목적: 배양 용액의 농도와 시간이 SPIO가 대식 세포 내로 표지되는데 미치는 영향에 대해 알아보고자 한다. 대식세포 내 SPIO 농도와 생체에서 시행한 자기공명영상 의 신호강도의 상관관계를 알고자 한다. 대상과 방법: 쥐의 복강에서 얻은 대식세포를 224, 112, 56, 28 μgFe/mL 농도의 SPIO 를 포함한 용액에서 각각3, 6, 12, 24, 48시간 배양했다. 대식 세포 내 철 농도를 분광광도법으로 측정했다. 18 마리 쥐의 뒷다리에 각각 S. aureus를 주입하고 24시간 후, 세 개의 농도(112, 56, 28 μgFe/ml)로 24시간 배양하여 얻은 SPIO 표지 대식세포를 각각 6마리의 쥐에 경정맥 주입했다. MR로 농양 벽과 근육의 신호강도의 비(농양 SI / 근육 SI)를 구하고 Kruskal-Wallis test로 분석했다. 결과: 더 높은 SPIO 농도로, 더 오랜 시간을 배양할수록 대식세포 내 철 농도가 높아졌다(배양 농도; p < 0.001, 배양 시간; p < 0.001). 세 집단 간 in vivo MR 신호강도도 세포 내 SPIO 농도가 높아질수록 의미 있게 낮아졌다 (112 μgFe/mL = 0.63; 56 μgFe/mL =0.67; 28 μgFe/mL =0.89, κ2=10.53, p < 0.005). 결론: 세포 내 SPIO 농도는 자화 감수성 효과에 의해 MR 신호 강도를 유의하게 감소시키므로, 세포의 기능과 생존에 영향이 없는 한 SPIO를 많이 표지 시키는 것이 MR 영상의 대조도에 좋다.
목적: 배양 용액의 농도와 시간이 SPIO가 대식 세포 내로 표지되는데 미치는 영향에 대해 알아보고자 한다. 대식세포 내 SPIO 농도와 생체에서 시행한 자기공명영상 의 신호강도의 상관관계를 알고자 한다. 대상과 방법: 쥐의 복강에서 얻은 대식세포를 224, 112, 56, 28 μgFe/mL 농도의 SPIO 를 포함한 용액에서 각각3, 6, 12, 24, 48시간 배양했다. 대식 세포 내 철 농도를 분광광도법으로 측정했다. 18 마리 쥐의 뒷다리에 각각 S. aureus를 주입하고 24시간 후, 세 개의 농도(112, 56, 28 μgFe/ml)로 24시간 배양하여 얻은 SPIO 표지 대식세포를 각각 6마리의 쥐에 경정맥 주입했다. MR로 농양 벽과 근육의 신호강도의 비(농양 SI / 근육 SI)를 구하고 Kruskal-Wallis test로 분석했다. 결과: 더 높은 SPIO 농도로, 더 오랜 시간을 배양할수록 대식세포 내 철 농도가 높아졌다(배양 농도; p < 0.001, 배양 시간; p < 0.001). 세 집단 간 in vivo MR 신호강도도 세포 내 SPIO 농도가 높아질수록 의미 있게 낮아졌다 (112 μgFe/mL = 0.63; 56 μgFe/mL =0.67; 28 μgFe/mL =0.89, κ2=10.53, p < 0.005). 결론: 세포 내 SPIO 농도는 자화 감수성 효과에 의해 MR 신호 강도를 유의하게 감소시키므로, 세포의 기능과 생존에 영향이 없는 한 SPIO를 많이 표지 시키는 것이 MR 영상의 대조도에 좋다.
Purpose: To determine whether the amount of intracellular superparamagnetic iron oxide (SPIO) in macrophages influences MR signal intensity during in vivo celluar tracking. Materials and Methods: Peritoneal macrophages harvested from thioglycolate-treated mice were labeled with SPIO using concentrat...
Purpose: To determine whether the amount of intracellular superparamagnetic iron oxide (SPIO) in macrophages influences MR signal intensity during in vivo celluar tracking. Materials and Methods: Peritoneal macrophages harvested from thioglycolate-treated mice were labeled with SPIO using concentrations of 112, 56, and 28 μgFe/ml, and different incubation times of 3h, 6h, 12h, 24h and 48 h, respectively. The iron concentration was quantified with the use of absorption spectrophotometry. Each group of macrophages labeled with different concentrations of SPIO was intravenously injected into 18 mice, after inoculation with S. aureus to the thigh. The relative signal intensity (SI) of the abscess wall (SI of the abscess wall/SI of muscle) was measured on MR and was analyzed by the use of the Kruskal-Wallis test. Results: A higher concentration of SPIO in the labeling solution and a longer incubation time resulted in a higher concentration of SPIO in the macrophages. The relative SI of the abscess wall (0.63 for 112 μgFe/mL; 0.67 for 56 μgFe/ml; 0.89 for 28 μgFe/mL) significantly decreased with an increase of SPIO concentration (κ2 = 10.53, p < 0.005). Conclusion: The amount of intracellular SPIO influences the MR signal intensity by the susceptibility effect, and it is recommended to use sufficient iron-oxide label as long as it does not affect cellular function and viability.
Purpose: To determine whether the amount of intracellular superparamagnetic iron oxide (SPIO) in macrophages influences MR signal intensity during in vivo celluar tracking. Materials and Methods: Peritoneal macrophages harvested from thioglycolate-treated mice were labeled with SPIO using concentrations of 112, 56, and 28 μgFe/ml, and different incubation times of 3h, 6h, 12h, 24h and 48 h, respectively. The iron concentration was quantified with the use of absorption spectrophotometry. Each group of macrophages labeled with different concentrations of SPIO was intravenously injected into 18 mice, after inoculation with S. aureus to the thigh. The relative signal intensity (SI) of the abscess wall (SI of the abscess wall/SI of muscle) was measured on MR and was analyzed by the use of the Kruskal-Wallis test. Results: A higher concentration of SPIO in the labeling solution and a longer incubation time resulted in a higher concentration of SPIO in the macrophages. The relative SI of the abscess wall (0.63 for 112 μgFe/mL; 0.67 for 56 μgFe/ml; 0.89 for 28 μgFe/mL) significantly decreased with an increase of SPIO concentration (κ2 = 10.53, p < 0.005). Conclusion: The amount of intracellular SPIO influences the MR signal intensity by the susceptibility effect, and it is recommended to use sufficient iron-oxide label as long as it does not affect cellular function and viability.
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