[보고서]미생물소재 개발 및 실용화 연구

서정우

보고서 정보

주관연구기관

한국생명공학연구원
Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology

연구책임자

서정우

참여연구자

김철호 , 송재준 , 김민수 , 최종현 , 김성훈 , 오백록 , 강지영

보고서유형

1단계보고서

발행국가

대한민국

언어

한국어

발행년월

2018-11

과제시작연도

2018

주관부처

과학기술정보통신부
Ministry of Science and ICT

등록번호

TRKO201900017116

과제고유번호

1711080346

사업명

한국생명공학연구원연구운영비지원(주요사업비)

DB 구축일자

2019-11-09

키워드

헬스케어.미생물소재.새포공장.대사공학.효소공학.Health care.Microbial materials.Cell factory.Metabolic engineering.Enzyme engineering.

DOI

https://doi.org/10.23000/TRKO201900017116

표 염증반응과정
표 염증반응 조절 신호물질 (lipid mediators)
표 염증반응종결신호물질의 생성과 작용 기작
표 항염증 활성 비교
표 Metabololipidomics-based Personanlized Inflammation Resolution Therapy
표 해양성 오메가-3 다중불포화지방산 DHA 유래 SPMs의 생합성
표 효소반응공정을 통한 SPMs 생합성 연구개요
표 다양한 다당체에 의한 면역증진 모식도
표 C5 경로를 이용한 ALA 생산
표 염증 종결 연구의 과정
표 해양 단세포 미세조류 배양을 통한 고순도 오메가-3 다중불포화지방산 DHA의 생산
표 해양 단세포 미세조류 유지의 가수분해를 통한 유리지방산 생산
표 Lipoxygenase 효소의 다중불포화지방산 수산화 촉매 반응
표 Lipoxygenase 효소의 일반적인 구조
표 본 연구에서 활용된 조류 유래 lipoxygenase 효소의 구조 분석 (분자모델링)
표 인체 유래의 Lipoxygenase 아미노산 서열
표 대장균 발현 시스템 구축을 위해 사용된 올리고 뉴클오타이드 서열
표 본 실험에 사용된 Lipoxygenase 13 종의 PCR 산물 클로닝
표 Lipoxygenase의 유도성 발현 플라스미드 구축
표 Lipoxygenase 단백질의 SDS-PAGE 및 western-blot 확인
표 H3-lipoxygenase 유전자 발현에 대한 IPTG 농도의 영향
표 0.1mM IPTG와 0.1mM FeCl의 조건 하에서 P5-lipoxygenase의 발현
표 0.5mM IPTG와 0.1mM FeCl의 조건 하에서 P5-lipoxygenase의 발현
표 P5-Lipoxygenase 발현 단백질의 정제
표 Lipoxygenase에 의한 linoleic acid 수산화 반응산물 분석
표 Lipoxygenase에 의한 linoleic acid 수산화 활성에 대한 pH와 온도의 영향
표 인체유래 효소에 의한 미세조류 다중불포화지방산 생산
표 식물유래 효소에 의한 미세조류 다중불포화지방산 생산
표 Lipoxygenase에 의한 DHA 수산화 반응에 대한 효소 및 기질 농도의 영향
표 Lipoxygenase에 의한 DHA 수산화 반응에 대한 교반속도 및 반응시간의 영향
표 Levels of variables used in the experimental design
표 Experimental design with real value of RvD5 and PDX
표 ANOVA for full quadratic model of RvD5
표 Model coefficient estimated by multiplies linear regression of RvD5
표 Corresponding contour plot of RvD5
표 ANOVA for full quadratic model of PDX
표 Corresponding contour plot of PDX
표 조합효소반응을 통한 trihydroxy SPMs의 생합성
표 미세조류 다중불포화지방산 유도체의 정제
표 NMR을 통한 미세조류 다중불포화지방산 수산화 유도체의 구조분석
표 SPMs 생산 파일럿 공정 확립
표 SPMs에 의한 면역세포 사이토카인 발현 조절
표 각 그룹별 체중 변화
표 각 그룹별 주간 체중의 증가량
표 각 그룹별 BCS (Body Condition Score) 변화
표 H. erinaceus의 26S ribosomal DNA 및 5.8S ribosomal DNA 서열
표 Hericium erinaceus NEU-L1 균주의 26S rDNA (A)와 5.8S rNDA 염기서열(B)에 기초한 NCBI DB에 등록된 유사 버섯 균주의 26S rDNA와 5.8S rDNA의 유전학적 상관관계 분석
