[논문]Pectinase처리를 한 매실 농축액의 이화학적 특성 및 생리활성

김정호; 조현동; 원영선; 박울림; 이관우; 김혁주; 서권일

doi:10.5352/jls.2018.28.11.1369

Pectinase처리를 한 매실 농축액의 이화학적 특성 및 생리활성
Physiological Activity and Physicochemical Properties of Condensed Prunus mume Juice Prepared with Pectinase 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.28 no.11 = no.223, 2018년, pp.1369 - 1378

김정호 (경북대학교 식품공학부) , 조현동 (동아대학교 산학협력단) , 원영선 (동아대학교 농업생명과학연구소) , 박울림 (동아대학교 생명공학과) , 이관우 (동아대학교 생명공학과) , 김혁주 (순천대학교 산업기계공학과) , 서권일 (동아대학교 생명공학과)

초록
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본 연구는 예로부터 한약재 및 식용으로 널리 사용되어지는 매실을 이용한 가공식품의 기능성 원료로서 활용하기 위해 pectinase를 사용하여 제조한 매실 농축액의 이화학적 특성 및 생리활성을 평가하였다. 총 산도는 35.81%, pH는 2.73, 당도는 $54.36^{\circ}Brix$ 및 탁도는 2.75를 나타냈다. 매실 농축액의 항산화 활성은 DPPH radical 소거활성, 환원력, $H_2O_2$ 소거활성 및 lipid peroxyl radical 소거활성을 통하여 확인하였고, positive control과 유사하거나 다소 낮게 나타나 우수한 항산화 활성을 보였다. 또한 당 분해효소인 ${\alpha}$-glucosidase 활성 저해 효과 또한 뛰어난 것으로 나타났다. 매실 농축액을 처리함에 따라 B16 마우스 피부암세포, SK-MEL-2 및 SK-MEL-28 인체 피부암세포 모두 성장이 억제되는 것을 확인할 수 있었으며 인체 피부정상세포인 HaCaT 세포에는 큰 영향을 미치지 않는 것으로 나타났고, 형태학적 관찰에서도 농도의존적으로 세포의 형태학적 변화가 유도되는 것으로 확인되었다. 매실 농축액의 폴리페놀 및 플라보노이드 함량은 각각 588.31 mg% 및 860.45 mg%로 나타났다. 결과적으로 매실 추출물은 항산화 및 당 분해 효소 활성 저해 및 암세포의 증식억제에 효능이 있는 기능성 식품 소재로 활용할 수 있을 것으로 생각된다.

Abstract ▼ AI-Helper

Prunus mume Siebold & Zucc., a member of the Rosaceae family (called Maesil in Korea), has been widely distributed in East Asia, e.g. Korea, Japan and China, and its fruit has been used as a traditional drug and health food. In this study, we evaluated physicochemical properties and physiological activities of condensed Prunus mume juice treated with pectinase (PJ). The values of total acidity, pH, sugar contents, turbidity moisture content of the PJ were 35.81%, 2.73, $54.36^{\circ}Brix$, 2.75 and 51.32%, respectively. The PJ had effective DPPH radical scavenging activity, reducing power effect, $H_2O_2$ scavenging activity and ${\beta}$-carotene bleaching effect. DPPH radical scavenging activities of PJ was 46.31%; their reducing power ($OD_{700}$) was 1.80; $H_2O_2$ scavenging activity of PJ was 91.62%; and ${\beta}$-carotene bleaching effect of PJ was 73.02%. Also, PJ showed effective levels of ${\alpha}$-glucosidase inhibition activity. The cell viability was measured by SRB assay. The PJ significantly decreased the cell viability of mouse melanoma cells (B16) and human melanoma cells (SK-MEL-2 and SK-MEL-28) in a dose-dependent manner, however, there was no effect on human keratinocyte HaCaT. In morphological study, PJ-treated SK-MEL-2 cells showed distorted and shrunken cell masses. Total polyphenol contents and total flavonoid contents of PJ were 588.31 mg% (gallic acid equivalent) and 860.45 mg% (rutin equivalent). The antiproliferative effect of PJ seems to be associated with the antioxidant activity of its flavonoid and polyphenol contents. In conclusion, PJ may be beneficial in development of a functional food material.

