본 연구는 막걸리로부터 ${\gamma}$-amino butyric acid (GABA) 생성 유산균을 분리 및 동정하고 최적 GABA 생산조건을 확립하는데 그 목적이 있다. 막걸리로부터 64균주의 유산균은 MRS 배지에서 성장된 집락의 색과 모양의 특성에 따라 분리하였다. 분리균주의 GABA 생산은 1% MSG가 첨가된 MRS 액체배지에서 배양하여 TLC와 HPLC 방법에 의해 평가되었다. B-134 균주는 GABA생성을 위한 우수균주로 선발하였다. 16S rRNA 유전자 및 glutamate decarboxylase B (gadB) 유전자의 염기서열분석을 통하여, B-134 균주는 Lactobacillus plantarum subsp. plantarum B-134 균주로 명명하였다. GABA 생성을 위한 온도, pH, NaCl 및 MSG 농도를 달리하여 최적배양조건을 조사하였다. 그 결과 B-134 균주의 최적배양 조건은 온도 $37^{\circ}C$, pH 5.7, NaCl 농도 0% (w/v), 그리고 MSG 농도 3% (w/v)로 결정되었으며 본 조건에서 48시간 배양시 25 mM의 GABA를 생산하였다. 이러한 결과로부터 B-134 균주는 GABA함유 건강기능식품개발을 위한 유용한 균주로 판단된다.
본 연구는 막걸리로부터 ${\gamma}$-amino butyric acid (GABA) 생성 유산균을 분리 및 동정하고 최적 GABA 생산조건을 확립하는데 그 목적이 있다. 막걸리로부터 64균주의 유산균은 MRS 배지에서 성장된 집락의 색과 모양의 특성에 따라 분리하였다. 분리균주의 GABA 생산은 1% MSG가 첨가된 MRS 액체배지에서 배양하여 TLC와 HPLC 방법에 의해 평가되었다. B-134 균주는 GABA생성을 위한 우수균주로 선발하였다. 16S rRNA 유전자 및 glutamate decarboxylase B (gadB) 유전자의 염기서열분석을 통하여, B-134 균주는 Lactobacillus plantarum subsp. plantarum B-134 균주로 명명하였다. GABA 생성을 위한 온도, pH, NaCl 및 MSG 농도를 달리하여 최적배양조건을 조사하였다. 그 결과 B-134 균주의 최적배양 조건은 온도 $37^{\circ}C$, pH 5.7, NaCl 농도 0% (w/v), 그리고 MSG 농도 3% (w/v)로 결정되었으며 본 조건에서 48시간 배양시 25 mM의 GABA를 생산하였다. 이러한 결과로부터 B-134 균주는 GABA함유 건강기능식품개발을 위한 유용한 균주로 판단된다.
This study is to isolate and identify ${\gamma}$-amino butyric acid (GABA) producing lactic acid bacteria (LAB) from Makgeolii, traditional Korean rice wine and then establish the optimal culture conditions for GABA production. Sixty four LAB from Makgeolli were isolated according to the ...
This study is to isolate and identify ${\gamma}$-amino butyric acid (GABA) producing lactic acid bacteria (LAB) from Makgeolii, traditional Korean rice wine and then establish the optimal culture conditions for GABA production. Sixty four LAB from Makgeolli were isolated according to the characteristics of the shape and color of the colony grown on MRS agar plate. The GABA production of the isolated strain cultured in MRS broth contained 1% MSG (mono-sodium glutamate) were determined and evaluated by TLC and HPLC analysis. Strain B-134 was selected for highest GABA production. From the analysis of 16S rRNA and glutamate decarboxylase B (gadB) gene sequences, strain B-134 was tentatively identified as a Lactobacillus plantarum subsp. plantarum B-134. Effects of culture parameters, including glutamic acid level, culture temperature, NaCl level, and pH on GABA production were investigated for culture optimization. The optimum culture condition for GABA production by B-134 were culture temperature of $37^{\circ}C$, pH of 5.7, NaCl content of 0% (w/v) and MSG content of 3% (w/v), which produced 25 mM of GABA during cultivation time of 48 hr. From these results, strain B-134 is expected to be utilized as useful microorganisms for GABA-enriched health beneficial food.
