[보고서]유전체 및 유전자 교정 기술을 이용한 콩과 작물 생산성 향상 기술 개발

문정환

보고서 정보

주관연구기관

명지대학교
MyongJi University

연구책임자

문정환

참여연구자

김군보 , 조아라 , 권영은 , 손성욱

보고서유형

최종보고서

발행국가

대한민국

언어

한국어

발행년월

2019-02

과제시작연도

2018

주관부처

농촌진흥청
Rural Development Administration(RDA)

등록번호

TRKO201900015986

과제고유번호

1395053681

사업명

농업첨단핵심기술개발사업(R&D)

DB 구축일자

2019-10-19

키워드

콩과 작물.생산성 향상.유전체 기술.유전자 교정.Legume.Crop improvement.Genomic tool.Genome editing.

DOI

https://doi.org/10.23000/TRKO201900015986

표 원형질체 분리 및 형질전환 버퍼의 조성
표 호르몬 조합에 따른 direct multiple shoot 형성 효율 비교
표 Direct shoot organogenesis를 이용한 메디카고 A17의 아그로박테리움 형질전환 A-C. 유식물체 정단 부정아 형성 촉진을 이용한 형질전환 식물체 직접 유도. RFP-KanR fusion 마커를 사용한 적색형광 형질전환 식물체 선발 D-F. 떡잎 기부에서 형질전환 식물체 직접 유도. BAR-GFP fusion 마커를 이용한 녹색 형광 형질전환 식물체 선발
표 RITA 배양기와 direct shoot induction 방법을 이용한 메디카고 형질전환 단계
표 RITA 배양기와 direct shoot induction 방법을 이용한 메디카고 형질전환 A. 사전배양배지에서 1주간 생장시킨 유식물에서 자라나온 정아 조직을 제거하고 (흰색 화살표), 상처부위(검정색 화살표)에 A. tumefaciens를 접종한 후 3일간 공동배양 B. RITA에서 생장시키면서 2주 간격으로 새로 자라난 액아를 제거하고 아그로박테리움 접 종 (검정색 화살표) C. 유식물체를 배양중인 RITA 배양기 D. 고체배지에 치상하여 4주간 형질전환 식물체 선발 E. 발근배지에서 4주간 뿌리 발생을 유도한 형질전환 식물체
표 호르몬 조합에 따른 메디카고 배발생 캘러스의 형성
표 메디카고 A17의 A. tumefaciens 형질전환에 의한 캘러스 유도 3 종류의 식물 선발 마커가 삽입된 아그로박테리움(A. tumefacines EHA105)에 감염 후,CIM3 배지에 치상한 잎 절편에서 형성된 캘러스 A. CRISPR/Cas9 유전자 KO 벡터 pGK3306 (RFP와 NPT II fusion)로 형질전환 B. 유전자 과발현 벡터 pK7WG2D (GFP, Kan-R)로 형질전환 C. CRISPR/BE3 단일염기편집 벡터 pGK3305 (GFP, Bar)로 형질전환
표 메디카고 캘러스 유래 체세포배 발생에서 호르몬 조합의 효과 A. 체세포배 발생 반응이 일어난 잎 절편의 비율. 페트리접시 당 8개의 explant를 놓고 3회 반복실험함 B. 잎 절편 당 1차 체세포 배의 수
표 EID3 배지에서의 메디카고 표준 야생형 A17 캘러스 유래 체세포배 발생 및 식물체 재분화 과정 A. 캘러스가 형성된 잎 절편에서의 1차 체세포배(primary somatic embryo)의 형성. Cotyledonary 단계(작은 상자의 사진) B. 1차 체세포배(빨간 화살표)의 기부에 다시 형성된 2차 체세포배 발생 C. 식물발달배지(SDM)로 이식한 후 재분화되어 본 잎이 나온 식물체
표 잎 절편으로부터 캘러스 유래 체세포배 발생을 통한 메디카고 아그로박테리움 형질전환 체계의 단계별 과정과 소요 시간
표 잎 절편으로부터 캘러스 유래 체세포배 발생을 통한 메디카고 아그로박테리움 형질전환 식물체의 유도 과정 A. 잎 절편에 아그로박테리움을 감염시킨 후 CCM에 치상하여 공동배양 B. CIM3로 이식한 후 캘러스 형성 C. EID3 배지에서의 1차 체세포배 발생 D. EID3 배지에서 반복적으로 나타나는 2차 배발생 E. SDM3 배지로 옮겨 식물체로 전환 발달 F. 뿌리가 나온 식물체를 화분에 옮겨 생장 중인 모습
표 P4 배지와 EID3 배지에서의 메디카고 체세포배발생 효율 비교
표 P4 배지와 EID3 배지에서의 메디카고 A17의 체세포배 발생 비교 A. P4 배지에서 1개월간 캘러스 유도 후 새로운 P4 배지로 옮겨 1개월 간 체세포배 발생을 유도한 모습 B. CIM3 배지에서 1개월간 형성된 캘러스를 EID3 배지로 옮겨 1개월 간 체세포배 발생을 유도한 모습
표 메디카고 U6 프로모터를 이용하여 제작한 sgRNA 발현/클로닝용 entry 벡터
