[논문]식용 빅벨리 해마(Hippocampus abdominalis) 유래 단백질 가수분해물의 항산화와 항고혈압 효능

제준건; 김현수; 이효근; 오재영; 노섬; 전유진

doi:10.5657/kfas.2019.0127

식용 빅벨리 해마(Hippocampus abdominalis) 유래 단백질 가수분해물의 항산화와 항고혈압 효능
Antioxidant and Antihypertension Effects of Enzyme Hydrolysate from Hippocampus abdominalis 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.52 no.2, 2019년, pp.127 - 133

제준건 (제주대학교 해양생명과학과) , 김현수 (제주대학교 해양생명과학과) , 이효근 (제주대학교 해양생명과학과) , 오재영 (제주대학교 해양생명과학과) , (제주대학교 해양생명과학과) , 노섬 ((주)해천마) , 전유진 (제주대학교 해양생명과학과)

Abstract ▼ AI-Helper

Seahorses have long been used as ornamental and medicinal products. The sea horse Hippocampus abdominalis has a beautiful color and unique shape and is also used for ornamental purposes and as a traditional medicine in China. This study examined the value of H. abdominalis as a health functional food or food additive. H. abdominalis was hydrolyzed using seven proteases: flavourzyme, neutrase, alcalase, trypsin, kojizyme, pepsin and protamex. The yields of all of the enzyme hydrolysates were higher than that of the aqueous extract. Of the enzymatic hydrolysates, seahorse Protamex hydrolysate (SHP) gave the highest yield and had excellent antioxidant and angiotensin-I converting enzyme inhibitory activities. It protected Vero cells against oxidative by 2,2-azobis-(2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH) and antihypertension in Spontaneously Hypertensive Rats. This study attempted to demonstrate H. abdominalis as a health functional food or food additive in the future.

주제어

표/그림 (5)

표 Table 1. Optimum conditions of enzymatic hydrolysates prepared from Hippocampus abdominalis with eight proteinase
표 Table 2. Yields, free radical scavenging activities, and ACE inhibitory effects of proteases hydrolysates of Hippocampus abdominalis
그림 Fig. 1. Cytotoxicity of DW and Protamex extracts of seahorse on Vero cells. Cell viability was measured by MTT assay. The experiments were conducted triplicate, and the data were expressed as the mean±standard error (S.E). *P<0.05 compare with control group. MTT, 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide; DW, Distilled water; Pro, Protamex hydrolysate.
그림 Fig. 2. Protective effects of D.W and Protamex extracts of seahorse against AAPH-induced oxidative stress in Vero cells. (A) Intracellular ROS level; (B) cell viability. The ROS level was measured by DCF-DA assay and the cell viability was measured by MTT assay. The experiments were conducted triplicate, and the data were expressed as the mean±S.E. ^##P<0.01 compare with control group; *P<0.05, **P<0.01 compare with AAPH group. DW, distilled water; Pro, Protamex hydrolysate; SHP, Seahorse Protamex hydrolysate; ROS, reactive oxygen species; DCF-DA, 2’,7’-dichlorofluorescin diacetate; MTT, 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide; AAPH, 2,2-azobis-(2-amidinopropane) dihydrochloride.
그림 Fig. 3. Change of systolic blood pressure of SHRs after oral administration of SHP (Protamex extract of seahorse). The positive control is Sardine peptide (50mg/kg). Symbols indicate: ●, control; ■, positive control (sardine peptide); ▲, SHP (50 mg/ml); ▼, SHP (100 mg/ml); *P<0.1, **P<0.05 compared with control group. SHR, Spontaneously hypertensive rat; SHP, Seahorse Protamex hydrolysate.

AI 본문요약
AI-Helper

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문제 정의

, 2016). 따라서, 이 연구에서는 양식 빅벨리 해마의 각 효소 별 가수분해물 중 최적의 추출 조건으로 확인된 protamex 가수분해물의 뛰어난 항산화, 항고혈압 효과를 확인하여 빅벨리해마의 우수한 효능을 입증하고자 한다.