주제어

표/그림 (6)

표 Table 1. Physicochemical properties of Prunus mume juice treated with pectinase
그림 Fig 1. Antioxidant activities of Prunus mume juice treated with pectinase. (A) DPPH radical scavenging activity, (B) reducing power effect, (C) hydrogen peroxide scavenging activity and (D) β-carotene bleaching effect.
그림 Fig 2. Effect of α-Glucosidase inhibition of Prunus mume juice treated with pectinase.
그림 Fig 3. Effect of Prunus mume juice treated with pectinase on cell growth of (A) mouse melanoma B16 cells, (B) human melanoma SK-MEL-2 cells, (C) human melanoma SK-MEL-28 cells and (D) human keratinocyte HaCaT cells.
표 Table 2. Total polyphenol and total flavonoid contents of Prunus mume juice treated with pectinase
그림 Fig. 4. Effects of Prunus mume juice treated with pectinase on proliferation of (A) human melanoma SK-MEL-2 cells and (B) human keratinocyte HaCaT cells.

AI 본문요약
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문제 정의

정상세포 내의 과도한 활성산소종의 축적은 DNA손상을 발생시키고 유전자 돌연변이나 노화 등을 유도시켜 세포사멸이 억제되어 암세포로 변이되는 것으로 알려져 있다[19, 48]. 따라서 본 연구에서는 매실 농축액의 농도별 처리가 피부암세포 및 정상세포에서 증식 억제 효과에 미치는 영향을 알아보고자 피부암세포인 B16, SK-MEL-2 및 SK-MEL-28 세포와 피부정상세포인 HaCaT을 이용하여 SRB assay를 통해 Fig. 3의 결과를 얻었다. B16 세포의 경우 각 매실 농축액 농도에서 시간대 별로 대부분 유의적인 세포사멸율을 나타내지 않았지만, 1,250 μg/ml 농도에서 72시간 동안 처리했을 때 74.
따라서 본 연구에서는 매실식품의 가공원료로 쓰일 수 있는 pectinase를 처리한 매실 농축액을 이용하여 매실 농축액의 항산화 및 항암효과를 포함한 다양한 생리활성 효과를 평가하고 매실의 기능성 원료로서의 가능성을 확인하고자 한다.

제안 방법

매실 농축액의 β-carotene bleaching assay을 이용한 항산화 효과의 측정은 Mattaus의 방법[40]을 변형하여 측정하였다.
매실 농축액의 환원력은 Yildirim 등[57]의 방법을 변형하여 측정하였다. 즉, 매실 농축액을 각 농도별로 1 ml에 2.
5 ml의 trichloroacetic acid(10%, w/v)를 첨가한 후 3,000 rpm으로 10분간 원심분리 하였다. 상층액의 1 ml을 취해 시험관에 담고 1 ml의 증류수와 0.2 ml의 FeCl₃ (0.1%, w/v)을 첨가하여 700 nm에서 UV/Vis-spectrophotometer (Hitachi)로 흡광도를 측정하였다.
암세포 증식 억제능은 세포를 2×104 cells/ml가 되도록 희석하여 48 well plate에 분주한 다음 37°C, 5% CO2 incubator에서 24시간 배양한 후 매실 농축액을 배지에 농도별로 희석하여 첨가하고 24, 48 및 72시간 동안 반응시켰다.
앞선 결과에서 가장 큰 세포 증식 억제효과를 보인 인체피부암세포(SK-MEL-2)와 인체 피부정상세포(HaCaT)을 이용하여 농도 및 처리 시간에 따른 세포의 형태학적 변화를 관찰하였다(Fig. 4). 매실 농축액의 처리에 따른 SK-MEL-2와 HaCaT 세포의 형태학적 변화를 확인하기 위해 매실 농축액을 313μg/ml, 625 μg/ml 및 1,250 μg/ml로 처리하여 24시간, 48시간 및 72시간 후 광학현미경으로 관찰한 결과는 Fig.
이 emulsion 용액 0.2 ml에 농축액(시료 첨가구), 에탄올(대조구) 및 positive control인 α-tocopherol과 BHT 용액 8 μl를 각각 첨가하여 50℃ 배양기에 3시간 동안 저장하면서 15분 간격으로 490 nm에서 UV/Vis-spectrophotometer(Hitachi)로 흡광도를 측정하였다.
incubator에서 24시간 배양하여 매실 농축액을 농도별로 배지에 희석하여 well plate에 처리하고 24시간 동안 반응시켰다. 이후 세포의 형태학적 변화는 200배율의 광학현미경(Leica Microsystems, Wetzlar, Germany)을 이용하여 관찰하고 사진을 촬영하였다.
총 플라보노이드 함량은 Abdel-Hameed [1]의 방법을 변형하여 10배로 희석한 시료 1 ml에 5% sodium nitrite 0.15 ml을 가한 후 25°C에서 6분간 반응시킨 후 10% aluminum chloride 0.3 ml을 가하여 5분간 방치하였다.
클로로포름 10 ml에 β-carotene 1 mg을 용해하여 β-carotene 용액을 만든 후 10 ml를 둥근 플라스크에 취하고, linoleic acid 20 mg 및 200 mg Tween 40을 첨가하여 40℃ 진공회전농축기에서 진공상태로 클로로포름을 제거한 후 증류수 100 ml를 첨가한 다음 격렬히 진탕하여 emulsion 용액을 제조하였다.