표 메디카고 U6 프로모터를 이용한 sgRNA 발현/클로닝 벡터 시스템 A. 메디카고 U6 프로모터와 sgRNA backbone 사이에 annealed double strand oligo (C) 클로닝 카세트를 삽입하여 pDONR221(Invitrogen) 벡터에 재조합함 B. Double strand oligo 클로닝 카세트를 2종의 제한효소 AarI과 BsaI을 선택하여 사용할 수 있게 각각 제작함. 클로닝 카세트 중간에 XhoI 절단 서열을 넣어 클로닝 후 미절단 벡터를 억제할 수 있게 함 C. sgRNA 클로닝을 위한 double strand oligo annealing. crRNA 표적서열 20-22 nt를 sense와 antisense oligo의 5‘-말단에 GATT-와 AAAC-를 추가하여 제작하고, annealing 시켜 double strand oligonucleotide를 형성시킨 후 T4 polynucleotide kinase로 5’-말단을 인산화시켜 ligation 반응으로 클로닝함
표 메디카고 A17 아그로박테리움 형질전환 벡터
표 메디카고 CRISPR/Cas9 형질전환 벡터 시스템 A. Agrobacterium을 이용한 메디카고 형질전환용 벡터 pGK3301-3306. Entry 벡터에 클로닝 한 U6-sgRNA를 재조합할 수 있는 attR1-attR2 Gateway cassette, Cas9 유전자, 식물 선발마커 GFP-BAR fusion 유전자를 조합함 B. Gateway 시스템을 이용한 재조합 binary 벡터 제작과정. 목표 유전자 표적 sgRNA를 MtU6 프로모터 하위에 클로닝한 entry벡터와 pGK3301-3306 binary 벡터를 Gateway LR 재조합 반응시키고,attR1-attR2 카세트에 U6-sgRNA가 치환 삽입된 재조합 발현 벡터를 얻음
표 메디카고 유전체 편집 체계 검증을 위한 CRISPR/Cas9 표적 gRNA 서열
표 부정근 형질전환 식물체에서 CRISPR/Cas9 시스템에 의한 유전변이 검증 A. MtU6-8 프로모터를 이용한 P5CS2 표적(P2-176) 형질전환 뿌리의 T7E1 assay B. MtU6-8 프로모터를 이용한 GA2ox10 표적(G512) 형질전환 뿌리의 T7E1 assay C. AtU6-26 프로모터를 이용한 P5CS3 표적(P3-160) 형질전환 뿌리의 T7E1 assay D. MtU6-8 프로모터를 이용한 GA2ox10의 비특이표적(G819)의 T7E1 assay. RGEN 유전 변이로 In-Del이 발생했을 경우 예상되는 제한단편의 길이를 표시함
표 메디카고 지베렐린 관련 유전자를 표적하는 CRISPR/Cas9 sgRNA 설계 A. MtGA2ox10을 표적하는 sgRNA G512와 G907의 설계 B. MtGA3ox1을 표적하는 sgRNA G551과 G638의 설계. sgRNA 표적 유전자 서열은 빨간색, PAM 서열은 보라색으로 표시함. CRISPR/Cas9에 의해서 발생될 DSB의 첫 번째 위치(-4 bp)에 해당하는 아미노산의 위치를 화살표로 표시함
표 메디카고 P5CS2와 P5CS3의 CRISPR/Cas9 RGEN-HDR을 위한 sgRNA 설계 A. MtP5CS2와 MtP5CS3 유전자의 구조. γ-GK 도메인의 Negative Feedback Motif (NFM)는 exon5에 위치함 B. NFM의 표적 아미노산 F125 (빨간색)와 Cas9 결합 PAM 자리의 위치(보라색). 표적 sgRNA 서열은 밑줄로 나타냄. F125의 코돈 TTT의 첫 번째 염기가 PAM (GGG)으로부터 –4 bp에 위치하므로, CRISPR/Cas9에 의해 발생할 DSB의 범위 내에 있음 C. Exon 5 NFM의 표적 아미노산 V156 (빨간색)과 표적 sgRNA (밑줄), PAM (보라색)의 위치. V156코돈 GTG는 PAM (AGG)으로부터 –7-9 bp에 위치하므로 DSB 범위 내에 있음
표 T7 RNA polymerase를 이용한 sgRNA 전사 합성에 이용한 올리고
표 Bioanalyzer 2100을 이용한 in-vitro 전사 합성된 sgRNA 분석 MtGA2ox10, MtP5CS2, MtP5CS3을 표적하는 sgRNA 6종을 T7 RNA polymerase를 사용하여 in-vitro 전사시키고, DNase-I을 처리하여 주형을 제거한 후 Agilent Bioanalyzer 2100과 RNA nano chip을 사용하여 크기를 분석함. 예상 크기 약 120 bp에서 피크가 형성됨
표 Cas9 단백질 발현 및 정제 A. Cas9hc:NLS:HA:His6을 pET28a 발현 벡터에 삽입한 재조합 벡터 pET28a-Cas9 B. 두 종류의 대장균주[BL21 (pLysS)와 Rosetta (DE3)], 두 개의 pET28a-Cas9 재조합 벡터 플라스미드 클론 (#29, #32)을 사용한 단백질 발현 조건 검증. BL21 (pLysS)에서 약 160 kD 크기의 재조합 Cas9 단백질의 발현량이 많음 C. NTA-컬럼을 사용한 재조합 Cas9 단백질의 정제
표 메디카고 RGEN-RFLP 실험조건 수립 MtP5CS2와 MtP5CS3을 표적하는 각 2종의 sgRNA (P5CS2-F129, P5CS2-V156와 P5CS3-F129, P5CS3-V156)의 표적 영역을 PCR 증폭한 후 RGEN-RFLP를 수행함. 총 부피 15 ul에 PCR 산물 5ul, in-vitro transcription으로 전사 합성한 sgRNA 100 ng과 정제 Cas9 단백질 0 (-), 0.2 ug (+), 1.0 ug (++)을 혼합하여 반응시킴
표 메디카고의 지베렐린 생합성 경로 유전자 동정