제안 방법

AAPH에 의한 산화 보호효과를 확인하기 위해 AAPH 10mM를 DW 가수분해물과 protamex 가수분해물 SHP의 농도50 µg/mL, 100 µg/mL 그리고 200 µg/mL과 함께 처리하였다.
Alkyl radical소거능을 측정하기 위하여 증류수 20 µL, 시료 20 µL, 40 mMAAPH 20 µL, 40 mM 4-POBN 20 µL을 혼합하여 37℃ waterbath에서 30분간 반응시켜 capillary tube에 옮겨 해당 시료를 측정하였다.
DPPH radical 소거능을 측정하기 위하여 DPPH 60 µL와 시료 60 µL를 1:1로 혼합하여 2분간 반응시켜 capillary tube에 옮겨 측정하였다.
DPPH, alkyl radical 소거능은 전자스핀공명(Electron spinresonance, ESR)을 이용하여 해당 시료를 측정하는 Heo etal. (2005)의 방법을 따랐다.
Vero cell에서 AAPH 10 mM에 의한 활성산소종(Reactive oxygen species, ROS)의 생성억제 활성을 확인하기위해 해마 DW 가수분해물과 protamex 가수분해물을 각 농도별로 50 µg/mL, 100 µg/mL, 200 µg/mL로 처리하여 Fig. 2로나타내었다.
단백질 가수분해 효소 7종을 사용하여 해마 효소가수분해물을 제조하였고 증류수(distilled water, DW) 추출물과 비교하였다. 각 효소 별 최적온도와 pH에 맞춰 24시간동안 진행하였고 증류수 추출은 상온에서 효소가수분해물과 같이 24시간동안 추출하였다. 100℃ Water bath에서 10분동안 불활성화시켜 가수분해를 정지시켰다.
빅벨리 해마를 동결건조, 분쇄 후에 파우더 형태에서 기질 대 효소 비율을 100 대 1로 설정하여 진행하였다. 단백질 가수분해 효소 7종을 사용하여 해마 효소가수분해물을 제조하였고 증류수(distilled water, DW) 추출물과 비교하였다. 각 효소 별 최적온도와 pH에 맞춰 24시간동안 진행하였고 증류수 추출은 상온에서 효소가수분해물과 같이 24시간동안 추출하였다.
해마 DW 가수분해물과 SHP의 독성을 평가하여 Fig 1에 나타내었다. 대조구는 시료를 처리하지 않은 실험군으로 구분하였다. 각 시료의 50 µg/mL, 100 µg/mL, 200 µg/mL, 400 µg/mL 농도에서 시료 처리 24시간 이후 독성을 확인하였고 Fig1에 나타내었다.
, 2016).본 연구에서는 빅벨리 해마를 단백질 효소를 이용하여 가수분해하여 각 시료의 수율, DPPH, alkyl radical 소거능, ACE 저해효과를 확인하였다. 이를 통해 빅벨리 해마 protamex 가수분해물을 선정하였고 식용 해마 H.
빅벨리 해마를 동결건조, 분쇄 후에 파우더 형태에서 기질 대 효소 비율을 100 대 1로 설정하여 진행하였다. 단백질 가수분해 효소 7종을 사용하여 해마 효소가수분해물을 제조하였고 증류수(distilled water, DW) 추출물과 비교하였다.
빅벨리 해마와 7종의 단백질 효소 그리고 증류수(Distilledwater, DW)를 각 효소 별 최적 온도와 최적 pH를 설정하여 가수분해를 진행하였고 수율을 측정하였다(Table 1.).
수축기 혈압 측정은혈압 측정기(CODA® High Throughput System, U.S.A.)를 이용하였다.