대상 데이터

매실 농축액의 제조는 전남 순천에서 수확된 매실을 구매하여 실험에 사용하였다. 제핵된 매실을 파쇄한 후 40℃에서 펙틴분해효소(Pectinex Ultra AFP, novozyme, Switzerland, 10,000 Pectu/g)를 0.
본 실험에 사용한 mouse melanoma B16, SK-MEL-2, SK-MEL-28 인체 피부암세포 및 HaCaT 인체 피부정상세포는 American Type Culture Collection (ATCC)에서 분양 받아 100 unit/ml의 Antibiotic Antimycotic (GIBCO^Ⓡ/Invitrogen^TM, Gran Island, NY, USA)와 10% FBS (Fetal Bovine Serum, GIBCO^Ⓡ/Invitrogen^TM)가 첨가된 각각의 RPMI1640, DMEM 및 keratinocyte-SFM 배지(GIBCO^Ⓡ/Invitrogen^TM)를 이용하여 37℃, 5% CO₂ incubator (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA)에서 계대배양하여 사용하였다.
이후 원심분리하여 상층액을 여과한 후 얻은 여액을 60℃에서 감압농축을 실시하였고, 위와 같은 여과 및 농축과정을 2회 반복하여 매실 농축액을 제조하였다. 제조된 농축액은 4℃에 냉장 보관하면서 이화학적 특성 분석시에는 원액을, 생리활성 측정시에는 동결건조한 시료를 실험에 사용하였다.

데이터처리

통계분석은 각 시료군 간의 유의적인 변화를 one-way ANOVA로 분석하였으며, 3 반복에 대한 평균 및 표준편차로 표시하였고, 각 군 간의 통계적 유의성에 대한 검증은 Student'st-test를 실시하여 판정하였다(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001).

이론/모형

과산화수소(H2O2) 소거활성능은 Műler [43] 의 방법에 따라 시료 100 μl를 96 microwell plate에 넣어 혼합시켰다.
매실 농축액의 농도별 DPPH radical 소거활성은 Blois 방법[3]에 대한 α,α'-diphenyl-β-picrylhydrazine (DPPH)의 환원성을 이용하여 517 nm에 UV/Vis-spectrometer (Hitachi, Tokyo,Japan)로 측정하였다.
암세포 증식 억제능은 sulforhodamine B (SRB, SigmaAldrich Co., St. Louis, MO, USA)법을 이용하여 측정하였다. SRB법은 생존 세포 내의 단백질 총량을 흡광도로 측정하여 세포 사멸 정도를 확인하는 방법이다.
총 폴리페놀 함량은 Folin-Ciocalten 방법에 따라 측정하였다[8]. 즉, 10배로 희석한 시료 0.