표 메디카고의 지베렐린 불활성화 경로 유전자 동정 1)
표 메디카고의 질소고정 뿌리혹 발달과 관련된 지베렐린 합성/불활성화 경로 유전자의 발현 분석 A. 메디카고 지베렐린 생합성 경로에 속하는 19개 유전자의 발현 양상에 대한 히트맵. B. 메디카고 지베렐린 불활성화 경로에 속하는 11개 유전자의 발현 양상에 대한 히트맵. C. 뿌리혹 발달 관련 지베렐린 생합성/불활성화 경로 유전자 중 차등발현하는 MtGA3ox1, MtGA2ox10, MtGAOL15의 식물체 유전형별 유전자 발현 그래프. A17, wild type Jemalong cv. A17; nfp, nod factor perception mutant; lyk3, LysM domain receptor-like kinase 3 mutant; skl, ethylene insensitive mutant
표 식물 GA 2-oxidase의 유연관계 분석 주요 모델 식물의 GA 2-oxidase 유전자를 CLUSTALW를 사용하여 다중정렬하고 Maximum-Likelihood 방법으로 계통도를 작성함(Bootstrap 1,000회 실시). 콩과 식물(메디카고, 대두, 벌노랑이)은 내부가 채워진 표식을, 기타 식물은 빈 표식을 사용하여 나타냄. 각 그룹(I-IV)에 속하는 메디카고 GA2-oxidase는 색깔로 표시함
표 MtGA2ox10 유전자의 발현 특성 A. Sm 접종한 메디카고 뿌리와 기타 조직(뿌리혹, 비감염 뿌리, 잎, 꽃, 꼬투리)에서 MtGA2ox10 유전자 발현량에 대한 quantitative PCR (qPCR) 결과 B. MtGA2ox10 유전자 프로모터와 GFP-GUS reporter 유전자 발현 벡터 (MtGA2ox10pro:GFP:GUS)의 구조 C. MtGA2ox10pro:GFP:GUS로 형질전환한 식물체 뿌리에서 Sm 접종 후 72 시간까지 조직화학적 염색 D. MtGA2ox10pro:GFP:GUS로 형질전환한 식물체 뿌리에서 Sm 접종에 따른 GUS 활성 변화
표 뿌리혹 발달에 따른 MtGA2ox10 프로모터:GUS의 조직화학적 염색 MtG2ox10pro:GFP:GUS로 형질전환한 메디카고 뿌리에 뿌리혹박테리아 S. medicae ABS7M을 접종하고 0, 12, 24 시간 후, 5일 후, 2, 4, 6주 후 뿌리를 채취하여 Xgluc-A를 기질로 GUS 활성을 염색함 A. 접종하지 않은 뿌리. RFP로 형질전환 여부 확인함. GUS 활성이 없음 B-E. 접종 12 시간 후 프로모터의 활성. 뿌리 전체적으로 GUS 염색이 나타남(B). 뿌리 끝의 신장대(elongation zone)보다 분화대(differentiation zone)에서 GUS 활성 강함(C). Sm에 감염 된 (D, E) 뿌리털에서 GUS 염색 F. 접종 24 시간 후 프로모터 활성이 감염사가 도달하는 피층 영역에 집중 됨 G-H. 뿌리혹 발달 초기의 프로모터 활성. 뿌리혹 형성 부위(G)와 어린 뿌리혹 정단 말단의 분열조직 부위(H)에서 나타남 I. 4주 경과한 성숙한 뿌리혹. 정단 분열조직과 뿌리의 유관속에서 GUS 염색. 붉은색은 Magenta-Gal을 기질로 하여 염색한 뿌리혹박테리아의 LacZ (pXLGD4). 뿌리혹의 기저부위에 접한 관다발 조직에서는 GUS 발현이 나타나지 않음 J-K. 6주 경과한 노화중인 뿌리혹. 뿌리의 유관속과, 뿌리혹의 유관속, 뿌리혹의 정단에서 GUS 활성이 나타남
표 MtGA2ox10 표적 gRNA 서열
표 다중 표적에 의한 MtGA2ox10 유전자 결손 형질전환 식물체의 제작 A. MtGA2ox10 유전자의 구조. CRISPR/Cas9의 목표 2곳(G851와 G907)과 RFLP에 의한 유전형 분석 영역의 PCR 프라이머(GA2OX-2347f, GA2OX-2905r)의 위치를 표시함. G851과 907의 위치는 GA 2-oxidase의 dioxygenase motif 6 (Chen et al., 2016) 영역에 해당함 B. CRISPR/Cas9 유발 변이의 유전형 분석을 위한 PCR-RFLP 제한효소 지도. C. MtGA2ox10 유전자편집을 위한 CRISPR/Cas9 재조합벡터 3305-G851.907의 T-DNA 구조. Dual sgRNA (MtU6-8pro-G907, MtU6-8pro-G851를 직렬 배열한 엔트리 플라스미드 2223-G851.907)를 GFP-BAR 선발 마커와 Cas9 발현 카세트를 가진 pGK3304에 재조합함 D. MtGA2ox10 유전자결손 식물체 뿌리의 PCR-RFLP genotyping. 1차적으로 선발한 7 개체의 biallelic 변이 후보 식물체들을 BsrDI과 Eco109I로 처리한 결과. 4 개체의 벡터 대조구(pGK3304)를 대조(NULL)로 사용. 각 개체 번호 밑의 왼쪽은 BsrDI, 오른쪽은 Eco109I 처리 결과임. 마커 옆에 예상되는 제한효소 절편의 크기를 표시했으며, Eco109I은 낮은 활성 때문에 BsrDI에 비해 완전히 잘리지 않은 밴드가 있으며, 대조 샘플과 비교하여 판단함 E. MtGA2ox10 결손 식물체 3 개체의 유전형 서열 분석. G851의 –4 bp위치부터 염기서열이 혼재되어 나타남 F. MtGA2ox10 결손 식물체의 대립 유전형. 벡터에 클로닝 한 후 염기서열을 결정함