AAPH에 의한 산화 보호효과를 확인하기 위해 AAPH 10mM를 DW 가수분해물과 protamex 가수분해물 SHP의 농도50 µg/mL, 100 µg/mL 그리고 200 µg/mL과 함께 처리하였다.시료를 처리하지 않고 산화적 스트레스만 유도시킨 실험군과유도시키지 않은 실험군으로 대조군을 분류하였다. AAPH만처리한 실험군에서는 AAPH를 처리하지 않은 실험군보다 유의적으로(P<0.
이전 alcalase 효소 가수분해물의 결과와 우리의 protamex 가수분해물의 결과를 비교하였을 때 protamex가우수한 활성이 확인되었다. 우리는 이러한 결과들을 토대로 빅벨리 해마 protamex 가수분해물을 이용해 이전 연구에서 평가되지 않은 SHR 동물모델을 이용한 in vivo 항고혈압 활성을 평가하였다.
35%로 비슷한 경향을 보이는 시료도 있었다. 이 후 ESR은 정확하고 직접적인 산화적 스트레스에 대한 저해활성을 보는 방법임으로 이를 이용하여 단백질 가수분해물들의 라디칼들에 소거능을 확인하였다. DPPH 저해 활성에 대한 IC50는 DW 추출물이 1.
100℃ Water bath에서 10분동안 불활성화시켜 가수분해를 정지시켰다. 이후 원심분리한 후(12,000 rpm, 15 min, 4℃) 상층액만 분리하여 여과지를 이용하여 필터 후 동결건조 하고 파우더 형태의 총 7종의 단백질 효소 가수분해물과 증류수 추출물을 얻었다.
처음 혈압을 측정한 시간을 0시간으로 하여 이후 3시간 간격으로 측정하여 총 12시간까지 4번 혈압측정을 진행하였고, 실험을 위해 음용수 식이군(Control), 정어리 펩타이드 식이군(Positive control), 해마 protamex 가수분해물 식이군으로 나눠 투여하였으며 해마 protamex 가수분해물은 50 mg/kg, 100mg/kg으로 나누어 투여하여 실험을 진행하였다. 혈압의 측정은 실험동물의 충분한 혈관 확장을 위해 30-32℃, 플라스틱 고정 장치에서 적응시킨 후 실험동물의 꼬리 시작 지점의 동맥위치를 확인하고 volume pressure recording sensor에 끼워 측정하여 수축기 혈압 수치를 데이터화하였다.
Louis, MO,USA)에서 구입하여 사용하였다. 항고혈압 활성을 확인하기 위하여 ACE inhibition potential evaluation kit (Dojindo Inc.,Japan)을 사용하였다. 그 외 기타 시약은 분석용 시약을 사용하였다.
처음 혈압을 측정한 시간을 0시간으로 하여 이후 3시간 간격으로 측정하여 총 12시간까지 4번 혈압측정을 진행하였고, 실험을 위해 음용수 식이군(Control), 정어리 펩타이드 식이군(Positive control), 해마 protamex 가수분해물 식이군으로 나눠 투여하였으며 해마 protamex 가수분해물은 50 mg/kg, 100mg/kg으로 나누어 투여하여 실험을 진행하였다. 혈압의 측정은 실험동물의 충분한 혈관 확장을 위해 30-32℃, 플라스틱 고정 장치에서 적응시킨 후 실험동물의 꼬리 시작 지점의 동맥위치를 확인하고 volume pressure recording sensor에 끼워 측정하여 수축기 혈압 수치를 데이터화하였다. 수축기 혈압 측정은혈압 측정기(CODA^® High Throughput System, U.

