두충(Eucommia ulmoides Oliver)잎 아세톤 추출물의 in vitro 항암 및 항산화 활성을 조사하였다. 두충잎 아세톤 추출물의 수율은 $1.13{\pm}0.033%$ (w/w)이었고, 총 페놀성 화합물 함량은 $36.7{\pm}1.96mg$gallic acid equivalents/g-추출물로 나타났다. 세포증식을 절반 억제하는 추출물의 농도인 $GI_{50}$값은 사람의 암세포인 비소세포폐암세포(A549)에서 $53.4{\mu}g/mL$, 결장암세포(SNU-C4)에서 $53.8{\mu}g/mL$ 및 자궁경부암세포(HeLa)에서 $88.3{\mu}g/mL$이었고, 사람의 정상세포인 배아 폐 상피세포(L132)에서는 $153.9{\mu}g/mL$로 나타났다. 두충잎 아세톤 추출물은 사람의 정상세포에는 낮은 독성을 나타내면서 농도에 비례하여 사람의 비소세포폐암세포(A549)와 결장암세포(SNU-C4)의 증식을 효과적으로 억제하였다. DPPH 유리라디칼을 절반 소거하는 추출물의 농도인 $EC_{50}$값은 2 mg/mL 정도로 높게 나타났고, 환원력의 $EC_{50}$값은 $275.8{\mu}g/mL$, 지질과산화를 절반 저해하는 농도인 $EC_{50}$값은 $257.9{\mu}g/mL$이었다. 유근피 아세톤 추출물은 농도에 비례하여 우수한 환원력 및 지질과산화 억제활성을 보여주었다.
두충(Eucommia ulmoides Oliver)잎 아세톤 추출물의 in vitro 항암 및 항산화 활성을 조사하였다. 두충잎 아세톤 추출물의 수율은 $1.13{\pm}0.033%$ (w/w)이었고, 총 페놀성 화합물 함량은 $36.7{\pm}1.96mg$ gallic acid equivalents/g-추출물로 나타났다. 세포증식을 절반 억제하는 추출물의 농도인 $GI_{50}$값은 사람의 암세포인 비소세포폐암세포(A549)에서 $53.4{\mu}g/mL$, 결장암세포(SNU-C4)에서 $53.8{\mu}g/mL$ 및 자궁경부암세포(HeLa)에서 $88.3{\mu}g/mL$이었고, 사람의 정상세포인 배아 폐 상피세포(L132)에서는 $153.9{\mu}g/mL$로 나타났다. 두충잎 아세톤 추출물은 사람의 정상세포에는 낮은 독성을 나타내면서 농도에 비례하여 사람의 비소세포폐암세포(A549)와 결장암세포(SNU-C4)의 증식을 효과적으로 억제하였다. DPPH 유리라디칼을 절반 소거하는 추출물의 농도인 $EC_{50}$값은 2 mg/mL 정도로 높게 나타났고, 환원력의 $EC_{50}$값은 $275.8{\mu}g/mL$, 지질과산화를 절반 저해하는 농도인 $EC_{50}$값은 $257.9{\mu}g/mL$이었다. 유근피 아세톤 추출물은 농도에 비례하여 우수한 환원력 및 지질과산화 억제활성을 보여주었다.
In vitro anticancer and antioxidant effects of acetone extract from leaves of Eucommia ulmoides Oliver were investigated. The extraction yield and total phenolic content of the acetone extract were $1.13{\pm}0.033%$ (w/w) and $36.7{\pm}1.96mg$ gallic acid equivalents/g-extract,...