표 H. erinaceus 자실체(fruiting body) 시료 1, 2, 3에 존재하는 지방산의 조성 비교
표 Hericium erinaceus 자실체에 포함되어 있는 글루칸의 함량 분석
표 노루궁뎅이버섯 자실체의 transcriptome analysis (Denovo assembly) 분석 raw data 및 단백질을 코딩하고 있는 DNA의 평균적인 크기 분포
표 BLAST 분석을 통한 데이터베이스 상에서 노루궁뎅이버섯 자실체에서 상동성을 갖는 유전자, novel gene의 분포 및 발현/와 비발현 유전자의 분포(A) 및 분석된 버섯 유전자와 상동성을 갖는 organism과의 유전자 분포도(B)
표 H. erinaceus의 다당체 분해 및 생합성에 관련된 유용 유전자
표 노루궁뎅이버섯 균사체와 자실체의 전사체 분석 결과 비교 결과
표 노루궁뎅이 버섯의 균사체와 자실체에서의 CAZyme 그룹의 다양성 비교 분석
표 버섯 균사체와 자실체의 전사체에서 발현되는 CAZyme 효소 그룹 중 GHs와 GTs 효소의 개별적 발현 양상 비교 분석
표 버섯 균사체와 자실체의 전사체에서 발현되는 CAZyme 효소 그룹 중 AAs, PLs 효소와 CBM의 개별적 발현 양상 비교 분석
표 노루궁뎅이 버섯 폐배지에서의 laccase 효소의 추출 방법 및 ABTS 기질을 이용한 laccase 활성 측정 방법
표 노루궁뎅이버섯 폐배지에서 존재하는 주 laccase 효소의 부분정제 및 단백질 확인
표 버섯 폐배지로부터 laccase 회수 방법 구축 및 제재화 상태의 laccase 효소
표 노루궁뎅이버섯 자실체에 존재하는 다당체 및 당성분 분석
표 E. tarda 배양 상등액의 mannose 분석 (HPLC) A; 1 day, B; 3 day, C; 5 day, D; 7 day, E; 9 day
표 유산균 배양 상등액에 잔존하는 mannose 함량 (mg/mL) A; mannose assay, B; HPLC
$E. tarda 배양 상등액의 이온교환 컬럼으로 분리한 결과 blue line : UV280 nm, green line : 0.5 M NaCl concentration, red line : fraction$ 표 E. tarda 배양 상등액의 이온교환 컬럼으로 분리한 결과 blue line : UV280 nm, green line : 0.5 M NaCl concentration, red line : fraction
표 배양일에 따른 D-mannose 함량 (g/L)
표 배양 샘플의 TLC 결과 1; L. mesenteroides 산 가수분해, 2; L. casei 산 가수분해, 3; L. mesenteroides 효소 가수분해, 4; L. casei 효소 가수분해
표 배지 내 당 종류에 따른 mannose 생성량 비교
표 L. mesenteroides의 배지 내 당 종류에 따른 mannose 생성량 확인 (HPLC)
표 L. casei의 배지 내 당 종류에 따른 mannose 생성량 비교
표 L. casei의 배지 내 당 종류에 따른 mannose 생성량 확인 (HPLC)
표 fcnA 유전자 및 그 아미노산 서열
표 E. coli (BL21)에서 발현위한 발현 벡터(a)와 단백질 발현 후 SDS-PAGE결과
표 후코이단 분해효소 FcnA의 발현 조건 확인
표 Pseudoalteromonas citrea, Sphingomonas paucimobilis, ormosa algae의 genomic DNA
표 DNA plot of P. citrea genome
표 DNA plot of F. algae genome
표 Pseudoalteromonas citrea ATCC29719의 유전체 분석 결과
표 Sphingomonas paucimobilis KCTC2835의 유전체 분석 결과
표 Formosa algae로부터 확보된 Fa0845와 Fa0844와의 아미노산 서열 비교
표 Formosa algae로부터 확보된 Fa0845와 Fa0844와의 아미노산 서열 비교 (계속)
표 Formosa algae로부터 확보된 Fa0845와 Fa0844와의 아미노산 서열 비교 (계속)
표 Fa0845와 Fa0844를 위한 프라이머
표 Fa0845와 Fa0844의 PCR product와 발현 벡터 제작
표 Carbohydrate-polyacrylamide gel 전기 영동을 통한 fucoidanase 활성 분석
표 대장균의 C5 pathway
표 E. coil, S. typimurium, C. freundii hemA 단백질의 아미노산 서열 비교
표 E. coli, S. typimurium,C. glutamicum hemA 단백질의 아미노산 서열 비교
표 hemA의 PCR 전기영동사진
표 SDS-PAGE 젤 전기영동을 통한 hemA 발현양 확인
표 Ehrlich′s reagent를 이용한 ALA 생산량 측정 방법 및 농도 정량을 위한 표준곡선