대상 데이터

1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH), α-(4-Pyridyl-1-oxide)-N-tert-butylnitrone (4-POBN), 2,2-azobis-(2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH), 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT), dimethyl sulfoxide (DMSO)는 sigma-aldrich (St. Louis, MO,USA)에서 구입하여 사용하였다.
Vero cell을 RPMI 1640 (include 10% FBS, 1% antibiotic)배지를 사용하였고 세포용 배양 Dish에 배양하였다. 세포의 상태에 따라서 5% CO2, 37℃의 incubator에서 2-3일간 계대 배양하여 사용하였다.
본 실험에서 사용한 해마는 빅벨리 해마로 제주특별자치도 제주시 구좌읍에 위치한 해천마에서 제공받았고, 동결 건조된 해마를 분쇄 후 사용하였다. 단백질효소가수분해에 사용한 소화효소 7종(Protamex, Neutrase, Alcalase, Kojizyme, Flavourzyme, Trypsin, Pepsin)은 Novozyme Co. (Denmark)에서 구입하였다. 1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH), α-(4-Pyridyl-1-oxide)-N-tert-butylnitrone (4-POBN), 2,2-azobis-(2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH), 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT), dimethyl sulfoxide (DMSO)는 sigma-aldrich (St.
본 실험에서 사용한 해마는 빅벨리 해마로 제주특별자치도 제주시 구좌읍에 위치한 해천마에서 제공받았고, 동결 건조된 해마를 분쇄 후 사용하였다. 단백질효소가수분해에 사용한 소화효소 7종(Protamex, Neutrase, Alcalase, Kojizyme, Flavourzyme, Trypsin, Pepsin)은 Novozyme Co.
(2012)의 방법을 따라서 온도 24±1℃, 조명시간 12시간 주기로 하여 2주일간 사육하였고 고형사료와 음용수를 공급하여 환경에 적응시킨 후 실험에 사용하였다. 실험물질 투여 전날 혈압측정기로 혈압을 측정하였을 때 수축기 혈압 160 mmHg 이상을 측정하여 구별하였고 비슷한 체중의 실험동물을 선별하여 실험에 사용하였다.
이 실험에 사용된 동물은 SHR (Spontaneously hypertensiverat, 본태성 고혈압 쥐)로 중앙동물실험㈜에서 구입하였다(동물승인번호 2017-0017). SHR은 Ko et al.

데이터처리

실험결과의 통계분석은 각 시료에 대한 평균±표준편차로나타내었고, SPSS Version 14 program을 사용하여 OnewayANOVA-test를 실시하였다.
항목들 간의 유의성 검증은 Turkey’s test에 의해 P<0.01, 0.05, 0.1에서 검정하였다.

이론/모형

DPPH, alkyl radical 소거능은 전자스핀공명(Electron spinresonance, ESR)을 이용하여 해당 시료를 측정하는 Heo etal. (2005)의 방법을 따랐다. DPPH radical 소거능을 측정하기 위하여 DPPH 60 µL와 시료 60 µL를 1:1로 혼합하여 2분간 반응시켜 capillary tube에 옮겨 측정하였다.
ACE 저해 효과를 측정하기 위해 ACE inhibition potentialevaluation kit를 사용하여 Kim et al. (2018)의 protocol을 따랐다. Enzyme working solution을 만들기 위하여 증류수를 kit의 enzyme B에 2 mL 주입하여 녹이고 enzyme A에 enzyme B를 1.
Cytotoxicity of DW and Protamex extracts of seahorse onVero cells. Cell viability was measured by MTT assay. The experiments were conducted triplicate, and the data were expressedas the mean±standard error (S.
SHP의 항고혈압 활성을 측정하기 위해서 Ko et al. (2012)의protocol을 따랐다. 실험 기간 동안 대조군의 본태성 고혈압 쥐는 꾸준히 높은 수축기 혈압을 나타냈다.
SHR은 Ko et al. (2012)의 방법을 따라서 온도 24±1℃, 조명시간 12시간 주기로 하여 2주일간 사육하였고 고형사료와 음용수를 공급하여 환경에 적응시킨 후 실험에 사용하였다.
(A) Intracellular ROS level; (B) cell viability. The ROS level was measured by DCF-DA assay and the cell viability was measured by MTT assay. The experiments were conducted triplicate, and the data were expressed as the mean±S.
각 가수분해물에 대한 세포에서의 독성을 평가하기 위해 verocell을 이용했고 Wang et al. (2018)의 방법을 따라서 MTTassay를 이용하여 측정하였다. 96 well plate 각 well에 1×105cells/mL로 계산하여 190 µL씩 분주하여 5% CO2, 37℃의 incubator에서 24 시간동안 배양하였다.
이를 바탕으로 빅벨리 해마 protamex가수분해물 또한 항산화 활성에 대해 예상할 수 있었고 verocell을 이용하여 AAPH에 의한 산화적 스트레스 저해 효과를확인하였다. 세포수의 측정에 사용되는 대표적인 방법인 MTTassay법을 통하여 세포 생존율 측정을 의 방법을 따라 측정하였다. 해마 DW 가수분해물과 SHP의 독성을 평가하여 Fig 1에 나타내었다.
측정법은 Wang et al. (2018)의 방법을 따라 세포 수 각well 당 5.0×104으로 24 well plate에 처리하고 24시간 배양하였다.
활성산소 생성 저해 측정을 위하여 DCFH-DA assay로 확인하였다. 측정법은 Wang et al.