In vitro anticancer and antioxidant effects of acetone extract from leaves of Eucommia ulmoides Oliver were investigated. The extraction yield and total phenolic content of the acetone extract were $1.13{\pm}0.033%$ (w/w) and $36.7{\pm}1.96mg$ gallic acid equivalents/g-extract, respectively. $GI_{50}$ values of the acetone extract for human non-small cell lung cancer cells (A549), human colon cancer cells (SNU-C4), human cervical cancer cells (HeLa), and human embryonic lung epithelial cell (L132) were 53.4, 53.8, 88.3, and $153.9{\mu}g/mL$, respectively. The acetone extract effectively inhibited the proliferation of human non-small cell lung cancer (A549) and colon cancer (SNU-C4) cells in a concentration-dependent manner, but was less cytotoxic with human normal cells (L132). $EC_{50}$ values of the acetone extract for free radical scavenging, reducing power, and lipid peroxidation inhibition were about 2,000, 275.8, and $257.9{\mu}g/mL$, respectively. The acetone extract showed a potent reducing power and lipid peroxidation inhibitory activity in a concentration-dependent manner.
In vitro anticancer and antioxidant effects of acetone extract from leaves of Eucommia ulmoides Oliver were investigated. The extraction yield and total phenolic content of the acetone extract were $1.13{\pm}0.033%$ (w/w) and $36.7{\pm}1.96mg$ gallic acid equivalents/g-extract, respectively. $GI_{50}$ values of the acetone extract for human non-small cell lung cancer cells (A549), human colon cancer cells (SNU-C4), human cervical cancer cells (HeLa), and human embryonic lung epithelial cell (L132) were 53.4, 53.8, 88.3, and $153.9{\mu}g/mL$, respectively. The acetone extract effectively inhibited the proliferation of human non-small cell lung cancer (A549) and colon cancer (SNU-C4) cells in a concentration-dependent manner, but was less cytotoxic with human normal cells (L132). $EC_{50}$ values of the acetone extract for free radical scavenging, reducing power, and lipid peroxidation inhibition were about 2,000, 275.8, and $257.9{\mu}g/mL$, respectively. The acetone extract showed a potent reducing power and lipid peroxidation inhibitory activity in a concentration-dependent manner.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
실제로 약용 식물의 지용성 추출물이 암세포의 증식을 효과적으로 억제한다는 많은 보고[19,20,21,22]가 있고, 두충잎의 경우에도 석유에테르 추출물이 in vitro에서 사람의 결장암세포(HCT-116)의 증식을 억제한다고 알려져 있어 [23], 이를 근거로 비극성 용매를 사용하여 두충잎의 지용성 추출물을 얻고 생리활성을 확인하고자 하였다. 따라서 본 연구에서는 예비실험을 통해 항암 활성이 뛰어난 것으로 나타난 두충 잎의 아세톤 추출물을 대상으로 암세포 증식억제 활성을 확인하였고, 이와 함께 페놀성 화합물 함량, 유리라디칼 소거능, 환원력 및 지질과산화 억제능을 확인함으로써 두충잎의 생리활성 소재로서의 용도 확대에 기여하고자 하였다.
일반적으로 천연물의 추출 용매로 물과 에탄올이 주로 사용되고 있어 비극성 용매에서 추출되는 지용성 성분에 대한 연구는 미흡한 실정이다. 실제로 약용 식물의 지용성 추출물이 암세포의 증식을 효과적으로 억제한다는 많은 보고[19,20,21,22]가 있고, 두충잎의 경우에도 석유에테르 추출물이 in vitro에서 사람의 결장암세포(HCT-116)의 증식을 억제한다고 알려져 있어 [23], 이를 근거로 비극성 용매를 사용하여 두충잎의 지용성 추출물을 얻고 생리활성을 확인하고자 하였다. 따라서 본 연구에서는 예비실험을 통해 항암 활성이 뛰어난 것으로 나타난 두충 잎의 아세톤 추출물을 대상으로 암세포 증식억제 활성을 확인하였고, 이와 함께 페놀성 화합물 함량, 유리라디칼 소거능, 환원력 및 지질과산화 억제능을 확인함으로써 두충잎의 생리활성 소재로서의 용도 확대에 기여하고자 하였다.
