$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

노랑붓꽃에서 분리된 Iridin의 독소루비신 유도 HK-2 세포 괴사에 대한 역할 및 암세포에 대한 작용

Role of Iridin Isolated from Iris koreana Nakai on Doxorubicin-induced Necrosis in HK-2 Cells, and Effect on Cancer Cells

韓國資源植物學會誌 = Korean journal of plant resources, v.31 no.2, 2018년, pp.95 - 101  

노종현 (한약진흥재단) ,  이기호 (한약진흥재단) ,  정호경 (한약진흥재단) ,  이무진 (한약진흥재단) ,  장지훈 (한약진흥재단) ,  심미옥 (한약진흥재단) ,  정자균 (한약진흥재단) ,  정다은 (한약진흥재단) ,  조현우 (한약진흥재단)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

노랑붓꽃에서 분리된 iridin의 doxorubicin으로 유도된 신장 세포괴사 모델에 대한 보호 효과 및 암세포에 대한 작용을 알아보기위해 연구를 수행하였다. Iridin 단일 처리로는 신장근위세뇨관 세포주에 대해 독성을 나타내지 않았으며, $80{\mu}M$의 농도에서 $10{\mu}M$ doxorubicin 처리에 의한 세포사멸$94.6{\pm}2.6%$까지 회복시켰다. 또한 $80{\mu}M$ iridin 처리는 $10{\mu}M$ doxorubicin 처리에 의해 증가된 cleaved PARP1과 cleaved caspase-3를 포함하는 세포사멸 신호전달을 차단하였을 뿐만 아니라 DNA fragmentation, necrotic cell death 및 mitochondrial dysfunction을 개선시켰다. 마지막으로 암세포에서 iridin의 효과를 확인해본 결과, 폐암세포주인 NCI-H1229 세포에서 doxorubicin의 항암효과를 억제하는 경향이 나타났지만 대장암 세포주인 HCT-116 세포주에서는 암세포에 대한 성장억제를 방해하지 않는 것으로 확인되었다. 따라서 폐암세포에서 doxorubicin과 iridin의 병용처리는 힘들다고 판단되고, In vivo 수준에서 신장 독성 및 대장암 관련 실험을 통해 iridin의 역할을 추가적으로 확인해야한다고 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Doxorubicin is a anti-cancer drugs that interferes with the growth and spread of cancer cells in human body. Doxorubicin is used to treat different types of cancers that affect the ovary, thyoid and lungs, but induced side effect such as nephrotoxicity and cardiotoxicity. Thus, we investigated that ...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • Iridin이 doxorubicin으로 유도한 HK-2 세포독성에 대한 보호효과가 있음을 확인하였다. 그러나 MTS assay는 apopotosis와 necrosis 등 다양한 세포 사멸경로를 특이적으로 분석할 수 없는 단점이 있기 때문에 doxorubicin에 의한 세포사멸 경로와 이에 대한 iridin의 억제효과가 어떤 단백질 신호전달경로를 통해 일어나는지 알아보기 위해 다음 실험을 진행하였다.
  • 노랑붓꽃에서 분리된 iridin의 doxorubicin으로 유도된 신장 세포괴사 모델에 대한 보호 효과 및 암세포에 대한 작용을 알아보기위해 연구를 수행하였다. Iridin 단일 처리로는 신장근위세뇨관 세포주에 대해 독성을 나타내지 않았으며, 80 μM의 농도에서 10 μM doxorubicin 처리에 의한 세포사멸을 94.
  • , 2013). 따라서 본 연구는 doxorubicin에 의해 유발된 신장독성 세포 모델에 노랑붓꽃 전초에서 분리한 iridin을 처리하여 신장독성 억제 효과 또는 신장세포에 대한 iridin의 독성이 나타나는지 조사해보고자 하였다.
  • 이상의 결과를 종합하면 iridin은 doxorubicin에 의해 유도된 신장세포의 괴사를 억제하는 것으로 사료된다. 이어 같은 조건하에도 iridin이 doxorubicin으로 유도되는 암세포의 사멸에 어떻게 관여할 것인지 알아보기 위해 실험을 진행하였다. 실험에 사용된 세포주는 휴먼 유래폐암세포주인 NCI-H1229와 대장암세포주인 HCT-116을 이용하였다.
  • 결과를 종합하자면 HK-2 세포에서 10 μM doxorubicin 처리는 caspase-3 단백질을 활성과 발현량을 증가시켰지만 이는 80 μM iridin을 전 처리 했을 때 모두 차단되었다. 하지만 CDK4와 CDK6의 단백질 발현량 뿐만 아니라 세포주기를 확인하는 추가적인 실험이 필요할 것으로 생각되며, 다음으로 iridin이 어떤apoptosis 또는 necrosis와 같은 특정 세포사멸기전에 영향을 미치는지 알아보기 위해 다음 실험을 진행하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
진핵세포의 세포주기는 크게 어떤 단계로 나누어지는가? 진핵세포의 세포주기는 크게 G1, S, G2, M기로 나누어져있으며, 각각 단계마다 다음 단계로 진행에 관여하는 체크포인트가 존재한다. 이에 관여하는 여러 단백질들의 상호작용을 통해 세포주기가 촉진되거나 억제되며(Park et al.
Doxorubicin은 무엇으로 사용되고 있는가? Doxorubicin은 adriamycin으로도 잘 알려져 있으며, 암세포를 억제하는 항암제로 사용되고 있다. 이는 암세포에서 DNA 사이에 삽입(intercalation)되어 DNA합성을 방해할 뿐만 아니라 DNA 수리를 담당하는 topoisomerase-2를 억제하며, 산화스트레스를 유도함에 따라 암세포의 사멸을 유도 한다(Thorn et al.
Doxorubicin이 항암 작용을 하는 메커니즘은 무엇인가? Doxorubicin은 adriamycin으로도 잘 알려져 있으며, 암세포를 억제하는 항암제로 사용되고 있다. 이는 암세포에서 DNA 사이에 삽입(intercalation)되어 DNA합성을 방해할 뿐만 아니라 DNA 수리를 담당하는 topoisomerase-2를 억제하며, 산화스트레스를 유도함에 따라 암세포의 사멸을 유도 한다(Thorn et al., 2011).
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (19)