성능/효과

100 mg/kg 농도에서 SHP를 투여하였을때 다른 실험군과 마찬가지로 6시간에 가장 낮은 수축기 혈압을보였고 양성 대조군과 비교하였을 때에 유의적인 차이(P<0.05)를 보였으며 비슷한 경향으로 낮아지는 혈압을 확인할 수 있었으며, SHP는 9시간에 양성대조군으로 사용한 sardine peptide보다 더 낮은 혈압을 보였다.
2 g의 동결 건조되어 분쇄한 해마와 기질 대 효소 비율을 100대 1로 추출하였을 때 해마 protamex 가수분해물(SHP)은70.67±1.89%로 총 7종의 단백질 효소 가수분해물 중 가장 높은 수율을 보였다(Table
AAPH 10mM을 각 농도별로 처리하였을 때 해마DW 가수분해물에서는 농도의존적으로 ROS 생성이 억제되는 것을 확인하였고, 200 µg/mL에서 유의적인 차이(P<0.01)를 보였다.
AAPH만처리한 실험군에서는 AAPH를 처리하지 않은 실험군보다 유의적으로(P<0.01) 세포 생존율이 낮게 나왔고 SHP의 200 µg/mL농도에서는 유의적으로 우수한 AAPH 산화 보호효과를 확인할 수 있었다.
ACE 저해효과를 보았을 때 해마 DW 추출물 0.95±0.10 mg/mL IC50값에 비하여 효소를 사용한 가수분해물들의 활성이 뛰어나다는것을 확인하였다.
Alkyl radical 소거능 IC50 값도Table 2에 표기한 것과 같이, flavourzyme 가수분해물의 IC50가 0.32±0.03 mg/mL로 가장 좋았고 trypsin 0.33±0.03 mg/mL, kojizyme 0.40±0.05 mg/mL, alcalase 0.43±0.03 mg/mL, protamex 0.47±0.03 mg/mL, neutrase 0.48±0.02 mg/mL, pepsin 1.29±0.03 mg/mL, DW 0.58±0.02 mg/mL로 확인되었다.
DPPH 저해 활성에 대한 IC50는 DW 추출물이 1.41±0.01 mg/mL로 다른 효소 가수분해물에 비하여 높은 활성을 보였다(Table 2).
DW로 추출한 가수분해물의 수율은 36.00±0.87%로 다른 효소 가수분해물과 비교하였을 때 다소 떨어지는 수율을 확인할 수 있었지만 단백질 분해 효소를 이용하여 가수분해하였을 때는DW 추출물의 수율에 비해 월등히 높은 수율을 확인할 수 있었다.
SHP는 해마 DW 가수분해물에 비해 ROS 생성 억제에상대적으로 더 좋은 결과를 보였으며, 100 µg/mL와 200 µg/mL에서 유의적인 차이(P<0.01)를 보였다.
가장 높은 농도인 400 µg/mL에서 유의적으로 (P<0.05) 독성이 있음을 확인하였지만 다른 농도에서는 독성이 없었다.
01) 세포 생존율이 낮게 나왔고 SHP의 200 µg/mL농도에서는 유의적으로 우수한 AAPH 산화 보호효과를 확인할 수 있었다. 그 결과 우리는 이전 연구와는 달리 빅벨리 해마 protamex 가수분해물을 이용하여 vero cell 내에서 우수한항산화 활성이 있음을 확인할 수 있었다.
(2016)의 연구에서는 빅벨리 해마 펩신 가수분해물을 이용한 vero cell 내 ROS(Reactive oxygen species) 생성율, 세포 생존율을 보고한 바 있다. 그 결과 해당 가수분해물에 대한 세포 내 우수한 항산화 활성을 확인할 수 있었다. 이를 바탕으로 빅벨리 해마 protamex가수분해물 또한 항산화 활성에 대해 예상할 수 있었고 verocell을 이용하여 AAPH에 의한 산화적 스트레스 저해 효과를확인하였다.
수율이 높았던 SHP는 3.02±0.07mg/mL로 다른 가수분해물들과 비교했을 때 상대적으로 높은IC50를 확인하였다.