제안 방법
양성대조군인 indol-3-carbinol을 농도별로 처리하여 암세포 증식억제 활성을 비교하였다. 24시간 후 실험군과 대조군의 배양액을 제거한 후 각각 CCK-8 용액과 serum-free RPMI-1640을 첨가하여 microplate reader (Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA)로 450 nm에서 흡광도를 측정하였다[20]. 암세포 증식억제 활성(%)은 (대조군의 흡광도−실험군의 흡광도)/대조군의 흡광도×100으로 계산하였다.
C에서 4시간 건조한 후 재분쇄하여 100−300μm 크기의 입자만을 시료로 사용하였다. 두충잎 분말에 10배(w/w)의 아세톤을 넣고 항온진탕조(Jeio Tech, Daejeon, Korea)를 사용하여 상온에서 2시간 동안 추출하였다. 상온에서 원심 분리(2,000×g, 5분)하여 상징액을 얻고 60oC에서 아세톤을 증발시켜 두충잎 아세톤 추출물을 제조하였다.
지질과산화 정도는 흡광도 값으로 나타내었고, 양성대조군으로 α-tocopherol을 사용하였다.
대상 데이터
Folin-Ciocalteu reagent, gallic acid, 2,2-diphenyl-1-picryl-hydrazyl (DPPH), ferric ferricyanide, α-tocopherol 및 indole-3-carbinol은 Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA) 제품을 사용하였다.
인체 비소세포폐암세포(human non-small cell lung cancer cell, A549), 결장암세포(human colon cancer cell, SNU-C4), 자궁경부암세포(human cervical cancer cell, HeLa) 및 인체 배아 폐 상피세포(human embryonic lung epithelial cell, L132)는 American Type Culture Collection (Manassa, VA, USA)의 세포주를 배양하여 사용하였다. RPMI-1640, fetal bovine serum (FBS), penicillin-streptomycin 및 trypsin-EDTA 는 HyClone (Logan, UT, USA)의 제품을, Cell Counting Kit-8 (CCK-8)은 Dojindo (Kumamoto, Japan)의 제품을 사용하였다.
두충잎 분말은 60oC에서 4시간 건조한 후 재분쇄하여 100−300μm 크기의 입자만을 시료로 사용하였다.
두충잎 분말은 그린내츄럴(Jindo, Korea)에서 구입하여 사용하였다. Folin-Ciocalteu reagent, gallic acid, 2,2-diphenyl-1-picryl-hydrazyl (DPPH), ferric ferricyanide, α-tocopherol 및 indole-3-carbinol은 Sigma-Aldrich (St.
사람의 비소세포폐암(A549), 결장암(SNU-C4) 및 자궁경부암 (HeLa) 세포를 대상으로 두충잎 아세톤 추출물의 in vitro 항암 활성을 확인하였다[21,22]. 암세포 증식억제 활성의 양성대조군으로는 항암 효과를 가진 물질인 indole-3-carbinol을 사용하였고[31], 정상세포에 대한 독성을 확인하기 위해 사람의 배아 폐상피세포(L132)를 사용하였다[21,22]. 두충잎 아세톤 추출물은 농도의 증가에 비례하여 사람의 비소세포폐암세포(A549), 결장 암세포(SNU-C4) 및 자궁경부암세포(HeLa)의 증식을 억제하였다(Fig.
Louis, MO, USA) 제품을 사용하였다. 인체 비소세포폐암세포(human non-small cell lung cancer cell, A549), 결장암세포(human colon cancer cell, SNU-C4), 자궁경부암세포(human cervical cancer cell, HeLa) 및 인체 배아 폐 상피세포(human embryonic lung epithelial cell, L132)는 American Type Culture Collection (Manassa, VA, USA)의 세포주를 배양하여 사용하였다. RPMI-1640, fetal bovine serum (FBS), penicillin-streptomycin 및 trypsin-EDTA 는 HyClone (Logan, UT, USA)의 제품을, Cell Counting Kit-8 (CCK-8)은 Dojindo (Kumamoto, Japan)의 제품을 사용하였다.