성능/효과

DPPH radical 소거능 결과 positive control인 0.1% BHT와 0.1% α-tocopherol에서 각각 87.03 및 80.31%로 가장 높았고, 매실 농축액의 경우 농도의존적으로 DPPH radical 소거능이 증가하는 경향을 나타내었으며 5,000 μg/ml의 농도에서 46.31%의 소거능을 나타내었다(Fig. 1A).
4A). HaCaT 세포에서는 매실 농축액을 처리한 군과 처리하지 않은 control 군에서의 세포의 크기와 부착이 안정적인 것을 확인하여 매실 농축액의 처리가 정상세포의 증식에 큰 영향을 미치지 않는 것으로 확인되었다(Fig. 4B). Park 등[47]은 매실 추출물을 처리함에 따라 인체 백혈병 세포의 apoptosis를 통한 사멸이 일어난다고 보고하였기에 본 연구의 피부암세포인 SKMEL-2 세포에 매실 추출물을 처리하였을 때 유도된 세포의 사멸이 apoptosis에 의한 사멸인 것으로 생각된다.
Positive control인 0.1% α-tocopherol과 0.1% BHT에서 각각 79.67%와 89.85%의 소거 활성을 나타내었고, 매실 농축액은 농도별로 10.81%, 39.37%, 79.02%, 90.12% 및 91.62%로 나타냈다.
Positive control인 0.1% acarbose에서 59.62%의 억제 활성을 나타내었고, 매실 농축액은 농도별로 5.09%, 5.40%, 7.64%, 17.76% 및 47.18%로 나타나 α-glucosidase 억제 활성이 농도의존적으로 증가하는 경향을 보였다.
1C에 나타냈다. 각 매실 농축액은 농도의존적으로 hydrogen peroxide 소거 활성이 증가하는 경향으로 나타났다. Positive control인 0.
매실 농축액의 당도는 54.36°Brix이었고, pH는 2.73, 총 산도와 탁도는 각각 35.81% 및 2.75로 확인되었으며, 수분 함량은 51.32%로 나타났다.
매실 농축액의 총 폴리페놀과 총 플라보노이드 함량 측정 결과는 Table 2와 같다. 매실 농축액의 총 폴리페놀 함량은 588.31 mg%로 나타났고, 총 플라보노이드 함량은 860.45 mg%로 나타났다. 이는 Seo 등[50]의 품종별 매실 추출물의 총 폴리페놀 및 총 플라보노이드 함량을 보고한 연구와 다소 상이한 결과이지만 이는 80% 에탄올 추출물과 매실 농축액의 제조 방법 차이에 따른 결과인 것으로 생각된다.
모든 실험군에서 β-carotene bleaching 항산화 활성은 시간이 지남에 따라 감소하는 경향을 보였다.
특히 2,500 μg/ml과 5,000 μg/ml의 농도에서 90% 이상의 hydrogen peroxide 소거 활성을 보이며, positive control보다 높은 값을 나타냈다.
특히 625 μg/ml의 농도부터 세포 증식 억제 효과가 유의적으로 증가하는 것으로 나타났으며 1,250 μg/ml의 농도로 72시간 처리시 55.86%의 세포생존율을 보였다(Fig. 3B).
특히 매실 농축액을 1,250 μg/ml의 농도에서 72시간 처리했을 때 87.13%의 세포생존율을 보여 세포의 증식에 영향을 미치지 않은 것으로 나타났다(Fig. 3D).
3C). 피부정상세포인 HaCaT의 경우 매실 농축액을 농도별로 24시간, 48시간 및 72시간 처리시 세포생존율이 비교적감소하는 경향을 보였다. 특히 매실 농축액을 1,250 μg/ml의 농도에서 72시간 처리했을 때 87.