표 다양한 종 유래의 hemA 유전자를 이용한 ALA 생산량 비교
표 C. glutamicum과 E. coli, S. Typhimurium C. freundii의 tRNAGlu 구조
표 hemA-L의 발현양상 SDS-PAGE 분석
표 hemA-L 발현 균주의 ALA 생산 비교
표 다양한 OD에서의 Induction에 따른 ALA 생산량 및 대장균의 OD값
표 이종 gltX의 아미노산 서열비교
표 Two vector system의 모식도
표 pACYC vector 및 각 종 gltX 유전자 PCR 후 전기영동 사진
표 pACYC::gltX 발현 SDS-PAGE 젤 전기영동 사진
표 Two vector system을 통한 ALA의 생산량
표 pUC::C.f hemA-L-C.f gltX 모식도 및 gltX 클로닝
표 SDS-PAGE 젤 전기영동을 이용한 pUC::C.f hemA-L-C.f gltX 재조합 플라스미드의 발현양상 관찰
표 pUC::C.f hemA-L-C.f gltX를 이용한 ALA의 생산량 확인
표 M9과 R/2에서의 ALA의 생산량 및 OD
표 Yeast 첨가량에 따른 ALA의 생산량 및 OD 확인
표 발효를 통한 ALA의 생산
표 발효를 통한 ALA의 생산
표 glucose catabolism and 2,3-butanediol synthesis pathway
표 The structures of four tautomers of 2-ketogluconic acid in aqueous solution
표 Batch culture of K. pneumoniae CGMCC 1.6636 and K. pneumoniae ΔbudA in bioreactor, the culture pH was stable at 5. (A) glucose, 2-ketogluconic acid and cell density curves of K. pneumoniae CGMCC 1.6636; (B) organic acid and 2,3-butanediol curves of K. pneumoniae CGMCC 1.6636; (C) glucose, 2-ketogluconic acid and cell density curves of K. pneumoniae ΔbudA; (D) organic acid curves of K. pneumoniae ΔbudA
표 Batch culture of K. pneumoniae CGMCC 1.6636 and K. pneumoniae ΔbudA in bioreactor, the culture pH was stable at 7; (A) glucose, 2-ketogluconic acid and cell density curves of K. pneumoniae CGMCC 1.6636; (B) organic acid and 2,3-butanediol curves of K. pneumoniae CGMCC 1.6636; (C) glucose, 2-ketogluconic acid and cell density curves of K. pneumoniae ΔbudA; (D) organic acid curves of K. pneumoniae ΔbudA
표 Effect of pH on gluconic acid production by K. pneumoniae Δgad. A, cell density; B, glucose; C, gluconic acid; D, 2,3-butanediol; E, acetoin; F, acetic acid. pH 4.5 (square), pH 5.0 (circle), pH 5.5 (up triangle), pH 6.0 (down triangle)
표 Effect of culture pH and the activity of gluconate dehydrogenase on xylonic acid production. A, B, K. pneumoniae culture at two-stage fermentation; C, D, K. pneumoniae- Δgad culture at two-stage fermentation; E, F, K. pneumoniae culture at neutral condition; G, H, K. pneumoniae-Δgad culture at neutral condition. Cell density (circle, black line); Xylose (filled square red line); Acetic acid (up triangle magenta line); Xylonic acid (square blue line)