표 다중 표적에 의한 MtGA2ox10 유전자 결손 형질전환 식물체의 표현형 분석 A. MtGA2ox10 결손 식물체 G851.907 KO-1 식물체 뿌리의 생장. 대조군(NULL)과 비교하여 뿌리 생장은 비슷하나, 뿌리혹 형성이 안됨(KO-1에 성숙한 뿌리혹 1개 관찰) B. G851.907 KO-2 식물체 뿌리의 뿌리혹 형성. 성숙한 뿌리혹 3개 관찰됨(화살표). GFP로 형질전환여부 확인함 C. 대조군과 KO-2 식물체 뿌리의 핑크색으로 성숙한 뿌리혹의 형태 비교 D. 뿌리혹 내부 구조의 비교. 대조군에서 G851.907 KO-2 뿌리혹과 비슷한 크기의 뿌리혹을 선택하여 Magenta-Gal을 기질로 박테리아의 LacZ (pXLGD4)를 염색함 E-F, 대조군(E)과 G851.907 KO-1(F)의 뿌리에서 Sm을 감염시키고 X-gal로 염색함 H. 대조군과 G851.907 KO 의 뿌리 길이 생장 비교 I. 대조군과 G851.907 KO의 뿌리혹 형성 비교 J. 대조군과 G851.907 KO 뿌리의 단위 길이(cm) 당 감염사 빈도 비교
표 MtGA2ox10 유전자 과발현 식물체의 뿌리혹 발달 표현형 A-B. MtGA2ox10 과발현(OX) 식물체 뿌리의 생장. 대조군(NULL)과 비교할 때 길이와 곁뿌리 생장에 차이가 있음 C-D. 뿌리혹 형성 표현형 E-F. 뿌리혹 내부의 구조. X-gal을 기질로 박테리아의 LacZ를 염색함. G-H. 뿌리 생장 정량 비교. 과발현체에서 뿌리의 길이는 늘어났지만 생중량은 감소함 I. 뿌리혹 형성 비교. 과발현체에서 뿌리혹 수가 감소함
표 MtP5CS2-AV와 MtP5CS3-AV 유전자 과발현 식물체의 표현형 A. P5CS의 gamma-GK 도메인 NFM의 보존된 아미노산 서열 구조. 변이 유발 표적인 FF의 위치를 상자로 표시함. 유전자 편집에 의해 FF를 AV로 변화시킴 B. MtP5CS2와 MtP5CS3의 AV 변이 유전자와 정상 유전자를 과발현시킨 식물체를 2주간 정상조건에서 생장시킨 후, 100 mM NaCl을 첨가하여 4주간 mFM agar 배지에서 생장시킴
표 HDR 기법에 의한 MtP5CS2와 MtP5CS3 유전자의 정밀 교정 A. 원형질체에 ssODN과 RNP complex를 도입시키고 2주간 배양한 현탁배양 캘러스 B. 세포벽이 재생된 형태(원형질체의 구형에서 변형됨)와 세포분열 진행에 의한 multicellular cluster가 형성된 모습 C. 캘러스증식 고체배지에서 배양한 캘러스 군총 D. 생장이 양호한 캘러스 군총 15개에서 목표 유전자의 PCR 증폭 및 sequencing에 의한 유전형 분석의 예시. 검정색으로 나타낸 영역은 sgRNA 표적 서열의 위치
표 HDR reporter를 이용한 MtP5CS3 유전자 교정 캘러스 선발 A. HDR 방식 유전자 교정 리포터 바이너리 벡터 HDR reporter의 구조. GFP의 N-말단에 –1 frame shift가 된 HDR 표적 서열을 재조합함 B. HDR reporter의 작동 방식: HDR reporter로 형질전환된 원형질체에 RNP complex와 HDR template를 넣어 HDR이 성공적으로 일어나면 frame이 교정되어 GFP가 발현됨 C. MtP5CS3 HDR 유전자 교정에서 HDR reporter의 적용. HDR reporter 원형질체에 RNP complex와 HDR template를 주입한 후 캘러스를 유도하고(C-1), GFP 형광으로 선발 D. MtP5CS3 야생형(WT)과 GFP로 선발된 캘러스의 유전형(del/del)
표 MtP5CS2/3 유전자 단일염기편집을 위한 벡터 제작 A. MtP5CS2 유전자의 2곳을 표적하는 U6-sgRNA p2BE510과 p2BE366을 연결 것(p2BE366.510)과, MtP5CS3 유전자 표적 U6-sgRNA p3BE480과 p3BE563을 연결한 Gateway entry plasmid(p3BE480.563)의 구조 B. 단일염기편집을 위한 식물형질전환 벡터 pGK3305의 지도. Doubled 35S 프로모터를 이용한 BE3(APOBEC1:Cas9n:UGI:NLS) 발현 카세트와 gRNA 발현 카세트를 재조합하기 위한 Gateway cassette (ccdB), 식물 선발을 위한 GFP:BAR fusion 마커를 보유함 C. pGK3305에 p2BE366.510와 p3BE480.563을 재조합한 식물체 발현 재조합 벡터의 T-DNA 구조.
표 MtP5CS2, 3의 단일염기 편집을 위한 gRNA 서열
표 MtP5CS2/3 유전자 단일염기편집 식물체 형질전환 A. MtP5CS2와 3의 단일염기편집 형질전환. EID3 배지에서의 체세포배발생 B. MtP5CS3 유전자편집 식물체 p3-201의 생장 모습 C. GFP를 이용한 p3-201 식물체의 형질전환 여부 확인 D. MtP5CS3 유전자편집 식물체 p3-201의 표적 부위에 대한 Sanger 시퀀싱 크로마토그램 E. MtP5CS3 유전자편집 식물체의 유전형 서열 분석. p3-101과 p3-201에서 G→A 염기 치환을 확인함