후속연구

이러한 결과로 보아 본 연구에서 제조한 매실 농축액은 항산화, 당 분해효소 활성 저해 및 암세포 성장 억제 등의 효과를 보여 건강기능식품의 소재로서 활용 가치가 높은 것으로 사료된다.
Park 등[47]은 매실 추출물을 처리함에 따라 인체 백혈병 세포의 apoptosis를 통한 사멸이 일어난다고 보고하였기에 본 연구의 피부암세포인 SKMEL-2 세포에 매실 추출물을 처리하였을 때 유도된 세포의 사멸이 apoptosis에 의한 사멸인 것으로 생각된다. 이후 매실농축액의 처리에 따른 세포의 사멸에 대한 효능과 기전에 대한 상세한 검증이 필요하다고 판단된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	활성산소는 어떤 생리학적 변화를 일으키는가?	활성산소는 산소를 이용하는 동식물의 대사과정 중 발생하는 물질이며, 대표적으로 hydrogen peroxide, hydroxyl radical, superoxide anion radical 등의 활성산소종이 알려져 있다[43]. 한편, 활성산소는 인체 내에서 면역관련 작용도 하지만 과잉으로 생성되면 산화적 스트레스를 일으켜 세포 내 DNA lesion, 염색체돌연변이 및 형태학적 변형을 포함하여 알츠하이머, 피부노화, 전 세계적으로 사망 원인 1위 질병인 암 등 다양한 생리학적 변화를 일으킨다고 보고되어져 있다[25, 43]. 이에 대응하여 인체는 활성산소종을 억제하기 위해 glutathione reductase, superoxide dismutase 등과 같은 항산화물질들을 생성하고, 보조제로 합성 항산화제를 복용하여 산화를 막고 과잉 생성된 활성산소종을 제거하기도 한다[25, 44, 48].
	SRB법에서 흡광도는 어떻게 측정되어지는가?	SRB법은 생존 세포 내의 단백질 총량을 흡광도로 측정하여 세포 사멸 정도를 확인하는 방법이다. Trichloroacetic acid (TCA, Sigma-Aldrich Co.)에 의해 생존 세포의 단백질 내 염기성 아미노산 잔기가 SRB와 결합하여 Tris buffer의 처리에 의해 흡광도를 나타낸다. 암세포 증식 억제능은 세포를 2×104 cells/ml가 되도록 희석하여 48 well plate에 분주한 다음 37°C, 5% CO2 incubator에서 24시간 배양한 후 매실 농축액을 배지에 농도별로 희석하여 첨가하고 24, 48 및 72시간 동안 반응시켰다.
	활성산소는 무엇인가?	활성산소는 산소를 이용하는 동식물의 대사과정 중 발생하는 물질이며, 대표적으로 hydrogen peroxide, hydroxyl radical, superoxide anion radical 등의 활성산소종이 알려져 있다[43]. 한편, 활성산소는 인체 내에서 면역관련 작용도 하지만 과잉으로 생성되면 산화적 스트레스를 일으켜 세포 내 DNA lesion, 염색체돌연변이 및 형태학적 변형을 포함하여 알츠하이머, 피부노화, 전 세계적으로 사망 원인 1위 질병인 암 등 다양한 생리학적 변화를 일으킨다고 보고되어져 있다[25, 43].

참고문헌 (57)

Abdel-Hameed, E. S. S. 2009. Total phenolic contents and free radical scavenging activity of certain Egyptian Ficus species leaf samples. Food Chem. 114, 1271-1277.

상세보기
Bae, J. H., Kim, S. M., Kim, K. J., Lee, W. J. and Lee, S. J. 2000. Development of the functional beverage containing the Prunus mume extracts. Kor. J. Food Sci. Technol. 32, 713-719.
Blois, M. S. 1958. Antioxidant activity determination by the use of a stable free radical. Nature 181, 1199-1200.
Cho, M. J., Park, C. M. and Lee, H. S. 2007. Nitrite scavenging ability and SOD-like activity of a sterol glucoside from Chrysanthemum coronarium L. var. spatiosum. Kor. J. Food Sci. Technol. 39, 77-82.
Choi, J. I. and Baek, J. H. 2010. Analysis of consumer behavior toward and preferences for Prunus mume (Maesil). Chinese Plum. 17, 571-580.
Choi, M. Y., Won, H. R. and Park, H. J. 2004. Antimicrobial activities of Maesil (Prunus mume) extract. Kor. J. Community Living Sci. 15, 61-66.
Fulda, S. and Debatin, K. M. 2006. Extrinsic versus intrinsic apoptosis pathways in anticancer chemotherapy. Oncogene 25, 4798-4811.