표 Manmade isobutanol synthesis pathway in E. coli . B: Native isobutanol synthesis pathways in K. pneumoniae. C, D: 2,3-Butanediol and valine synthesis pathways in K. pneumoniae. adh: alcohol dehydrogenase; alsS: á-acetolactate synthase; budA: á-acetolactate decarboxylase; budB: á-acetolactate synthase; budC: butanediol dehydrogenase; dhaD: glycerol dehydrogenase; dhaT:1,3-propanediol oxidoreductase; ilvBN: AHAS I; ilvC: acetohydroxy acid isomeroreductase; ilvD: dihydroxy acid dehydratase; ilvE: transaminase; ilvGM: AHAS II; ilvIH: AHAS III; ipdC: indole-3-pyruvate decarboxylase; kivd: 2-ketoacid decarboxylase; ldhA: lactate dehydrogenase; yqhD: aldehyde reductase
표 1H and 13C NMR chemical shift for 2-ketoisovalerate
표 Roles of α-acetolactate synthase isoenzymes in 2-ketoisovalerate and isobutanol production. A: briefly of 2-ketoisovalerate productions; B: fermentation processes. ÄbudA-ÄldhA-ÄbudB: K. pneumoniae ÄbudA-ÄldhA-ÄbudB (filled square); ÄbudA-ÄldhA-ÄilvBN: K. pneumoniae ÄbudA-ÄldhA-ÄilvBN (filled circle); ÄbudA-ÄldhA-ÄilvIH: pneumoniae ÄbudA-ÄldhA-ÄilvIH (filled triangle)
표 2-Ketoisovalerate and isobutanol production by α-acetolactate synthase isoenzymes complementation strains.A: briefly of 2-ketoisovalerate productions; B: fermentation processes. ÄbudA-ÄldhA-budB: K. pneumoniae ÄbudA-ÄldhA-budB (filled square); ÄbudA-ÄldhA-ilvBN: K. pneumoniae ÄbudA-ÄldhA-ilvBN (filled circle); ÄbudA-ÄldhA-ilvIH: K. pneumoniae ÄbudA-ÄldhA-ilvIH (filled triangle)
표 Isobutanol dehydrogenase activity of enzymes A, With NADPH; B, With NADH
표 Isobutanol production with isobutyraldehyde as substrate by alcohol dehydrogenases disrupted strains of K. pneumoniae. Wild-type K. pneumoniae (filled square); ÄyqhD: K. pneumoniae ÄyqhD (filled circle); ÄbudC-ÄdhaD: K. pneumoniae ÄbudC-ÄdhaD (filled triangle); E. coli: E. coli BW25113 (filled inverted triangle). Isobutyraldehydeadd time is set as 0 min in this figure
표 Production of 2-ketoisovalerate and isobutanol in terms of performance
표 Kinetic characteristic of Ipdc using 2-ketoisovalerate as substrate
표 Kinetic characteristic of Ipdc using pyruvate as substrate
표 Kinetic characteristic of Kivd using 2-ketoisovalerate as substrate
표 Kinetic characteristic of Kivd using pyruvate as substrate
표 Km and Vmax values of Ipdc and Kivd with 2-ketoisovalerate and pyruvate as substrate
표 production with 2-ketoisovalerate as the co-substrate