과제명(ProjectTitle) :	-
연구책임자(Manager) :	-
과제기간(DetailSeriesProject) :	-
총연구비 (DetailSeriesProject) :	-
키워드(keyword) :	-
과제수행기간(LeadAgency) :	-
연구목표(Goal) :	-
연구내용(Abstract) :	-
기대효과(Effect) :	-

내보내기 구분	파일저장 인쇄 메일전송
구성항목	기본정보 상세정보 관리번호, 제목(한글), 저자명(한글), 발행일자, 전자원문, 초록(한글), 초록(영문) 관리번호, 제목(한글), 제목(영문), 저자명(한글), 저자명(영문), 주관연구기관(한글), 주관연구기관(영문), 발행일자, 총페이지수, 주관부처명, 과제시작일, 보고서번호, 과제종료일, 주제분류, 키워드(한글), 전자원문, 키워드(영문), 입수제어번호, 초록(한글), 초록(영문), 목차
저장형식	Text(ASCII format) Excel format
메일정보	받는사람 (필수) @ 보내는사람 (선택) @ 제목 내용 KISTI 검색결과 이메일 서비스
안내	총 건의 자료가 검색되었습니다. 다운받으실 자료의 인덱스를 입력하세요. (1-10,000) 검색결과의 순서대로 최대 10,000건 까지 다운로드가 가능합니다. 데이타가 많을 경우 속도가 느려질 수 있습니다.(최대 2~3분 소요) 다운로드 파일은 UTF-8 형태로 저장됩니다. 파일의 내용이 제대로 보이지 않을실 때는 웹브라우저 상단의 보기 -> 인코딩 -> 자동선택 여부를 확인하십시오. ~ Text(ASCII format) Excel format