상세보기
Gao, X., Bjork, L., Trajkovski, V. and Uggla, M. 2000. Evaluation of antioxidant activities of rosehip ethanol extracts in different test systems. J. Sci. Food Agric. 80, 2021-2027.

상세보기
George, V. C., Kumar, D. R. N., Suresh, P. K., Kumar, S. and Kumar, R. A. 2013. Comparative studies to evaluate relative in vitro potency of luteolin in inducing cell cycle arrest and apoptosis in HaCaT and A375 cells. Asian Pacific J. Cancer Prev. 14, 631-637.
Hwang, J. Y. 2005. Pharmacological effects of Maesil (Prunus mume). Food Sci. Ind. 38, 112-119.
Ian, H. 2007. The chemistry and biology of winemaking, pp. 193-201, Royal Society of Chemistry Press, CBG, UK.
Jeong, E. J., Kim, M. H. and Kim, Y. S. 2010. Effect of pectinase treatment on extraction yield of the juice of Fragaria ananassa Duch. And the quality characteristics of strawberry wine during ethanolic fermentation. Kor. J. Food Preserv. 17, 72-78.
Ji, Y. J. and Im, M. H. 2017. Optimization of blue berry extraction for beverage production using enzyme treatment. Kor. J. Food Preserv. 24, 60-67.
Kang, H. I., Kim, J. Y., Kwon, S. J., Park, K. W., Kang, J. S. and Seo, K. I. 2010. Antioxidative effects of peanut sprout extracts. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 39, 941-946.
Kang, K. M. and Lee, S. H. 2013. Effects of extraction methods on the antioxidative activity of Artemisia sp. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 42, 1249-1254.
Kang, M. J., Kim, K. S. and Shin, S. R. 2002. Antioxidative and free radical scavenging activity of water extract from Dandelion (Taraxacum officinale). Kor. J. Food Preserv. 9, 253-259.
Kang, S. K., Kang, S. H. and Kim, Y. D. 1996. Studies on the acetic acid fermentation using Maesil juice. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 25, 695-700.
Kang, S. R., Shin, M. O., Kim, S. G., Lee, S. H. and Kim, M. H. 2009. Antioxidative activity of Pine (Pinus densiflora) needle extracts in rats fed high-cholesterol diet. J. Kor. Soc Food Sci. Nutr. 38, 423-429.
Khandrika, L., Kumar, B., Koul, S., Maroni, P. and Koul, H. K. 2009. Role of oxidative stress in prostate cancer. Cancer Lett. 282, 125-136.
Kim, D. H. 2010. Food chemistry, pp. 251-266, Tamgudang, Seoul, Korea
Kim, H. R., Kim, I. D., Dhungana, S. K., Kim, M. O. and Shin, D. H. 2014. Comparative assessment of physicochemical properties of unripe peach (Prunus persica) and Japanese apricot (Prunus mume). Asian Pac. J. Trop. Biomed. 4, 97-103.