This study is to isolate and identify ${\gamma}$-amino butyric acid (GABA) producing lactic acid bacteria (LAB) from Makgeolii, traditional Korean rice wine and then establish the optimal culture conditions for GABA production. Sixty four LAB from Makgeolli were isolated according to the characteristics of the shape and color of the colony grown on MRS agar plate. The GABA production of the isolated strain cultured in MRS broth contained 1% MSG (mono-sodium glutamate) were determined and evaluated by TLC and HPLC analysis. Strain B-134 was selected for highest GABA production. From the analysis of 16S rRNA and glutamate decarboxylase B (gadB) gene sequences, strain B-134 was tentatively identified as a Lactobacillus plantarum subsp. plantarum B-134. Effects of culture parameters, including glutamic acid level, culture temperature, NaCl level, and pH on GABA production were investigated for culture optimization. The optimum culture condition for GABA production by B-134 were culture temperature of $37^{\circ}C$, pH of 5.7, NaCl content of 0% (w/v) and MSG content of 3% (w/v), which produced 25 mM of GABA during cultivation time of 48 hr. From these results, strain B-134 is expected to be utilized as useful microorganisms for GABA-enriched health beneficial food.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
본 연구에서는 우리나라 전통주인 막걸리로부터 유산균을 분리하여 GABA 생성능력을 조사하였으며 선발된 GABA생성 우수균주의 동정 및 GABA 생산을 위한 최적배양조건을 연구하여 그 결과를 보고하고 자 한다.
제안 방법
B-134균주의 최적 GABA 생산을 위한 배양조건인 pH 5.7, 0% NaCl 및 3% (w/v) MSG를 첨가한 MRS 배지에 접종하여 37℃에서 48시간까지 진탕배양하며 시간에 따라 흡광도, pH, MSG 및 GABA 농도를 측정하여 Fig. 6에 도식화하였다. B-134 균주의 생장은 24시간째에 최대 흡광도를 나타내었으며 pH는 초기 pH 5.
GABA 생산균주는 MRS agar plate에 도말하여 24시간 배양한 후 형태학적 특성을 비교하였으며 Analytical Profile Index (API) 50 CHL kit와 16S rRNA sequencing을 통하여 분류학적 및 유전학적 특성을 동정하였다.
GABA 생산을 위한 최적 MSG 농도의 조사는 0, 1, 2, 3, 5, 10% (w/v) MSG 농도를 달리하여 MRS 액체배지를 제조하였으며 전배양액을 접종한 후 30℃로 조절된 진탕배양기에서 배양하였다.
GABA 생산을 위한 최적 NaCl 농도의 조사는 0, 1, 2, 3% (w/v) NaCl 농도를 달리하여 1% (w/v) MSG가 첨가된 MRS 액체배지를 제조하여 전배양액을 접종한 후 30℃조절된 진탕배양기에서 배양하였다.
GABA 생산을 위한 최적온도의 조사는 1% (w/v) MSG가 첨가된 MRS 액체배지에 전배양액을 접종한 후 25, 30 및 37℃로 조절된 진탕배양기에서 배양하였다.
o-phthaldialdehyde (OPA) 용액(pH 9.3)은 5.0 ml의 methanolic OPA (2.56 g OPA, 50 ml methanol), 20 ml borate buffer (pH 9.9; 0.2 M boric acid: 0.2 M sodium hydroxide=50:50 (v/v))와 50 ul 2-mercaptoethanol을 섞어서 제조하였다.
각 배양액은 원심분리(4℃, 15,000 rpm, 10분)를 통하여 상등액을 회수한 후 thin layer chromatography (TLC) 및 HPLC 분석방법에 의하여 GABA 생산을 확인하였다.
각 시료는 멸균생리식염수(0.85% NaCl)를 이용하여 연속희석한 후 bro-mocresol purple이 첨가된 BCP (glucose 1.0 g, L-cystein 0.1 g, peptone 5.0 g, tween 80 1.0 g, yeast extract 2.5 g, bromocresol purple 0.1%, agar 15.0 g, distilled water 1 l) 한천배지에 도말하여 30℃에서 48시간 배양하였다.
