl 의 DNS 시약을 첨가 후 100℃의열탕 속에서 10분간 처리하였다. 그리고, 처리가 끝난 시료를상온에서 20분간 방치 한 후 원심분리(10, 000 rpm, 10 min)에의해 상층을 회수한 후 540 nm에서 반응 상층액의 흡광도를측정하였다.
반응표면분석법을 통하여 얻어진 최적화 배지에서의 B. subtilis NC1의 cellulase 활성을 검증하기 위하여 예측된 최적 활성 배지에 B. subtilis NC1을 1% 접종하여 48시간 배양한 후 cellulase 활성을 측정하였다. 대조구로는 기본 LB 액체 배지를 사용하였다.
, Minneapolis, USA) program 을 사용하였다. 배지 조성 성분의 최적 농도 결정을 위하여Table 1과 같이 독립변수(Xi)로는 tryptone (X1), yeast extract (X2), 그리고 NaCl (X3)으로 예비 실험을 통해 중심점을 설정하였고, 이를 바탕으로 범위를 설정하여 각각을 -2, -1, 0, 1, 2의 5개 수준으로 부호화하였다. 독립변수에 영향을 받는 종속변수(Y)로는 cellulase 활성을 3회 반복 측정하여 평균값을 회귀분석에 사용하였으며, 중심점 3회를 포함한 18개의 실험 구를 실시하였다.
본 연구자는 이전에 토양으로부터 cellulase와 xylanase를생산하는 균주를 단리하였다. 선발 단리된 균주는 16S rRNA 유전자 분석(Gene Bank Accession number, AB701293)과 API 50 kit를 이용하여 탄소원으로 당이나 당 유도체의 이용성을 분석을 통해 Bacillus subtilis NC1 로 명명하였다[10].
균주를 단리하였다. 선발 단리된 균주는 16S rRNA 유전자 분석(Gene Bank Accession number, AB701293)과 API 50 kit를 이용하여 탄소원으로 당이나 당 유도체의 이용성을 분석을 통해 Bacillus subtilis NC1 로 명명하였다[10]. 또한, 본 균주 유래의 cellulase와 xylanase의 활성에 대한 조건 및 기질특이성을 검토하였으며 두 효소 유전자 cellulase와 xylanase 를 cloning 한 후 효소 유전자의 염기배열 및 단백질의 아미노산 서열을 규명하였다.
A)을 기질로 선택하여 1% CMC를 함유한 CMC agar 배지를 제조하여 측정하였다. 효소 분비능 측정 배지에 각 균주의 배양 상등액을 0.45 μm membrane filter (Sartorius, Frankfurt, Germany)로 제균 한 후 100 μl씩을 직경 8 mm의 준비한 well에 분주하여 25℃에서 24시간 동안 반응시킨 후 cellulase 분비능을 투명환의 직경으로 조사하였다[14].
대상 데이터
측정하였다. 1% CMC를 50 mM acetic acid 완충용액(pH 5.0)에서 용해한용액을 cellulase 효소 활성 측정을 위한 기질로 사용하였다. 효소와 기질의 반응은 효소액 200 μl에 기질 200 μl를 첨가하여 50℃에서 10분간 반응하였으며, 반응 후 효소 분해 활성으로인해 생성된 환원 말단은 Miller에 의해 소개된 3, 5-dinitrosali- cylic acid (DNS) 시약(Sigma, St.
Comparison of LB (basal) and optimal culture conditions after incubation for 48 hr. The experiments were carried out in triplicate (p<0.05).
The experiments were carried out in triplicate.
subtilis NC1을 1% 접종하여 48시간 배양한 후 cellulase 활성을 측정하였다. 대조구로는 기본 LB 액체 배지를 사용하였다. 최적화를 통한 배지에서 배양한 결과 B.
본 실험에 사용된 균주는 이전에 전국의 다양한 장소에서채취한 토양 시료로부터 trypan blue [0.02% (w/v), Sigma, St. Louis, MO, U.S.A] 염색 시약과 기질로서 1%의 CM-cellu- lose와 Beechwood xylan을 첨가한 고체 배지 Luria-Burtani (LB) (Difco, Sparks, MD, U.S.A.)를 이용하여 분리한 cellulose 및 xylanase 생성 균주 Bacillus subtilis NC1를 사용하였다[10]. LB배지에 균주를 접종하여 37℃에서 200 rpm으로 48시간 동안 진탕 배양 후 원심분리(8, 000 rpm, 15 min)에 의해 회수한배양 상층액을 cellulase 효소 활성을 측정하기 위한 효소액으로 사용하였다.
데이터처리
독립변수는 선행연구를 기반으로 하여 tryptone (X1), yeast extract (X2), 그리고NaCl (X3)를 3가지 요인 변수로 설정하고 5개 수준의 실험계획을 수립하여 cellulase 활성를 측정하였다. 각각의독립변수에 대한 종속변수(Y, celllulase 활성)의 반응값은 Table 1과 같으며, 반응값에 대한 모델식의 예측은 Design ex- pert 프로그램을 사용하여 분석하였고, cellulase 활성에 대한회귀방정석은 아래와 같다.
배지 조성 성분의 최적 농도 결정을 위하여Table 1과 같이 독립변수(Xi)로는 tryptone (X1), yeast extract (X2), 그리고 NaCl (X3)으로 예비 실험을 통해 중심점을 설정하였고, 이를 바탕으로 범위를 설정하여 각각을 -2, -1, 0, 1, 2의 5개 수준으로 부호화하였다. 독립변수에 영향을 받는 종속변수(Y)로는 cellulase 활성을 3회 반복 측정하여 평균값을 회귀분석에 사용하였으며, 중심점 3회를 포함한 18개의 실험 구를 실시하였다. 회귀분석에 의한 모델식은 아래와 같다.
