LPS로 유도된 Raw 264.7 cell에서 Lactobacillus plantarum 발효가 층꽃나무(Caryopteris incana) 에탄올 추출물의 염증반응에 미치는 영향 Anti-inflammatory effect potentials of ethanol extracts from fermentated Caryopteris incana by Lactobacillus plantarum on induced to LPS with Raw 264.7 cell원문보기
본 연구에서는 층꽃나무와 L. plantarum으로 발효한 층꽃나무를 각각 80% ethanol로 추출하여 추출물들이 LPS로 유도된 Raw 264.7 cell의 염증반응에 미치는 영향을 비교 검증하여 항염증 소재 개발 가능성을 검토하였다. HPLC를 이용하여 L. plantarum에 의한 층꽃나무 발효 추출물의 유용성분 변화를 확인한 결과, 발효를 통해 유용성분의 profile 변화가 있는 것을 확인할 수 있었다. Raw 264.7 cell에서 세포 독성을 측정하기 위해 MTT assay를 실시한 결과, 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 5, 10, $15{\mu}g/mL$의 농도에서 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 경우 10, 20, 30, $40{\mu}g/mL$의 농도에서 90.0% 이상의 세포 생존율을 나타내었다. 항염증 효능을 검정하기 위해 iNOS 단백질 발현량, COX-2 단백질 발현량, NO 생성, $PGE_2$ 생성, pro-inflammatory cytokine 발현량을 측정하였다. NO 생합성 효소인 iNOS 단백질의 발현량을 측정한 결과, 층꽃나무와 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 각각 15, $40{\mu}g/mL$의 농도에서 약 50.0% 가까운 발현 억제 효과를 나타내었으며, 농도 의존적으로 감소하는 것을 확인할 수 있었다. $PGE_2$ 생합성 효소인 COX-2 단백질의 발현량을 측정한 결과, 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 $15{\mu}g/mL$ 농도에서 50.0%, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 $40{\mu}g/mL$ 농도에서 83.0%의 발현 억제 효과를 보여주었다. NO 생성 억제 효과를 측정한 결과 층꽃나무 80% ethanal 추출물은 $15{\mu}g/mL$ 농도에서 62.0%, 발효 층꽃나무는 $40{\mu}g/mL$ 농도에서 81.0%로 control군과 비교하였을 때 NO 생성이 크게 억제되었다. $PGE_2$ 생성 억제 효과를 측정한 결과, 층꽃나무와 발효 층꽃나무 80% ethanal 추출물은 각각 15, $30{\mu}g/mL$의 농도에서 약 70.0%의 발현 억제 효과를 나타내었다. 또한, pro-inflammatory cytokine의 경우, 층꽃나무 80% ethanol 추출물 $15{\mu}g/mL$ 농도에서 $TNF-{\alpha}$는 43.6%, IL-6는 64.3%, $IL-1{\beta}$는 58.7%의 저해율을 나타냈으며, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물 $40{\mu}g/mL$ 농도에서 $TNF-{\alpha}$는 75.4%, IL-6는 64.3%, $IL-1{\beta}$는 37.7%의 발현 억제 효과를 나타내었다. 이상의 결과를 통해 층꽃나무는 매우 우수한 항염증 효과를 나타내는 소재임을 확인할 수 있었으며, L. plantarum균을 이용한 발효를 통해 층꽃나무가 가진 세포 독성을 낮추어 안전성하고 우수한 효능을 가진 새로운 항염증제로 개발 가능한 소재로 활용될 수 있을 것으로 기대되었다.