각 실험에 사용한 전배양액은 A660에서 OD 1.0으로 조정한 후 10-1로 희석한 것을 5% (v/v) 접종하였다.
글루탐산과 GABA 함량은 HPLC (Young-Lin Co. Korea)를 통해 측정하였다[23].
배양기간 동안 배양액 일정량을 회수하여 흡광광도(A660), pH, MSG 및 GABA 함량을 측정하였다.
분리한 B-134 균주로부터 GABA 생산을 위한 최적성장조건을 확립하기 위한 변수는 온도, pH, NaCl 및 MSG 농도를 선정하여 조사하였으며 그 결과는 Fig. 3, 4, 5에 정리하였다. B-134 균주의 GABA 생산을 위한 최적온도는 37℃로 결정되었으며 GABA 함량은 24시간째에 8 mM로 나타났다(Fig.
생화학적 특성은 API 50 CHL kit에서 제시된 실험지침서에 의해 분석하였다.
시중에서 판매되고 있는 막걸리로부터 유산균은 BCP배지를 이용하여 64균주를 분리하였다. 분리균을 대상으로 1% MSG가 포함된 MRS 액체배지에서 48시간 배양한 후 TLC 방법에 의해 분석한 결과 64균주 중 47균주에서 GABA생산을 확인하였으며 이중 GABA생산능력이 우수한 3균주를 후보균주로 선발하였다(Fig.
유산균의 분리는 성장된 균체주위에 purple 색이 없는 균체를 형태학적 특성에 따라 무작위로 선발하여 Lactobacilli MRS 배지(MRS, Difco, USA)를 이용하여 순수분리 하였다.
전개용매는 n-butyl alcohol: acetic acid: distilled water (4:1:1, v/v/v)를 혼합하였고, 발색시약으로 0.2% ninhydrin을 사용하여 GABA spot을 확인하였다.
최적 배양 조건에 따른 균주의 성장과 GABA 생산 조사를 위해 0% (w/v) NaCl, 3% (w/v) MSG, pH 5.7로 조절하여 MRS 액체배지를 제조하였으며 전배양을 접종한 후 37℃에서 진탕배양하였다.
대상 데이터
막걸리유래 유산균의 분리를 위한 시료는 시중에서 판매되고 있는 12종의 막걸리를 구입하여 사용하였다. 각 시료는 멸균생리식염수(0.
이동상으로는 용매 A는 0.05 M sodium acetate (pH 7.2)를, 용매 B는 0.1 M sodium acetate, acetonitrile (HPLC grade) 그리고 methanol (HPLC grade)이 각각 46:44:10(v/v/v)으로 섞은 것(pH 7.2)을 사용하였다.
이론/모형
16S rRNA의 염기서열결정은 Lee 등[24]의 방법에 따라 염기서열을 결정한 후 계통분석을 수행하였다.
16S rRNA의 염기서열결정은 Lee 등[24]의 방법에 따라 염기서열을 결정한 후 계통분석을 수행하였다. 또한 GAD 염기서열분석은 Shin 등[43]에 의해 기술된 방법에 의하여 염기서열을 결정한 후 NCBI protein blast search를 통하여 분석하였다.
배양액의 글루탐산(glutamic acid) 및 GABA의 정성분석은 TLC 분석법에 의해 확인하였다[53].
plantarum subsp. plantarum ATCC 14917과 100% 일치하는 것을 확인하였다(자료미제시). 이러한 결과로부터 B-134균주는 L.
가공된 해양소재를 배지성분으로 사용할 경우 염분이 GABA 생산에 어떠한 영향을 주는지 알아보기 위해, NaCl 농도를 0~3% (w/v)로 달리하였을 때 B-134 균주는 2% NaCl 농도에서 최적성장을 보였으나 GABA 생산은 NaCl이 첨가되지 않은 0% NaCl 조건에서 8.3 mM로 최대값을 보였다(Fig. 5A).