배지성분의 최적 농도를 결정하기 위하여 배지 성분 각각의농도 변화가 cellulase 활성에 미치는 영향을 발효공정 및 생산공정의 최적화를 실시하는데 가장 영향력이 있는 반응표면분석법(response surface methodology, RSM)을 이용하여 통계학적 최적화를 수행하였다. 실험계획은 cellulase 활성의 증진을 위하여 배지성분의 최적 농도를 결정하기 위해 중심합성계획법(central composite design, CCD)을 적용하였으며, 실험의 계획, 데이터 분석 및 통계 분석은 Design Expert 9.
여기에서 β0은 절편, βX는 회계계수이고, 회귀분석에 의한모델식의 예측은 Design Expert 9.0 (Version 9.0.3.1, Stat-Ease Inc., Minneapolis, USA)을 이용하여 분석하였고, 회귀분석 결과를 바탕으로 임계점 분석 및 cellulase 활성을 위한 각 배지 성분의 최적 농도를 결정하였으며, ANOVA 분석을 통해 실험모델의 유의성을 검토하였다.
이론/모형
최적화를 수행하였다. 실험계획은 cellulase 활성의 증진을 위하여 배지성분의 최적 농도를 결정하기 위해 중심합성계획법(central composite design, CCD)을 적용하였으며, 실험의 계획, 데이터 분석 및 통계 분석은 Design Expert 9.0 (Version 9.0.3.1, Stat-Ease Inc., Minneapolis, USA) program 을 사용하였다. 배지 조성 성분의 최적 농도 결정을 위하여Table 1과 같이 독립변수(Xi)로는 tryptone (X1), yeast extract (X2), 그리고 NaCl (X3)으로 예비 실험을 통해 중심점을 설정하였고, 이를 바탕으로 범위를 설정하여 각각을 -2, -1, 0, 1, 2의 5개 수준으로 부호화하였다.
성능/효과
05보다 낮아 가정된 실험 모형이 자료에 적합함을 확인하였다. 또한 변동계수(CV, Coefficient of variation)는 2.39로 매우 낮은 수치를 나타내어 cellulase 활성에 변수들의 독립적인 영향뿐만 아니라 변수들 간의 상호작용이 매우 높게 작용하고 있음을 확인하였다(Table 2).
4). 또한, 1% CMC 기질을 이용한 환원당 활성측정법을 통해 비교해 보았을 때 대조구 (0.5U/ml) 대비 최적화된 배지에서의 효소활성은 0.62 U/ml 로 약 24% 활성이 향상되었다(Table 3).
388513 mm와 거의 유사한 결과를 나타내었으며 실험계획법을 통한 실험모델의 예측값이 신뢰할 수 있음을 확인하였다. 또한, 최적화를 실시하기 이전인 대조구의 cellulase 활성 15.05±0.214 mm와 비교하면 20.43% 활성이 향상되었다(Fig. 4). 또한, 1% CMC 기질을 이용한 환원당 활성측정법을 통해 비교해 보았을 때 대조구 (0.
반응값에 대하여 분산분석을 실시한 결과 결정계수(R-square)는 0.96으로 1에 가깝다고 할 수 있으므로 매우 높은유의성을 지님을 확인하였으며, 전체 모델에 대한 유의확률이 0.0001로 0.05보다 낮아 가정된 실험 모형이 자료에 적합함을 확인하였다. 또한 변동계수(CV, Coefficient of variation)는 2.
대조구로는 기본 LB 액체 배지를 사용하였다. 최적화를 통한 배지에서 배양한 결과 B. sub- tilis NC1의 cellulase 활성은 18.2±0.389 mm로 중심합성계획법을 통하여 예측된 18.1246±0.388513 mm와 거의 유사한 결과를 나타내었으며 실험계획법을 통한 실험모델의 예측값이 신뢰할 수 있음을 확인하였다. 또한, 최적화를 실시하기 이전인 대조구의 cellulase 활성 15.
3은각 변수가 미치는 영향을 쉽게 확인하기 위하여 3개의 변수중 하나의 독립변수를 최적점에 고정한 후 나머지 2개의 변수를 이용하여 3차원의 형태로 교호작용을 확인한 결과이다. 최종적으로 중심합성계획법을 통하여 B. subtilis NC1의 cellu- lase 활성에 가장 영향을 주는 독립변수의 농도를 예측할 수있었으며, 실험 범위 내에서 tryptone는 첨가량이 증가할수록활성이 증가하는 경향을 보인 반면, yeast extract와 NaCl의경우 첨가량이 증가에 따라 감소하는 경향을 보였다. 중심합성 계획법을 통하여 최대 cellulase 활성은 18.
후속연구
21)의 협동적인 상승작용에 의하여 구성 단당인 d-glucose로 분해가 이루어진다[1, 3, 15]. 이러한 관점에서, cellulose의 활용을 위해서는 이들 중합체를 분해하는 미생물 유래 효소 자원의 발굴은 무엇보다도 중요한 연구 중의 하나라고 할 수 있으며, 향후, 효소 자원의 산업적 활용을 위하여 효소 대량 생산 및 효소의 개량을 위한 효소 유전자의 확보 또한 효소 자원의 발굴과 함께 반드시 병행 되어야 할 중요한 연구 분야라고 할 수 있다.
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