본 연구에서는 층꽃나무와 L. plantarum으로 발효한 층꽃나무를 각각 80% ethanol로 추출하여 추출물들이 LPS로 유도된 Raw 264.7 cell의 염증반응에 미치는 영향을 비교 검증하여 항염증 소재 개발 가능성을 검토하였다. HPLC를 이용하여 L. plantarum에 의한 층꽃나무 발효 추출물의 유용성분 변화를 확인한 결과, 발효를 통해 유용성분의 profile 변화가 있는 것을 확인할 수 있었다. Raw 264.7 cell에서 세포 독성을 측정하기 위해 MTT assay를 실시한 결과, 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 5, 10, $15{\mu}g/mL$의 농도에서 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 경우 10, 20, 30, $40{\mu}g/mL$의 농도에서 90.0% 이상의 세포 생존율을 나타내었다. 항염증 효능을 검정하기 위해 iNOS 단백질 발현량, COX-2 단백질 발현량, NO 생성, $PGE_2$ 생성, pro-inflammatory cytokine 발현량을 측정하였다. NO 생합성 효소인 iNOS 단백질의 발현량을 측정한 결과, 층꽃나무와 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 각각 15, $40{\mu}g/mL$의 농도에서 약 50.0% 가까운 발현 억제 효과를 나타내었으며, 농도 의존적으로 감소하는 것을 확인할 수 있었다. $PGE_2$ 생합성 효소인 COX-2 단백질의 발현량을 측정한 결과, 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 $15{\mu}g/mL$ 농도에서 50.0%, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 $40{\mu}g/mL$ 농도에서 83.0%의 발현 억제 효과를 보여주었다. NO 생성 억제 효과를 측정한 결과 층꽃나무 80% ethanal 추출물은 $15{\mu}g/mL$ 농도에서 62.0%, 발효 층꽃나무는 $40{\mu}g/mL$ 농도에서 81.0%로 control군과 비교하였을 때 NO 생성이 크게 억제되었다. $PGE_2$ 생성 억제 효과를 측정한 결과, 층꽃나무와 발효 층꽃나무 80% ethanal 추출물은 각각 15, $30{\mu}g/mL$의 농도에서 약 70.0%의 발현 억제 효과를 나타내었다. 또한, pro-inflammatory cytokine의 경우, 층꽃나무 80% ethanol 추출물 $15{\mu}g/mL$ 농도에서 $TNF-{\alpha}$는 43.6%, IL-6는 64.3%, $IL-1{\beta}$는 58.7%의 저해율을 나타냈으며, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물 $40{\mu}g/mL$ 농도에서 $TNF-{\alpha}$는 75.4%, IL-6는 64.3%, $IL-1{\beta}$는 37.7%의 발현 억제 효과를 나타내었다. 이상의 결과를 통해 층꽃나무는 매우 우수한 항염증 효과를 나타내는 소재임을 확인할 수 있었으며, L. plantarum균을 이용한 발효를 통해 층꽃나무가 가진 세포 독성을 낮추어 안전성하고 우수한 효능을 가진 새로운 항염증제로 개발 가능한 소재로 활용될 수 있을 것으로 기대되었다.
In this study, the inflammation of ethanol extracts from Caryopteris incana (CI) and fermented C. incana (FCI) on induced to lipopolysaccharide with Raw 264.7 cell was tested. The composition profile of L. plantarum was changed by fermentation, and confirmed by HPLC analysis. We performed the 3-[4,5...
In this study, the inflammation of ethanol extracts from Caryopteris incana (CI) and fermented C. incana (FCI) on induced to lipopolysaccharide with Raw 264.7 cell was tested. The composition profile of L. plantarum was changed by fermentation, and confirmed by HPLC analysis. We performed the 3-[4,5-dimethylthiazol]-2-yl]-2,5-diphenyltetrazolium bromide assay to evaluate the toxicity of CI and FCI extracts. In cell viability, cell toxicity was not shown at 5, 10 and $15{\mu}g/mL$ of CI extracts and 10, 20, 30 and $40{\mu}g/mL$ of FCI extracts. The results of inducible nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 protein production were confirmed to be inhibitory in a concentration-dependent manner, respectively. Additionally, protein expression of nitric oxide and prostaglandin $E_2$ by CI and FCI extracts were also inhibited in a concentration-dependent manner. In the result of pro-inflammatory cytokine, $15{\mu}g/mL$ concentration of CI extracts was showed tumar necrosis factor $(TNF)-{\alpha}$ (57.3%), interleukin (IL)-6 (35.2%), and $IL-1{\beta}$ (48.0%), respectively. And $40{\mu}g/mL$ of FCI extracts was showed $TNF-{\alpha}$ (34.6%), IL-6 (32.1%), and $IL-1{\beta}$ (30.0%), respectively. These results suggest that FCI extracts showed better effect of anti-inflammatory than CI extracts. Therefore, it was found that both CI and FCI can be used as an excellent material for the development of new anti-inflammatory resource.