5B에 도식화하였다. 결과에 따르면, B-134 균주는 5% MSG 농도까지 유의한 성장을 보였으나 그 이상의 농도에서는 성장이 감소되었다. 반면 GABA 생산은 3% MSG에서 15 mM 수준까지 증가하였다.
기존 보고에서 L. plantarum의 최적 GABA 생산 농도는 0.14~7.15 mM의 범위[9]를 나타낸 결과와 비교하여 B-134균주는 상대적으로 높은 수율을 나타내었다. 또한 김치로부터 분리된 L.
반면 GABA 생산은 3% MSG에서 15 mM 수준까지 증가하였다. 또한 3% MSG 이상으로 첨가할 경우 B-134 균주의 GABA 생산은 감소하였다. Tajabadi 등[46]은 L.
3).또한 최적 GABA 생산시 pH는 pH 6.8에서 24시간째에 pH 4.0으로 감소되었다. 기존 GABA 생산 유산균인 L.
시중에서 판매되고 있는 막걸리로부터 유산균은 BCP배지를 이용하여 64균주를 분리하였다. 분리균을 대상으로 1% MSG가 포함된 MRS 액체배지에서 48시간 배양한 후 TLC 방법에 의해 분석한 결과 64균주 중 47균주에서 GABA생산을 확인하였으며 이중 GABA생산능력이 우수한 3균주를 후보균주로 선발하였다(Fig. 1). 선발된 후보균주의 배양여액은 HPLC를 이용하여 GABA 함량을 분석한 결과 B-134 균주를 GABA생산 우수균주로 최종 선발하였다(Table 1).
1). 선발된 후보균주의 배양여액은 HPLC를 이용하여 GABA 함량을 분석한 결과 B-134 균주를 GABA생산 우수균주로 최종 선발하였다(Table 1). B-134 균주는 형태학적으로 그람양성의 간균이며 API 50 CHL에 의한 동정결과 L.
5A). 이러한 결과로부터 B-134 균주는 NaCl 농도가 증가함에 따라 GAD 효소의 활성이 억제되는 것으로 판단된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
γ-amino butyric acid는 무엇인가?
γ-amino butyric acid (GABA)는 자연계인 미생물, 식물 및 동물에 널리 분포하는 비단백질 아미노산이다[4, 6, 9, 11, 39, 49]. GABA는 glutamate decarboxylase (GAD)의 촉매작용에 의해 L-glutamic acid에서 GABA로 탈탄산화에 의해 생합성 된다[32, 35].
γ-amino butyric acid는 무엇에 의해 생합성되는가?
γ-amino butyric acid (GABA)는 자연계인 미생물, 식물 및 동물에 널리 분포하는 비단백질 아미노산이다[4, 6, 9, 11, 39, 49]. GABA는 glutamate decarboxylase (GAD)의 촉매작용에 의해 L-glutamic acid에서 GABA로 탈탄산화에 의해 생합성 된다[32, 35]. GAD (gadA와 gadB encoding gene)와 glutamate:GABA antiporter (gadC encoding gene)로 구성된 세포내재 GAD system은 GABA 생산을 담당한다.
GABA를 생산하는 미생물들 중 흥미롭고 특이한 것은 무엇인가?
GABA를 생산하는 미생물들 중 흥미롭고 특이한 것은 고농도의 GABA를 생산하는 대부분이 유산균이라는 사실이다. 이러한 유산균의 분리원은 주로 발효식품들인데 국내의 경우 김치[26, 34, 40], 젓갈[16], 막걸리[21] 등으로부터 국외의 경우 요구르트와 치즈[29, 33, 36, 44], sourdough [38], paocai [25], 발효스시[18] 등으로부터 분리되었다.
참고문헌 (54)
Bjork, J. M., Moeller, F. G., Kramer, G. L., Kram, M., Suris, A., Rush, A. J. and Petty, F. 2001. Plasma GABA levels correlate with aggressiveness in relatives of patients with unipolar depressive disorder. Psychiat. Res. 101, 131-136.
Bringel, F., Castioni, A., Olukoya, D. K., Felis, G. E., Torriani, S. and Dellaglio, F. 2005. Lactobacillus plantarum subsp. argentoratensis subsp. nov., isolated from vegetable matrices. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 55, 1629-1634.