상세보기
Kim, H. S., Kim, M. S., Kim, S. H., Yun, K. W. and Song, J. H. 2013. Analysis of total phenolic content and antioxidant activity from fruits of Vaccinium oldhamii Miq. J. Kor. For. Soc. 102, 566-570.
Kim, H. Y. and Lee, G. D. 2017. Monitoring for optimum antioxidant extraction condition of Gugija (Lycium chinensis Mill) extract. J. Oil. Appl. Sci. 34, 451-460.
Kim, I. H., Kim, J. B., Cho, K. J., Kim, J. H. and Om, A. S. 2012. Cytoprotective effect of ethanol extract from Maesil (Prunus mume Sieb. Et Zucc.) on alloxan-induced oxidative damage in pancreatic-cell, HIT-T15. Kor. J. Plant Res. 25, 184-192.
Kim, J. H., Cho, H. D., Hong, S. M., Lee, J. H., Lee, Y. S., Kim, D. Y. and Seo, K. I. 2016. Antioxidant and antiproliferating effects of Setaria italica, Panicum miliaceum and Sorghum bicolor extracts on prostate cancer cell lines. Kor. J. Food Preserv. 23, 1033-1041.
Kim, K. Y., Nam, K. A., Kurihara, H. and Kim, S. M. 2008. Potent ${\alpha}$ -glucosidase inhibitors purified from the red alga Grateloupia elliptica. Phytochemistry 69, 2820-2825.
Kim, M. H., Choi, S. W. and Kim, E. J. 2012. Differential anti-carcinogenic effect of mountain cultivated Ginseng and Ginseng on mouse skin carcinogenesis. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 41, 462-470.
Kim, S. I., Sim, K. H., Ju, S. Y. and Han, Y. S. 2009. A study of antioxidative and hypoglycemic activities of Omija (Schizandra chinensis Baillon) extract under variable extract conditions. Kor. J. Food Nutr. 22, 41-47.
Kim, S. S. 2009. Physiological functionalities of wine and French paradox. Food Ind. Nutr. 14, 54-56.
Kim, Y. W., Kim, T. H., Ahn, H. Y. and Cho, Y. S. 2018. Antioxidative effects and chemical characteristics of Annona muricata leaf extracts. J. Life Sci. 28, 540-546.
Kwen, I. H., Du, I. S., Park, M. C., Hwang, C. Y. and Kim, N. K. Effect of Batryticatus Bombycis extract on apoptosis in B16F10 cells. Kor. J. Oriental Physiol. Pathol. 19, 765-771.
Kwon, E. K., Lee, C. H., Yang J. W. and Kim, Y. E. 2009. ABTS radical scavenging and anti-tumor effects of Tricholoma matsutake Sing. (Pine Mushroom). J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 38, 555-560.
Lee, C., Jang, J. H., Kim, B. A. and Park, C. I. 2012. Anti-aging effects of marine natural extracts against UVB-induced damages in human skin cells. J. Soc. Cosmet. Scientists Korea 38, 255-261.
Lee, E. H., Ham, J. Y., Ahn, H. R., Kim, M. C., Kim, C. Y., Pan, C. H., Um, B. H. and Jung, S. H. 2009. Inhibitory effects of the compounds isolated from Sargassum yezoense on ${\alpha}$ -glucosidase and oxidative stress. Kor. J. Pharmacogn. 40, 150-154.
Lee, E. H., Nam, E. S. and Park, S. I. 2002. The effect of Maesil (Prunus mume) extract on the acid production and growth of yoghurt starter. Kor. J. Food Nutr. 15, 42-49.
Lee, J. C., Choi, Y, K., Park, J. S., Jung, H. H., Yi, D. H., Choe, T. B., Kang, S. M. and Kim, H. J. 2012. Effect of pectinase in grape (red glove) production and quality of red wine. J. East Asian Soc. Dietary Life. 22, 264-270.
Lee, J. M., Chang, P. S. and Lee, J. H. 2007. Comparison of oxidative stability for the thermally-oxidized vegetable oils using a DPPH method. Kor. J. Food Sci. Technol. 39, 133-137.
Lee, S. H., Im, D. K., Jang, Y. M., Kim, S. Y., Jang, H. W., Lee, S. M., Kim, H. A., Kim, D. H., Kim, I. Y., Jang, J. W., Kim, E. J. and Lee, H. J. 2010. Analytical determination of cyanide in Maesil (Prunus mume) extracts. Kor. J. Food Sci. Technol. 42, 130-135.
Marklund, S. and Marklund, G. 1974. Involvement of the superoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. Eur. J. Biochem. 47, 469-474.