In this study, the inflammation of ethanol extracts from Caryopteris incana (CI) and fermented C. incana (FCI) on induced to lipopolysaccharide with Raw 264.7 cell was tested. The composition profile of L. plantarum was changed by fermentation, and confirmed by HPLC analysis. We performed the 3-[4,5-dimethylthiazol]-2-yl]-2,5-diphenyltetrazolium bromide assay to evaluate the toxicity of CI and FCI extracts. In cell viability, cell toxicity was not shown at 5, 10 and $15{\mu}g/mL$ of CI extracts and 10, 20, 30 and $40{\mu}g/mL$ of FCI extracts. The results of inducible nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 protein production were confirmed to be inhibitory in a concentration-dependent manner, respectively. Additionally, protein expression of nitric oxide and prostaglandin $E_2$ by CI and FCI extracts were also inhibited in a concentration-dependent manner. In the result of pro-inflammatory cytokine, $15{\mu}g/mL$ concentration of CI extracts was showed tumar necrosis factor $(TNF)-{\alpha}$ (57.3%), interleukin (IL)-6 (35.2%), and $IL-1{\beta}$ (48.0%), respectively. And $40{\mu}g/mL$ of FCI extracts was showed $TNF-{\alpha}$ (34.6%), IL-6 (32.1%), and $IL-1{\beta}$ (30.0%), respectively. These results suggest that FCI extracts showed better effect of anti-inflammatory than CI extracts. Therefore, it was found that both CI and FCI can be used as an excellent material for the development of new anti-inflammatory resource.
본 연구에서는 자연계에서 가장 넓게 분포하는 것으로 알려진 젖산균의 일종인 Lactobacillus plantarum을 이용하여 발효한 층꽃나무의 추출물을 이용하여 LPS를 처리해 염증반응을 유도한 Raw 264.7 cell에서의 항염증 효능의 변화를 확인하고자 하였다. 이를 위해 추출물이 염증반응에 관여하는 NO 및 PGE2 생성량과 iNOS 및 COX-2 단백질 발현 억제 정도를 확인하고, 더 나아가 pro-inflammatory cytokine 발현 정도에 미치는 영향을 비교 조사하여 층꽃나무가 생산하는 천연물에 의한 항염증 소재 개발의 가능성을 확인하여 산업화 이용을 위한 기초 자료로 활용하고자 하였다.
7 cell에서의 항염증 효능의 변화를 확인하고자 하였다. 이를 위해 추출물이 염증반응에 관여하는 NO 및 PGE2 생성량과 iNOS 및 COX-2 단백질 발현 억제 정도를 확인하고, 더 나아가 pro-inflammatory cytokine 발현 정도에 미치는 영향을 비교 조사하여 층꽃나무가 생산하는 천연물에 의한 항염증 소재 개발의 가능성을 확인하여 산업화 이용을 위한 기초 자료로 활용하고자 하였다.
제안 방법
7%를 나타내었으며, 이를 통해 발효가 추출물의 독성을 낮춰주는 것을 확인할 수 있었다. 이상의 결과에 따라 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 경우, 세포의 생존율에 영향을 미치지 않는 것으로 판단되는 10, 20, 30, 40 μg/mL의 농도에서 이후 실험을 진행하였으며 발효에 의해 항염증 효과의 변화가 나타나는지 확인하고자 하였다.
대상 데이터
Murine 유래의 macrophage cell line인 Raw 264.7 cells은 한국세포주은행(Korean Cell Line Research Foundation, Seoul, Korea)에서 구입하였으며, DMEM에 10% FBS와 1% penicillin/streptomycine을 혼합한 배지를 사용하여 5% CO2 incubator에서 37 ℃의 조건으로 배양하였다.