Castanie-Cornet, M. P. and Foster, J. W. 2001. Escherichia coli acid resistance: cAMP receptor protein and a 20 bp cis-acting sequence control pH and stationary phase expression of the gadA and gadBC glutamate decarboxylase genes. Microbiology 147, 709-715.
Choi, J. W., Oh, S. M., Lee, K. S. and Lee, W. H. 1993. Fuzzy control of a fed-batch fermentation with substrate inhibition kinetics. J. Fuzzy Log. Intell. Syst. 3, 3-18.
Choi, S. I., Lee, J. W., Park, S. M., Lee, M. Y., Ji, G. E., Park, M. S. and Heo, T. R. 2006. Improvement of ${\gamma}$ -aminobutyric acid (GABA) production using cell entrapment of Lactobacillus brevis GABA 057. J. Microbiol. Biotechnol. 16, 562-568.
Chung, H. J., Jang, S. H., Cho, H. Y. and Lim, S. T. 2009. Effects of steeping and anaerobic treatment on GABA ( ${\gamma}$ - amino butyric acid) content in germination waxy hull-less barely. LWT-Food Sci. Technol. 42, 1712-1716.
Coda, R., Rizzello, C. G. and Gobbetti, M. 2010. Use of sourdough fermentation and pseudo-cereals and leguminous flours for the making of a functional bread enriched of ${\gamma}$ - aminobutyric acid (GABA). Int. J. Food Microbiol. 137, 236-245.
Di Cagno, R., Mazzacane, F., Rizzello, C. G., Angelis, M. D. E., Giuliani, G., Meloni, M., Servi, B. D. E. and Marco, G. 2010. Synthesis of ${\gamma}$ -aminobutyric acid (GABA) by Lactobacillus plantarum DSM19463: functional grape must beverage and dermatological applications. Appl. Microbiol. Biotechnol. 86, 731-741.
Dhakal, R., Bajpai, V. K. and Baek, K. H. 2012. Production of GABA ( ${\gamma}$ -aminobutyric acid) by microorganisms: A review. Braz. J. Microbiol. 43, 1230-1241.
Gerhardt, P., Murray, R. G. E., Willis, A. and Krieg, N. R. 1994. Methods for General and Molecular Bacteriology, pp. 138-142, 4th ed., In: Breznak, J. A. and Costilow, R. N. (eds.), Physiocochemical factors in growth. American Society for Microbiology, Washington, D.C. USA.
Ghoneum, M. 1999. NK immunrestoration of cancer paient by MGN-3, a modified arabinoxylan rice bran. IJAAM 1, 1-10.
Han, B. Z., Rombouts, F. M. and Robert Nout, M. J. 2001. A chinese fermented soybean food. Int. J. Food Microbiol. 65, 1-10.
Hayakawa, K., Kimura, M., Kasaha, K., Matsumoto, K., Sansawa, H. and Yamori, Y. 2004. Effect of a ${\gamma}$ -aminobutyric acid-enriched dairy product on the blood pressure of spontaneously hypertensive and normotensive Wistar-Kyoto rats. Bri. J. Nutr. 92, 411-417.
Iimure, T., Kihara, M., Hirota, N., Zhou, T., Hayashi, K. and Ito, K. 2009. A method for production of c-amino butyric acid (GABA) using barley bran supplemented with glutamate. Food Res. Int. 42, 319-323.
Inoue, K., Shirai, T., Ochiai, H., Kasao, M., Hayakawa, K., Kimura, M. and Sansawa, H. 2003. Blood-pressure-lowering effect of a novel fermented milk containing ${\gamma}$ -aminobutyric acid (GABA) in mild hypertensives. Eur. J. Clin. Nutr. 57, 490-495.
Jeun, J. H., Kim, H. D., Lee, H. S. and Ryu, B. H. 2004. Isolation and identification of Lactobacillus sp. produced ${\gamma}$ - aminobutyric acid(GABA) from traditional salt fermentation Anchovy. Kor. J. Food Nutr. 17, 72-79.