양성 대조군으로 SHR에 sardine peptide를 50 mg/kg으로 투여하여 수축기 혈압을 0,3, 6, 9시간으로 측정한 결과 3시간에 수축기 혈압이 떨어져 대조군과 유의적인 차이(P<0.1)을 확인하였고 6시간에 수축기 혈압이 가장 많이 떨어져 유의적인 차이(P<0.05)를 확인하였다.
이러한 결과는 이전 연구에서 빅벨리 해마가 항산화, 항고혈압에 우수한 활성이 있음을 보여주었고, 우리는 이전 연구와 다르게 protamex 가수분해물을 이용한 alkyl radical 소거활성과 ACE 저해 활성을 측정한 결과, 각 IC50 값 0.47±0.03 mg/mL, 0.06±0.00 mg/mL로 확인되었다.
그 결과 해당 가수분해물에 대한 세포 내 우수한 항산화 활성을 확인할 수 있었다. 이를 바탕으로 빅벨리 해마 protamex가수분해물 또한 항산화 활성에 대해 예상할 수 있었고 verocell을 이용하여 AAPH에 의한 산화적 스트레스 저해 효과를확인하였다. 세포수의 측정에 사용되는 대표적인 방법인 MTTassay법을 통하여 세포 생존율 측정을 의 방법을 따라 측정하였다.
본 연구에서는 빅벨리 해마를 단백질 효소를 이용하여 가수분해하여 각 시료의 수율, DPPH, alkyl radical 소거능, ACE 저해효과를 확인하였다. 이를 통해 빅벨리 해마 protamex 가수분해물을 선정하였고 식용 해마 H.abdominalis 유래 protamex 가수분해물은 항산화, 항고혈압 효능을 가지는 것을 확인하였으며,향후 건강기능식품이나 식품 첨가제로서 뛰어난 잠재력이 있음을 확인하였다.
00 mg/mL로 확인되었다. 이전 alcalase 효소 가수분해물의 결과와 우리의 protamex 가수분해물의 결과를 비교하였을 때 protamex가우수한 활성이 확인되었다. 우리는 이러한 결과들을 토대로 빅벨리 해마 protamex 가수분해물을 이용해 이전 연구에서 평가되지 않은 SHR 동물모델을 이용한 in vivo 항고혈압 활성을 평가하였다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	기존 고혈압 치료제로 알려져있는 것은 무엇인가?	또 다른 현대인의 건강을 위협하는 고혈압은 혈액의 압력이 만성적으로 증가하는 만성질환으로서 동맥경화, 심근경색 등의 질환의 위험요인이기도 하여 지속적인 관리와 치료를 필요로 한다. 고혈압을 치료하기 위해 잘 알려져 있는 것으로는 안지오텐신 전환효소 억제제(angiotensinconvert enzyme inhibitor, ACEi), 동맥경화에 억제기능이 주목되어 지는 ARBs (angiotensin II type1 receptor blockers) 등이 있다(Kang et al., 2018; Kim et al.
	우리나라에 분포하는 해마의 종류는?	, 2017 ). 우리나라에는 가시해마(Hippocampus histrix), 복해마(Hip-pocampus kuda), 산호해마(Hippocampus mohnkei), 점해마(Hippocampus trimaculartus) 등이 분포하지만 불법무역이나남획, 생태지 파괴로 인해서 자원으로 서의 해마를 얻는데 어려움이 있다(Huh et al., 2014).
	고혈압을 치료하는 데 있어 천연물 유래 ACE저해제에 대한 관심이 증가하는 이유는?	, 2018). 하지만 ACEi는 여러 종류가 있고 배설되는 부위도 다르지만 마른 기침, 발진, 고칼륨 혈증등이 흔한 부작용으로 나타나고, ARBs 또한 위험군에 따라 다른 항고혈압제를 사용해야하기 때문에 천연으로부터 얻어지는 ACE저해제에 많은 관심이 증가되고 있다(Kim et al., 2000).

참고문헌 (22)

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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