데이터처리
두충잎 아세톤 추출물을 처리한 시료에 대해 t-test를 실시하여 유의성을 검증하였다. 세 번의 반복실험을 통해 얻어진 결과를 평균±표준편차로 나타내었고, p <0.
이론/모형
두충잎 아세톤 추출물의 암세포 증식억제 활성은 CCK-8을 이용하여 측정하였다[25]. 두충잎 추출물을 에탄올에 용해한 뒤 배지에 희석하여 사용하였고, 이때 에탄올의 최종 농도가 0.
성능/효과
두충잎 아세톤 추출물은 linoleic acid의 과산화를 농도의존적으로 억제하였고(Fig. 2C), 지질과산화를 절반 저해하는 농도인 EC 50 값은 257.9 μg/mL이었다(Table 3).
암세포 증식억제 활성의 양성대조군으로는 항암 효과를 가진 물질인 indole-3-carbinol을 사용하였고[31], 정상세포에 대한 독성을 확인하기 위해 사람의 배아 폐상피세포(L132)를 사용하였다[21,22]. 두충잎 아세톤 추출물은 농도의 증가에 비례하여 사람의 비소세포폐암세포(A549), 결장 암세포(SNU-C4) 및 자궁경부암세포(HeLa)의 증식을 억제하였다(Fig. 1). 암세포의 증식을 절반 억제하는 농도인 GI50 값은 비소세포폐암세포(A549)에서 53.
두충잎 아세톤 추출물의 항산화 활성을 확인하기 위해 유리라 디칼 소거활성, 환원력 및 지질과산화 억제활성을 측정하였고, 양성대조군으로 지용성의 천연 항산화제인 α-tocopherol을 사용하였다. 두충잎 아세톤 추출물의 DPPH 유리라디칼 소거활성은 농도에 비례하여 증가하였으나(Fig. 2A), DPPH 유리라디칼을절반 소거하는 농도인 EC 50 값이 ~2 mg/mL로 높게 나타나 소거 효과가 크지 않음을 알 수 있었다(Table 3). 두충잎 아세톤 추출물의 유리라디칼 소거에 대한 EC 50 값은 양성대조군인 α-tocopherol의 EC 50 값인 85.
두충잎 아세톤 추출물의 유리라디칼 소거에 대한 EC 50 값은 양성대조군인 α-tocopherol의 EC 50 값인 85.1 μg/mL에 비해서 크게 높았고(Table 3), 다른 식물 추출물의 유리라디칼 소거에 대한 EC 50 값과 비교하여도 모시잎 에탄올 추출물의 688 μg/mL [39], 곤드레잎의 물과 메탄올 추출물의 87.1−111.19 μg/mL [40], 고구마잎 에탄올 추출물의 109−168 μg/mL [41], 유근피 아세톤 추출물의 36.7 μg/mL [22] 및 백연수잎 에탄올 추출물의 133.51 μg/mL [42]보다도 매우 높게 나타나 두충잎 아세톤 추출물의 유리라디칼에 대한 전자공여 능력은 낮은 것으로 확인되었다.
두충잎 아세톤 추출물의 지질과산화 억제에 대한 EC 50 값은 양성대조군인 α-tocopherol의 126.7 μg/mL에 비해 높았으나 역시 혼합물인 점을 고려하면 우수한 지질과산화 억제활성을 가지는 것으로 사료된다(Table 3).
두충잎 아세톤 추출물의 총 페놀성 화합물 함량은 추출물 g당 36.7±1.96 mg GAE (Table 1)로 기존에 알려진 두충잎 물 추출물의 페놀성 화합물 함량인 75.8−110 mg GAE/g에 비해서 2배 이상 낮게 나타났다[30].