Kim, J. Y., Lee, M. Y., Ji, G. E., Lee, Y. S. and Hwang, K. T. 2009. Production of ${\gamma}$ -aminobutyric acid in black raspberry juice during fermentation by Lactobacillus brevis GABA100. Int. J. Food Microbiol. 130, 12-16.
Komatsuzaki, N., Shima, J., Kawamotoa, S., Momosed, H. and Kimurab, T. 2005. Production of g-aminobutyric acid (GABA) by Lactobacillus paracasei isolated from traditional fermented foods. Food Microbiol. 22, 497-504.
Krogsgaard-Larsen, P. 1989. GABA receptors. pp. 349-383. In: Williams, M., Glenmon, R. A. and Timmermans, P. M. W. M. (eds.) Receptor phamacology and function. Marcel Dekker Inc, New York.
Lee, E. J. and Lee, S. P. 2015. Optimization of ${\gamma}$ -Aminobutyric Acid (GABA) production using immobilized Lactobacillus plantarum K154 in submerged culture of Ceriporia lacerate. Kor. J. Food Sci. Technol. 47, 438-445.
Lee, H. L., Kang, K. W., Seo, D. H., Jung, J. H., Jung, D. H., Kim, G. W., Park, S. Y., Shin, W. C., Shim, H. S. and Park, C. S. 2015. Diversity of lactic acid bacteria (LAB) in Makgeolli and their production of ${\gamma}$ -aminobutyric acid. Kor. J. Food Sci. Technol. 47, 204-210.
Lee, H. S., Kwon, S. Y., Lee, S. O. and Lee, S. P. 2016. Production of fermented Omija (Schizandra chinensis) beverage fortified with high content of gamma-amino butyric acid using Lactobacillus plantarum. Kor. J. Food Preserv. 23, 326-334.
Lee, S. J., Lee, H. S. and Lee, D. W. 2015. Production of ${\gamma}$ - aminobutyric acid using immobilized glutamate decarboxylase from Lactobacillus plantarum. Microbio. Biotechnol. Lett. 43, 300-305.
Lee, Y. R., Lim, J. M., Kim, K. Y., Mun, S. B., Kwak, I. and Sohn, J. H. 2012. Isolation and characteristics of fucoidan degrading bacterium from marine J. Life Sci. 22, 1724-1728.
Li, H., Gao, D., Cao, Y. and Xu, H. 2008. A high ${\gamma}$ -aminobutyric acid producing Lactobacillus brevis isolated from Chinese traditional paocai. Ann. Microbiol. 58, 649-653.
Lu, X., Xie, C. and Gu, Z. 2008. Isolation of ${\gamma}$ -aminobutyric acid producing bacteria and optimization of fermentative medium. Biochem. Eng. J. 41, 48-52.
Nomura, M., Kimoto, H., Someya, Y., Furukawa, S. and Suzuki, I. 1998. Production of gamma-aminobutyric acid by cheese starters during cheese ripening. J. Dairy Sci. 81, 1486-1491.
Park, J. E., Oh, S. H. and Cha, Y. S. 2015. Lactobacillus plantarum LG42 isolated from Gajami Sik-Hae inhibits adipogenesis in 3T3-L1 adipocyte. BioMed Res. Int. 2013, 1-7.
Park, K. B. and Oh, S. H. 2005. Production and characterization of GABA rice yogurt. Food Sci. Biotechnol. 14, 518-522.
Park, K. B. and Oh, S. H. 2006. Isolation and characterization of Lactobacillus buchneri strains with high gamma-aminobutyric acid producing capacity from naturally aged cheese. Food Sci. Biotechnol. 15, 86-90.
Park, K. B. and Oh, S. H. 2007. Production of yogurt with enhanced levels of gamma-aminobutyric acid and valuable nutrients using lactic acid bacteria and germinated soybean extract. Biores. Technol. 98, 1675-1679.
Park, K. B. and Oh, S. H. 2007. Cloning, sequencing and expression of a novel glutamate decarboxylase gene from a newly isolated lactic acid bacterium, Lactobacillus brevis OPK-3. Biores. Technol. 98, 312-319.