본 실험에서 사용한 L. plantarum은 가자미식해에서 분리한 균으로 경북대학교 식품공학부에서 보관중인 균주를 사용하였다. 균주의 보존은 균 배양액으로 12% glycerol (Junsei Chemical)이 되도록 조성하여 −70℃ deep freezer에서 보관하며 사용하였다.
실험에서 사용된 층꽃나무(C. incana)는 경기도 파주 소재의 농장에서 판매되는 원물을 구입하여 사용하였고, 전초를 50℃ dry oven (Jeiotech, Daejeon, Korea)에서 건조시킨 후, 40mesh로 분쇄하여 일정한 입자로 분리한 다음 진공 포장하여 4℃에서 저온 저장하며 시료로 사용하였다.
데이터처리
모든 실험은 3회 반복 측정하였고 자료의 통계처리는 SPSS 23 for windows (Statistical Package for Social Science, Chicago, IL, USA)를 이용하여 평균 ± 표준편차(mean ± standard deviation)로 표시하였으며, 분산분석(ANOVA)과 Duncan의 다중범위검정 (Duncan’s multiple range test)을 실시하여 시료간의 유의차를 p <0.05 수준으로 비교 분석하였다.
이론/모형
NO 생성량을 측정하기 위해 supernatant에 안정한 형태로 존재하는 nitrite (NO2−)로서 환원시켜 griess reagent system을 이용하였다[22]. 96 well plate에 well 당 5×104개의 cell을 5% CO2 incubator에서 37℃로 24시간 배양한 다음, 자극제로 LPS 10 μg/mL를 처리하였다.
세포 독성 측정은 Carmichael 등[21]의 방법에 준하여 측정하였다. Raw 264.
층꽃나무와 발효층꽃나무의 총 페놀 함량 측정은 Folin과 Denis의 방법[20]에 준하여 측정하였으며, 시료 추출물 1 mL에 95% ethanol 1 mL와 증류수 5 mL를 첨가하고 1 N Folin-Ciocalteureagent 0.5 mL를 넣어 잘 섞어주고 5분간 방치한 후 반응 종료시약으로 5% Na2CO3 1 mL를 첨가하고 잘 혼합하여 1시간 동안 암실에서 방치한 후 UV-Vis spectrophotometer를 사용하여 725 nm에서 흡광도를 측정하였다. 총 페놀 함량은 표준물질로 gallic acid (Sigma)를 이용한 표준곡선을 통해 함량을 환산하였다.
성능/효과
0%의 NO 생성 저해율을 나타내어 미생물 발효가 생리활성 변화에 좋은 영향을 미치는 것으로 한단되었다. 이상의 결과를 통해 층꽃나무 및 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 NO 생성 억제 효과가 매우 우수함을 알 수 있을 뿐만 아니라 발효를 통해 층꽃나무가 지닌 세포 독성을 감소시키고, 이를 통해 안전성이 확보된 유용성분의 함량을 더 증가시켜 사용할 수 있게 되어 NO 생성 억제 효과를 향상시키는 것으로 간주할 수 있었다.
로 변환된다[31]. PGE2의 생성량을 측정한 결과는 Figs. 4C, D와 같이 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 15 μg/mL 농도에서, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물은 30 μg/mL 농도에서 각각 약 70.0% 수준의 발현을 억제하여 normal군과 유사한 수준의 효과를 나타내었다. Lee 등[32]은 적하수오 ethanol 추출물이 100 μg/mL의 높은 농도에서 70.
5A, B). 또한 IL-6 생성 억제 효과는 층꽃나무 80% ethanol 추출물 15 μg/mL 농도에서 64.3%, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물 40 μg/mL 농도에서 67.7%의 저해율을 나타내었으며(Figs. 5C, D), IL-1β 생성 억제 효과는 각각 층꽃나무 80% ethanol 추출물 15 μg/mL 농도에서 58.7%, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물 40 μg/mL 농도에서 64.6%의 저해율을 나타내었다(Figs. 5E, F). Yang 등[38]의 S.