두충잎 아세톤 추출물의 환원력 역시 농도의존적으로 증가하였고(Fig. 2B), 반응액의 흡광도가 0.5일 때의 농도인 EC 50 값은 275.8 μg/mL이었다(Table 3).
두충잎을 아세톤으로 추출하여 얻어진 고형분의 수율은 1.13± 0.033% (w/w)로 매우 낮게 나타났다(Table 1).
또한 12종의 중국산 약용 식물의 수용성 추출물들의 비소세포폐암세포(A549)에 대한 GI50값은 161− 1,456 μg/mL로 나타나[32], 두충잎 아세톤 추출물은 인삼의 지용성 추출물을 제외한 다른 천연 추출물들에 비해 상대적으로 우수한 in vitro 항암 활성을 가지고 있음을 보여주었다.
또한 두충잎 아세톤 추출물은 사람의 정상세포인 배아 폐 상피 세포(L132)에 대한 GI 50 값이 153.9 μg/mL로 높게 나타나(Table 2), 정상 세포에 대한 독성이 상대적으로 낮으면서도 암세포에 대한 증식억제 활성이 우수함을 보여주었다.
세 번의 반복실험을 통해 얻어진 결과를 평균±표준편차로 나타내었고, p <0.05인 경우 통계적으로 유의한 것으로 판정하였다.
암세포의 증식을 절반 억제하는 농도인 GI50 값은 비소세포폐암세포(A549)에서 53.4 μg/mL였고, 결장암세포(SNUC4)에서 53.8 μg/mL로 암세포 증식억제 효과가 매우 높았지만, 자궁경부암세포(HeLa)에 대해서는 88.3 μg/mL로 상대적으로 낮게 나타났다(Table 2).
이상의 결과에서 두충잎의 아세톤 추출물은 사람의 비소세포 폐암세포 및 결장암세포에 대한 뛰어난 증식억제 활성을 나타내었고, 환원력과 지질과산화 억제 능력이 우수하여 항암 및 항산화 소재로서의 활용가능성을 보여주었다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
천연물의 추출 용매로 물과 에탄올을 사용할 때 추출되기 어려운 것은?
일반적으로 천연물의 추출 용매로 물과 에탄올이 주로 사용되고 있어 비극성 용매에서 추출되는 지용성 성분에 대한 연구는 미흡한 실정이다. 실제로 약용 식물의 지용성 추출물이 암세포의 증식을 효과적으로 억제한다는 많은 보고[19,20,21,22]가 있고, 두충잎의 경우에도 석유에테르 추출물이 in vitro에서 사람의 결장암세포(HCT-116)의 증식을 억제한다고 알려져 있어 [23], 이를 근거로 비극성 용매를 사용하여 두충잎의 지용성 추출물을 얻고 생리활성을 확인하고자 하였다. 따라서 본 연구에서는 예비실험을 통해 항암 활성이 뛰어난 것으로 나타난 두충 잎의 아세톤 추출물을 대상으로 암세포 증식억제 활성을 확인하였고, 이와 함께 페놀성 화합물 함량, 유리라디칼 소거능, 환원력 및 지질과산화 억제능을 확인함으로써 두충잎의 생리활성 소재로서의 용도 확대에 기여하고자 하였다.
두충잎에 함유된 페놀성 화합물은 무엇인가?
특히 두충잎은 껍질, 꽃, 열매에 비해 강한 항산화 활성을 가지고 있으며[14], 두충잎의 rutin, chlorogenic acid, ferulic acid 등의 페놀성 화합물이 항산화 활성을 나타내는 주요 물질로 보고되었다[5]. 두충잎 물 추출물은 껍질에 비해 우수한 지질과산화 억제 활성을 가지고 있었고[15], 또한 제2형 당뇨병을 유발한 쥐에서 적혈구의 superoxide dismutase, catalase 및 glutathione peroxidase의 활성을 촉진함으로써 과산화수소와 지질과산화물의 수준을 낮추는 항산화 활성을 나타내었다[16].