  1. Choi, K.M., J.H. Lee, G.O. Adam, S.J. Kim, H.S. Kang, Y.S. Yang and G.B. Kim. 2017. Effects of the Jinan red ginseng extract treatment on poloxamer 407-induced hyperlipidemia in rabbits. Korean J. Plant Res. 30:601-611. 

  2. Eom, T.H., J.H. Kim, S.I. Lee and J.G. Jeong. 2013. A herbalogical study on the plants of Iridaceae in Korea. Korean J Herbol. 28:85-93. 

  3. Guo, H.F. and M.H. Wang. 2017. Anti-inflammatory and anti- cancer effect of Stachys affinis tubers. Korean J. Plant Res. 30:679-685. 

  4. Kim, Y.S. and J.H. Cho. 2016. Optimal treatment of advanced pancreatic neuroendocrine tumor. Korean J Pancreas Biliary Tract. 21:128-137. 

  5. Lee, J.H., C.H. Lee, G.W. Park and C.Y. Song. 2007. Effect of forcing date and temperature on growth and flowering of Iris koreana and Iris minutoaurea. J Korean For Soc. 96:699-704. 

  6. Lee, H.J. and S.J. Park. 2013. A phylogenetic study of Korean Iris L. based on pastid DNA (psbA-trnH, trnL-F) sequences. Korean J PI Taxon. 43:227-235. 

  7. Marcos, M. 2014. Cyclin-dependent kinases. Genome Biol. 15:122. 

  8. Park, H.J., S.J. Jin, Y.N. Oh, S.G. Yun, J.Y. Lee, H.J. Kwon and B.W. Kim. 2013. Induction of G1 arrest by methanol extract of Lycopus lucidus in human lung adenocarcinoma A549 cells. J Life Sci. 23:1109-1117. 

  9. Pi, J.H., J.G. Park, J.Y. Jung, J.S. Park, G.U. Suh and S.W. Son. 2016A. Habitats environmental and population characteristics of Iris koreana Nakia, a rare and endemic species in Korea. J Agric & Life Sci. 49:102-109. 

  10. Pi, J.H., J.G. Park, J.Y. Jung, J.S., Park, H.H., Yang, G.U., Suh, C.H. Lee and S.W. Son. 2016B. Vegetation structure and flora of Iris koreana Nakia, endemic species in Korea. J Agric & Life Sci. 50:55-67. 

  11. Park, G.H., H.M Song, S.B. Park, J.H. Park, M.S. Shin, H.J. Son, Y. Um and J.B. Jeong. 2017. Anti-proliferative activity of ethanol extracts from Taxilli ramulus (Taxillus chinensis (DC.) Danser) through cyclin D1 proteasomal degradation in human colorectal cancer cells. Korean J. Plant Res. 30:640-646. 

  12. Shin, H.J., H.K. Kwon, J.H. Lee, X. Gui, A. Achek, J.H. Kim and S. Choi. 2015. Doxorubicin-induced necrosis is mediated by poly (ADP-ribose)polymerase 1 (PARP1) but is independent of p53. Sci Rep. 5:15798. 

  13. Thorn, C.F., C. Oshiro, S. Marsh, T. Hernandez-Boussard, H. Mcleod, T.E. Klein and R.B. Altman. 2011. Doxorubicin pathways: pharmacodynamics and adverse effects. Phamacogenet Genomics 21:440-446. 

  14. Tacar, O., P. Sriamornsak and C.R. Dass. 2013. Doxorubicin: an update on anticancer molecular action, toxicity and novel drug delivery systems. J Pharm Pharmacol. 65:157-170. 

  15. Tarasewicz, E., R. Hamdan, J. Straehla, A. Hardy, O. Nunez, S. Zelivianski, D. Dokic and J.S. Jeruss. 2014. CDK4 inhibition and doxorubicin mediate breast cancer cell apoptosis through Smad3 and survivin. Cancer Biol Ther. 15:1301-1311. 

  16. Tadesse, S., M. Yu, M. Kumarasiri, B.T. Le and S. Wang. 2015. Targeting CDK6 in cancer: State of the art and new insights. Cell Cycle 14:3220-3230. 

  17. Yoon, G.A., S.Y. Chae and K.H. Kim. 2012. Synergistic anticancer activity on mouse sarcoma by mixture of doxorubicin and water extract of Albizzia julibrissin. Cancer Prev Res. 17:239-243. 

  18. Yoon, J.H., S.H. Sohn, E.Y. Lee, G.S. Kim, S.E. Lee, D.Y. Lee, K.H. Seo, S.W. Lee and H.D. Kim. 2015. Protective effect of saururus chinensis ethanol extract against styrene in mouse spermatocyte cell line. Korean J Med Crop Sci. 25:45-51. 

  19. Yuan, J., A. Najafov and B.F. Py. 2016. Roles of caspases in necrotic cell death. Cell 15:1693-1704. 

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트