0%의 IL-1β 발현 억제 효과를 보고한 연구와 비교하였을 때, 층꽃나무 뿐만 아니라 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 pro-inflammatory cytokine 억제 효과가 매우 우수하다는 것을 확인할 수 있었다. 본 연구 결과를 통해 층꽃나무 ethanol 추출물에 염증을 매개하는 단백질 및 cytokine의 발현을 저해시키는 우수한 유용성분이 함유되어 있음을 알 수 있었다. 또한 L.
또한 IL-1β도 세균감염에 대한 염증성 응답의 개시 및 강화에 중요한 역할을 하며 저농도에서 세포성장과 항상성 유지에 필수적인 cytokine이지만, 대량 생산될 경우 T-cell을 활성화 시키고 B-cell을 성숙시켜 염증성 질환을 악화시키게 된다[37]. 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 pro-inflammatory cytokine의 생성 억제 효과를 확인하기 위해 먼저 TNF-α 생성 억제 효과를 측정한 결과는 각각 층꽃나무 80% ethanol 추출물 15 μg/mL 농도에서 43.6%, 발효 층꽃나무 80% ethanol 추출물 40 μg/mL 농도에서 75.4%의 저해율을 나타내었다(Figs. 5A, B). 또한 IL-6 생성 억제 효과는 층꽃나무 80% ethanol 추출물 15 μg/mL 농도에서 64.
후속연구
특히 COX-2의 경우, 발효를 통해 층꽃나무 80% ethanol 추출물의 세포독성을 일부 감소시켜 독성이 낮아진 안전한 추출물을 높은 농도로 처리할 수 있게 되었으며, 안전한 유용성분의 함량 증대로 인해 COX-2 단백질 발현의 저해 효과도 증폭될 수 있음을 알 수 있었다. 따라서 발효한 층꽃나무 추출물이 층꽃나무 추출물 보다 훨씬 안전하고 우수한 면역 증진 소재로 유용하게 활용될 수 있을 것으로 기대되었다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
염증반응은 인체에서 어떤 효과가 있는가?
염증반응은 외부 자극에 대한 생체조직의 방어 반응으로써 정상적인 상태에서는 항원항체 반응을 통해 질병을 일으키는 항원을 제거 하지만, 비정상적인 상태의 만성염증반응의 경우, 특정한 조직을 손상시키고 아토피, 관절염, 건선 등과 같은 각종 질환을 유발한다[1]. 면역체계에서 대식세포(macrophage)는 활성산소, stress 등과 같은 여러 가지 자극에 의해 발현되는 염증반응을 억제하여 면역기능을 조절하고 체내 항상성 유지에 매우 중요한 역할을 한다[2].
층꽃나무의 전초에 함유된 성분은?
전초 또는 뿌리를 약용하며, 생약명은 난향초(蘭香草)라 한다. 층꽃나무의 전초에는 flavonoid 배당체와 phenol류, alkaloid, steroid, amino acid, 유기산, tannin을 함유하고 있으며[10,11,12], 수렴작용, 기침, 가래, 기관지염, 신경통, 종기, 월경불순, 어혈, 타박상, 습진, 피부, 가려움증 치료에 쓰이고 Staphylococcus aureus, Corynebacterium diphtheriae에 대한 항균작용이 있는 것으로 알려져 있다[13].
층꽃나무(Caryopteris incana)의 외관적 특징은?
층꽃나무(Caryopteris incana)는 다년초로 한국, 중국, 타이완, 일본에 걸쳐 널리 분포하고 있으며 한국에서는 주로 산과 들에 서식한다. 30-60 cm 높이의 줄기는 곧추서고 기부가 목질이며, 화서는 층층으로 배열되고, 검은색을 띠는 열매는 9-10월에 열린다[9]. 전초 또는 뿌리를 약용하며, 생약명은 난향초(蘭香草)라 한다.