두충이란 무엇인가?
두충(Du-zhong, Eucommia ulmoides Oliver)은 잎, 껍질, 줄기 및 열매의 뛰어난 약리 활성으로 인해 우리나라를 비롯한 동아시아 전역에서 널리 사용되어 온 생약재이다[1]. 두충에는 bisepoxylignan, monoepoxylignan 등의 리그닌 성분과 iridoid, 다당체, 스테로이드, 테르페노이드 등이 함유되어 있으며, 중요한 생리활성 성분으로는 quercetin, rutin, astragalin, geniposidic acid 등이 알려져 있다[2,3,4].
Kwan CY, Chen CX, Deyama T, Nishibe S (2003) Endotheliumdependent vasorelaxant effects of the aqueous extracts of the Eucommia ulmoides Oliv. leaf and bark: implications on their antihypertensive action. Vascul Pharmacol 40: 229-235
Hong YK, Liu WJ, Li T, She SY (2013) Optimization of extraction of Eucommia ulmoides polysaccharides by response surface methodology. Carbohydr Polym 92: 1761-1766
He X, Wang J, Li M, Hao D, Yang Y, Zhang C, He R, Tao R (2014) Eucommia ulmoides Oliv.: ethnopharmacology, phytochemistry, and pharmacology of an important traditional Chinese medicine. J Ethnopharmacol 151: 78-92
Hussain T, Tan B, Oladele OA, Rahu N, Tossou MC, Yin Y (2016) Health-promoting properties of Eucommia ulmoides: a review. Evid Based Complement Alternat Med 2016: 5202908
Kulomaa A, Siren H, Riekkola ML (1997) Identification of antioxidative compounds in plant beverages by capillary electrophoresis with the marker index technique. J Chromatogr A 781: 523-532
Greenway F, Liu Z, Yu Y, Gupta A (2011) A clinical trial testing the safety and efficacy of a standardized Eucommia ulmoides Oliver bark extract to treat hypertension. Altern Med Rev 16: 338-347
Choi MS, Jung UJ, Kim HJ, Do GM, Jeon SM, Kim MJ, Lee MK (2008) Du-zhong (Eucommia ulmoides Oliver) leaf extract mediates hypolipidemic action in hamsters fed a high-fat diet. Am J Chin Med 36: 81-93
Hirata T, Kobayashi T, Wada A, Ueda T, Fujikawa T, Miyashita H, Ikeda T, Tsukamoto S, Nohara T (2011) Anti-obesity compounds in green leaves of Eucommia ulmoides. Bioorg Med Chem Lett 21: 1786-1791
Zhang R, Liu ZG, Li C, Hu SJ, Liu L, Wang JP, Mei QB (2009) Du-Zhong (Eucommia ulmoides Oliv.) cortex extract prevent OVX-induced osteoporosis in rats. Bone 45: 553-559
Kim BH, Park KS, Chang IM (2009) Elucidation of anti-inflammatory potencies of Eucommia ulmoides bark and Plantago asiatica seeds. J Med Food 12: 764-769
Kwon SH, Lee HK, Kim JA, Hong SI, Kim SY, Jo TH, Park YI, Lee CK, Kim YB, Lee SY, Jang CG (2011) Neuroprotective effects of Eucommia ulmoides Oliv. Bark on amyloid beta(25-35)-induced learning and memory impairments in mice. Neurosci Lett 487: 123-127
Jin CF, Li B, Lin SM, Yadav RK, Kim HR, Chae HJ (2013) Mechanism of the inhibitory effects of Eucommia ulmoides Oliv. cortex extracts (EUCE) in the $CCl_{4}$ -induced acute liver lipid accumulation in rats. Int J Endocrinol 2013: 751854
Zhang Q, Su YQ, Yang FX, Peng JN, Li XH, Sun RC (2007) Antioxidative activity of water extracts from leaf, male flower, raw cortex and fruit of Eucommia ulmoides Oliv. Forest Products J 57: 74-78