Park, K. B. and Oh, S. H. 2007. Production of yogurt with enhanced levels of gamma-aminobutyric acid and valuable nutrients using lactic acid bacteria and germinated soybean extract. Biores. Technol. 98, 1675-1679.
Park, S. Y., Kim, K. S., Lee, M. K. and Lim, S. D. 2013. Physiological characteristics and GABA production of Lactobacillus plantarum K255 isolated from Kimchi. Kor. J. Food Sci. An. 33, 595-602.
Rizzello, C. G., Cassone, A., Cagno, R. D. I. and Gobbetti, M. 2008. Synthesis of angiotensin I-converting enzyme (ACE)-inhibitory peptides and ${\gamma}$ -aminobutyric acid (GABA) during sourdough fermentation by selected lactic acid bacteria. J. Agric. Food Chem. 56, 6936-6943.
Seok, J. H., Park, K. B., Kim, Y. H., Bae, M. O., Lee, M. K. and Oh, S. H. 2008. Production and characterization of kimchi with enhanced levels of gamma-aminobutyric acid. Food Sci. Biotechnol. 17, 940-946.
Shi, F. and Li, Y. 2011. Synthesis of ${\gamma}$ -aminobutyric acid by expressing Lactobacillus brevis-derived glutamate decarboxylase in the Corynebacterium glutamicum strain ATCC 13032. Biotechnol Lett. 33, 2469-2474.
Shin, S. M., Kim, H. N., Joo, Y. J., Lee, S. J., Lee, Y. J., Lee, S. J. and Lee, D. W. 2014. Characterization of glutamate decarboxylase from Lactobacillus plantarum and its C-terminal function for the pH dependence of activity. J. Agric. Food Chem. 62, 12186-12193.
Siragusa, S., Angelis, M. D., Cagno, R. D., Rizzello, C. G., Coda, R. and Gobbetti, M. 2007. Synthesis of ${\gamma}$ -aminobutyric acid by lactic acid bacteria isolated from a variety of Italian cheeses. Appl. Environ. Microbiol. 73, 7283-7290.
Skeie, S., Lindberg, C. and Narvhus, J. 2001. Development of amino acids and organic acids in Norvegia, influence of milk treatment and adjunct Lactobacillus. Int. Dairy J. 11, 399-411.
Tajabadi, N., Ebrahimpour, A., Baradaran, A., Rahim, R. A., Mahyudin, N. A., Manap, M. Y. A., Bakar, F. A. and Saari, N. 2015. Optimization of ${\gamma}$ -aminobutyric acid production by Lactobacillus plantarum Taj-Apis362 from honeybees. Molecules 20, 6654-6669.
Tsai, J. S., Lin, Y. S., Pan, B. S. and Chen, T. J. 2006. Antihypertensive peptides and gamma-aminobutyric acid from prozyme 6 facilitated lactic acid bacteria fermentation of soymilk. Process Biochem. 41, 1282-1288.
Wang, H. F., Tsai, Y. S., Lin, M. L. and Ou, A. S. 2006. Comparison of bioactive components in GABA tea and green tea produced in Taiwan. Food Chem. 96, 648-653.
Woo, S. M., Shin, J. S., Seong, J. H., Yeo, S. H., Choi, J. H., Kim, T. Y. and Jeong, Y. J. 2010. Quality characteristics of brown rice takju by different Nuruks. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 39, 301-307.
Yang, T., Rao, Z., Kimani, B. G., Xu, M., Zhang, X. and Yang, S. T. 2015. Twostep production of gammaaminobutyric acid from cassava powder using Corynebacterium glutamicum and Lactobacillus plantarum. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 42, 1157-1165.
Yu, J. J. and Oh, S. H. 2011. ${\gamma}$ -aminobutyric acid production and glutamate decarboxylase activity of Lactobacillus sakei OPK2-59 isolated from Kimchi. J. Microbiology 47, 316-322.
Zhang, H., Yao, H. Y. and Chen, F. 2006. Accumulation of ${\gamma}$ -amino butyric acid in rice germ using protease. Biosci. Biotechnol. Biochem. 70, 1160-1165.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.