참고문헌 (39)
Choi SY, Lee HR (1976) Host preference by the small brown planth opper and green rice leafhopper on barley and water foxtail. Kor J Pl Prot 15: 179-181
Higuchi M, Higashi N, Taki H, Osawa T (1990) Cytolytic mechanisms of activated macrophages. Tumar necrosis factor and L-argininedependent mechanisms acts synergistically as the major cytolytic mechanisms of activated macrophages. J Immunol 144: 1434-1441
Chow JC, Young DW, Golenbock DT, Christ WJ, Gusovsky F (1999) Toll-like receptor-4 mediates lipopolysaccharide-induced signal transduction. J Biol Chem 274: 10689-10692
Yang F, Tang E, Guan K, Wang CY (2003) IKK ${\beta}$ plays an essential role in the phosphorylation of RelA/p65 on serine 536 induced by lipopolysaccharide. J Immunol 170: 5630-5635
Surh YJ, Chun KS, Cha HH, Keum YS, Park KK, Lee SS (2001) Molecular mechanisms underlying chemopreventive activities of antiinfammatory phytochemicals: down-regulation of COX-2 and iNOS through suppression of $NF-{\kappa}B$ activation. Mutat Res 480: 243-268
Lee TB (2003) Coloured flora of korea. Vol. 2. Hyangmunsa, Seoul, Korea. pp 112-119
Chang KC, Lee DU (2000) Vasodilatory effect of the alkaloid component from the roots of Cynanchum wilfordi Hemsley. Korean J Life Sci 10: 584-590
Bae MJ, Ye EJ (2007) Effect of mycelia extracts from Lentinus edodes musfroom-cultured Lonicera japonica thunbergs on anticancer and antiallergy activities. J Korean Soc Food Sci Nutr 36: 424-430
Lee SC, Kim SY, Choi SJ, Lee IS, Jung MY, Yang SM, Chae HJ (2010) Effect of soaking and heat treatment conditions on physicochemical and organoleptic quality of lotus root. Korean J Food Sci Technol 42: 45-49
Yoshikawa K, Harada A, Iseki K, Hashimoto T (2014) Constituents of Caryopteris incana and their antibacterial activity. J Nat Med 68: 231-235
Yang HJ, Joo HA, Baek SC, Park JS, Hong SH (2011) Antiinflammatory effects of hwangnyeonhaedok-tang and fermented hwangnyeonhaedok-tang. J Korean Med Ophthalmol Otolaryngol Dermatol 24: 1-15
Doh ES, Chang JP, Kil KJ, Choi MS, Yang JK, Yun CW, Jeong SM, Jung YH, Lee GH (2011) Antioxidative activity and cytotoxicity of fermented Allium victorialis L. extract. Korean J Plant Res 24: 30-39
Park MR, Yoo C, Chang YN, Ahn BY (2012) Changes of total polyphenol content of fermented Gastrodia elata blume and radical scavenging. Korean J Plant Res 25: 379-386
Park HJ, Jung DH, Joo HM, Kang NS, Jang SA, Lee JG, Sohn EH (2010) The comparative study of anti-allergic and anti-inflammatory effects by fermented red ginseng and red ginseng. Korean J. Plant Res 23: 415-422
Lim HW, Lee YJ, Huang YH, Yoon JY, Lee SH, Kim KH, Lim CJ (2017) Enhancement of skin antioxidant and anti-inflammatory potentials of Agastache rugosa leaf extract by probiotic bacterial fermentation in human epidermal keratinocytes. Microbiol Biotechnol Lett 45: 35-42
Folin O, Denis W (1912) On phosphotungstic-phosphomolybdic compounds as color reagents. J Biol Chem 12: 239-249
Carmichael J, DeGraff WG, Gazder AF, Minna JD, Mitchell JB (1987) Evalution of a tetrazolium based semiautomated colorimetric assay: assessment of chemosensitivity testing. Cancer Res 47: 936-942
Ryu JH, Ahn H, Kim JY, Kim YK (2003) Inhibitory activity of plant extracts on nitric oxide synthesis in LPS-activated macrophage. Phytother Res 17: 485-489