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Matthaus, B. 2002. Antioxidant activity of extracts obtained from residues of different oilseeds. J. Agric. Food Chem. 50, 3444-3452.

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Mo, J. H. and Oh, S. J. 2015. Tyrosinase inhibitory activity and melanin production inhibitory activity of extract of Thuja orientalic. Kor. J. Aesthet. Cosmetol. 13, 189-194.
Mo, S. W., Seo, Y. I. and Lee, K. B. 2011. How to activate the Prunus mume (Maesil) industry in Gwangyang region. J. Ind. Econ. Bus. 24, 2609-2623.
Muller, H. E. 1985. Detection of hydrogen peroxide produced by microorganisms on an ABTS peroxidase medium. Zentralbl. Bakteriol. Mikrobiol. Hyg. A. 259, 151-154.
Nam, S. H., Ham, J. W. and Hwang, J. Y. 2004. The antioxidant activity of Maesil (Prunus mume). Kor. J. Food Sci. Technol. 36, 461-464.
Oh, Y. N., Jin, S. J., Park, H. J., Kwon, H. J. and Kim, B. W. 2014. Anti-oxidative and anti-cacer activities by cell cycle regulation of Salsola collina extract. Kor. J. Microbiol. Biotechnol. 42, 73-81.
Paik, I. Y., Chang, W. R., Kwak, Y. S., Cho, S. Y. and Jin, H. E. 2010. The effect of Prunus mume supplementation on energy substrate levels and fatigue induction factors. J. Life Sci. 20. 49-54.
Park H. M. and Hong, J. H. 2014. Antioxidant activity of extracts with extraction methods from Phellinus Linteus mycelium on Mori ramulus. Kor. J. Food Preserv. 21, 565-572.
Park, H. J., Kim, M. M. and Oh, Y. 2012. Effect of fruit extract of Prunus mume on the scavenging activity of reactive oxygen species and melanin production in B16F1 cells. J. Life Sci. 22, 936-942.
Park, S. Y., Chae, S. K., Son, R. H., Jung, J. H., Im, Y. R. and Kwon, J. W. 2012. Quality characteristics and antioxidant activity of Bokbunja (Black Raspberry) vinegars. Food Engineering Progress 16, 340-346.
Seo, H. J., Yim, S. H. and Song, J. H. 2018. Antioxidant activity of major cultivars Prunus mume in Korea. Kor. J. Org. Agric. 26, 477-488
Shin, E. J., Hur, H. J., Sung M. J., Park, J. H., Yang, H. J., Kim, M. S., Kwon, D. Y. and Hwang, J. T. 2013. Ethanol extract of the Prunus mume fruits stimulates glucose uptake by regulating PPAR- ${\gamma}$ in C2C12 myotubes and ameliorates glucose intolerance and fat accumulation in mice fed a high-fat diet. Food Chem. 141, 4115-4121.
Son, S. S., Chung, H. C. and Ji, W. D. 2003. Optimum condition for alcohol fermentation using mume (Prunus mume Sieb. et Zucc) fruits. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 32, 539-543.
Tapre, A. R. and Jain, R. K. 2014. Optimization of an enzyme assisted banana pulp clarification process. Int. Food Res. J. 21, 2043-2048
Wyllie, A. H., Kerr, J. F. and Currie, A. R. 1980. Cell death: the significance of apoptosis. Int. Rev. Cytol. 68, 251-306.
Xia, D., Shi, J., Gong, J., Wu, X., Yang, Q. and Zhang, Y. 2010. Antioxidant activity of Chinese mei (Prunus mume) and its active phytochemicals. J. Med. Pla. Res. 4, 1156-1160.
Yeo, S. G., Ahn, C. W., Lee, Y. W., Lee, T. G., Park, Y. H. and Kim, S. B. 1995. Antioxidative effect of tea extracts from green tea, oolong tea and black tea. J. Kor. Soc. Food Nutr. 24, 299-304.
Yildirim, A., Mavi, A. and Kara, A. A. 2001. Determination of antioxidant and antimicrobial activities of Rumex crispus L. extracts. J. Agric. Food Chem. 49, 4083-4089.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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