연합인증

유전체 및 유전자 교정 기술을 이용한 콩과 작물 생산성 향상 기술 개발
Application of genomic tools and genome editing technology to develop high-yield legume crops 원문보기

초록

Abstract ▼

목차 Contents

표/그림 (41)

표/그림 (41)

연구자의 다른 보고서 :

참고문헌 (25)

연구과제 타임라인

관련 콘텐츠

원문 보기

이 보고서와 함께 이용한 콘텐츠

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

선택된 텍스트

연합인증

유전체 및 유전자 교정 기술을 이용한 콩과 작물 생산성 향상 기술 개발 Application of genomic tools and genome editing technology to develop high-yield legume crops 원문보기

초록

Abstract ▼

목차 Contents

표/그림 (41) 모든 표/그림 보기

표/그림 (41) 슬라이드로 보기

연구자의 다른 보고서 :

문정환 (5)

참고문헌 (25)

연구과제 타임라인

전체(0) 논문(0) 특허(0) 보고서(0)

전체(0) 논문(0) 특허(0) 보고서(0)

관련 콘텐츠

원문 보기

이 보고서와 함께 이용한 콘텐츠

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

선택된 텍스트

유전체 및 유전자 교정 기술을 이용한 콩과 작물 생산성 향상 기술 개발
Application of genomic tools and genome editing technology to develop high-yield legume crops 원문보기

표/그림 (41)

표/그림 (41)