Kim SH (2005) Effect of the aqueous extracts of Pogostemi Herba on Nitric oxide synthesis and activation of cytokine in macrophage. Dissertation, Ajou University
Weng SX, Sui MH, Chen S, Wang JA, Xu G, Ma J, Shan J, Fang L (2009) Parthenolide inhibits proliferation of vascular smooth muscle cells through induction of $G_{0}/G_{1}$ phase cell cycle arrest. J Zhejiang Univ Sci B 10: 528-535
Stachowska E, Dolegowska B, Dziedziejko V, Rybicka M, Kaczmarczyk M, Bober J, Rac M, Machalinski B, Chlubek D (2009) Prostaglandin $E_{2}$ ( $PGE_{2}$ ) and $thromboxaneA_{2}$ ( $TXA_{2}$ ) synthesis is regulated by conjugated linoleicacids (CLA) in human macrophages. J Physiol Pharmacol 60: 77-85
Yu Y, Fan JJ, Hui Y, Rouzer CA, Marnett LJ, Klein-Szanto AJ, FitzGerald GA, Funk CD (2007) Targeted cyclooxygenase gene (Ptgs) exchange reveals discriminant isoform functionality. J Biol Chem 282: 1498-1506
Lee SJ, Lee DG, Kim MH, Kong CS, Yu KH, Kim YY, Lee SH (2016) Enhancement of anti-inflammatory activity by fermented of Sargassum siliquanstrum. J Life Sci 26: 318-324
Kwon MS, Mum OJ, Bae MJ, Lee SG, Kim MH, Lee SH, Yu KH, Kim YY, Kong CS (2015) Anti-inflammatory activity of ethanol extracts from Hizikia fusiformis fermented with lactic acid bacteria in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. J Korean Soc Food Sci Nutr 44: 1450-1457
Cho YJ, Ahn BJ (2008) Anti-inflammatory effect of extracts from Cheongmoknosang (Morus alba L.) in lipopolysaccharide stimulated Raw cells. J Korean Soc Appl Biol Chem 51: 44-48
Jung JE, Cho EJ (2011) Enhancement of anti-inlammatory effect of Zizyphus jujuba var. intermis fruits by fermentation. Cancer Prev Res 14: 57-62
Kim KB, Lee EG, Chai OH, Song CH, Jeong JM (2007) Inhibitory effects of Phyto-extracts mixture (PEM381) on type allergic reaction. J Korean Soc Food Nutr 36: 155-162
Lee ES, Kim HJ, Yu JM, Cho YH, Kim DI, Cho YJ, An BJ (2014) Antiinflammatory effect of Polygonum multiflorum extraction in activated RAW 264.7 cells with lipopolysaccharide. Korean J Food Preserv 21: 740-746
Tak HM, Kang MJ, Kim KM, Kang DW, Han SY, Shin JH (2014) Antiinflammatory activities of fermented black garlic. J Korean Soc Food Sci Nutr 43: 1527-1534
Park SG, Jeal KH, Jung JY, Back YD, Byun SH, Kim YW, Cho IJ, Park SM, Kim SC (2014) Leonuri fructus ameliorates acute inflammation via the inhibition of $NF-{\kappa}B$ -mediated nitric oxide and pro-inflammatory cytokine production. Korean J Orient Physol Pathol 28: 178-185
Dinarello CA (1999) Cytokines as endogenous pyrogens. J Infect Dis 179: 294-304
Delgado AV, McManus AT, Chambers JP (2003) Production of tumor necrosis factor- ${\alpha}$ , interleukin 1- ${\beta}$ , interleukin 2 and interleukin 6 by rat leukocyte subpopulations after exposure to substance. P neuropeptides 37: 355-361
Yang HJ, Han HS, Lee YJ (2013) Effect of fermented scutellariae radix extract on production of inflammatory mediator in LPS-stimulated mouse macrophges. Kor J Herbology 28: 45-52
Han MH, Lee MH, Hong SH, Choi YH, Moon JS, Song MK, Kim MJ, Shin SJ, Hwang HJ (2014) Comparison of anti-inflammatory activities among ethanol extracts of Sophora flavescens, Glycyrrhiza uralensis and Dictamnus dasycarpus and their mixture in RAW 264.7 murine macrophages. J Life Sci 24: 329-335
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.