Yen GC, Hsieh CL (1998) Antioxidant activity of extracts from Duzhong (Eucommia ulmoides) toward various lipid peroxidation models in vitro. J Agric Food Chem 46: 3952-3957
Park SA, Choi MS, Jung UJ, Kim MJ, Kim DJ, Park HM, Park YB, Lee MK (2006) Eucommia ulmoides Oliver leaf extract increases endogenous antioxidant activity in type 2 diabetic mice. J Med Food 9: 474-479
Xu Z, Tang M, Li Y, Liu F, Li X, Dai R (2010) Antioxidant properties of Du-zhong (Eucommia ulmoides Oliv.) extracts and their effects on color stability and lipid oxidation of raw pork patties. J Agric Food Chem 58: 7289-7296
Yang SJ, Cho SH, Cho SI, Na WM (2007) Anti-proliferative effect of Ulmi pumilae cortex extracts on MCF-7 cells. J Orient Obstet Gynecol 20: 35-44
Lee SD, Yoo G, Chae HJ, In MJ, Oh NS, Hwang YK, Hwang WI, Kim DC (2009) Lipid-soluble extracts as the main source of anticancer activity in ginseng and ginseng marc. J Am Oil Chem Soc 86: 1065-1071
Kim JB, Park JR, Jeon JR, Cha MH (2001) Isolation and identification of anticancer compounds from Eucommia ulmoides leaves. J Korean Soc Food Sci Nutr 30: 732-738
Folin O, Denis W (1912) On phosphotungstic-phosphomolybdic compounds as color reagents. J Biol Chem 12: 239-243
Itano N, Atsumi F, Sawai T, Yamada Y, Miyaishi O, Senga T, Hamaguchi M, Kimata K (2002) Abnormal accumulation of hyaluronan matrix diminishes contact inhibition of cell growth and promotes cell migration. Proc Natl Acad Sci USA 99: 3609-3614
Oyaizu M (1985) Studies on products of browning reaction: antioxidant activities of products of browning reaction prepared from glucosamine. Jap J Nutr 44: 307-315
Nakatani N, Kikuzaki H (1987) A new antioxidative glucoside isolated from oregano (Origanum vulgare L.). Agric Biol Chem 51: 2727-2732
Choi KJ, Kim MW, Hong SK, Kim DH (1983) Effect of solvents on the yield, brown color intensity, UV absorbance, reducing and antioxidant activities of extracts from white and red ginseng. J Korean Agric Chem Soc 26: 8-18
Zhang Q, Su Y, Zhang J (2013) Seasonal difference in antioxidant capacity and active compounds contents of Eucommia ulmoides Oliver leaf. Molecules 18: 1857-1868
Shoemaker M, Hamilton B, Dairkee SH, Cohen I, Campbell MJ (2005) In vitro anticancer activity of twelve Chinese medicinal herbs. Phytother Res 19: 649-651
Lamoral-Theys D, Pottier L, Dufrasne F, Neve J, Dubois J, Kornienko A, Kiss R, Ingrassia L (2010) Natural polyphenols that display anticancer properties through inhibition of kinase activity. Curr Med Chem 17: 812-825
Lee YM, Bae JH, Jung HY, Kim JH, Park DS, Jung HY (2011) Antioxidant activity in water and methanol extracts from Korean edible wild plants. J Korean Soc Food Sci Nutr 40: 29-36
Li M, Jeong HS, Kim HS, Jang GY, Woo KS, Lee SH, Lee J, Sin HM (2012) Chemical compositions and antioxidant activities of leaves and stalks from different sweet potato cultivars. J Korean Soc Food Sci Nutr 41: 1656-1662
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.