표 Fed batch fermentation of K. pneumoniae ΔbudA-ΔldhA-(ipdC) without induction Without induction, 2.3 g/l 2-ketoisovalerate was accumulated in the fermentation broth at 22 h culture, and its concentration decreased to the end. 6.5 g/L isobutanol was synthesized at 60 h culture. The conversion ration of glucose to isobutanol is 0.15 mol/mol. By-products of the process were still acetic acid and ethanol
표 2,3-부탄디올 생산 비교
표 Paenibacillus polymyxa DSM365 균주 배양액의 대사물질 분석
표 UV 조사법에 의해 선발된 DSM365 변이균주의 2,3-부탄디올 생산량 분석
표 공기주입량에 따른 D-2,3-부탄디올 생산량 비교
표 교반속도에 따른 D-2,3-부탄디올 생산량 비교
표 식물 병원균 저항성 증진
표 병원균 감염과 함께 2,3-BD를 농도에 따라 처리한 후 ROS 축적 관찰
표 병원균 감염과 2,3-BD를 함께 처리한 후 잎의 위치에 따른 ROS 축적 관찰
표 2,3-BD 농도에 따른 세포 손상 확인
표 병원균과 2,3-BD를 같이 처리한 후 표현형 관찰
표 병원균과 2,3-BD를 함께 처리한 후 recovery 확인
표 WT 식물체에 병원균과 2,3-BD를 함께 처리한 후 ROS 생성 및 세포 손상 마커 유전자의 발현 분석
표 WT 식물체에 병원균과 2,3-BD를 함께 처리한 후 항산화효소 유전자의 발현 분석
표 WT 식물체에 병원균과 2,3-BD를 함께 처리한 후 PR 유전자의 발현 분석
표 NPR1-S 식물체에 병원균 감염과 2,3-BD를 함께 처리한 후 ROS 생성 유전자와 cell death marker 유전자의 발현 확인
표 NPR1-S 식물체에 병원균 감염과 2,3-BD를 함께 처리한 후 PR 유전자의 발현 확인
표 p35S::NPR1-GFP 식물체에 병원균 감염과 2,3-BD를 함께 처리한 후 total단백질에서 NPR1-GFP단백질의 oligomer와 monomer의 변화
표 고염분 스트레스에서 NPR1 유전자 발현 확인
표 NPR1 유전자의 phylogenetic tree 및 세포내 위치 (WoLF PSORT 분석)
표 고염분 스트레스에서 NPR1 유전자 발현 확인
표 고염분 스트레스 반응에서 pNPR::NPR1-GFP protoplast 의 엽록체와 핵에서의 Image J를 통한 형광 측정
표 고염분 스트레스를 처리한 pNPR1::NPR1-GFP protoplast의 NPR1-GFP 단백질의 이동관찰
표 고염분 스트레스를 처리한 pNPR1::NPR1-GFP protoplast의 엽록체 스트로마 단백질, 핵단백질에서 oligomer 와 monomer의 변화
표 고염분 스트레스를 처리한 후 p35S::Trp-NPR1-GFP protoplast의 NPR1 이동 관찰
표 고염분 스트레스를 처리한 pNPR1::NPR1-GFP protoplast의 엽록체 스트로마 단백질, 핵단백질에서 oligomer 와 monomer의 변화
표 고염분 스트레스 처리 후 p35S::NPR1-GFP와 p35S:Trp-NPR1-GFP 식물체의 뿌리에서 NPR1 이동 관찰
표 p35S::Trp-NPR1-GFP 식물체에 고염분 스트레스와 Lincomycin을 처리하여 공변세포의 엽록체와 핵에서 NPR1-GFP 측정
표 p35S::Trp-NPR1-GFP 식물체에 고염분 스트레스와 Lincomycin을 처리하여 공변세포의 NPR1-GFP 이동 관찰
표 p35S::NPR1-GFP와 p35S::Trp-NPR1-GFP 식물체의 protoplast에 고염분 스트레스와 Lincomycin을 처리하여 NPR1-GFP 이동 관찰
표 고염분 스트레스 반응에 따른 NPR1의 신호전달 모델
표 담배 FAD3, FAD7 유전자 분리용 PCR primer 정보
표 NtFAD3, NtFAD7 유전자의 pGEM 벡터로의 클로닝
표 고염분 스트레스 처리 후 오메가 3 합성 유전자의 발현 확인
표 병원균 감염 후 오메가 3 합성 유전자 발현 확인
표 스트레스 호르몬인 SA와 JA 처리 후 오메가 3 합성 유전자 발현 확인
표 에틸렌 전구체인 ACC 처리 후 오메가 3 합성 유전자의 발현 확인
표 H2O2 처리후 ACC 처리 후 오메가 3 합성 유전자의 발현 확인
표 오메가 3를 농도에 따라 처리한 후 ROS 축적 관찰
표 1% 오메가 3를 처리한 후 조직내 ROS 축적 관찰
표 병원균 감염과 오메가 3를 처리한 후 Image J를 통한 ROS 형광 측정
표 병원균 감염과 오메가 3를 처리한 후 공변세포의 ROS 축적 관찰
표 병원균 감염과 오메가 3를 처리한 후 식물체 조직 내 ROS 축적 관찰
표 병원균 감염과 오메가 3를 처리한 후 세포 손상 확인
표 병원균 감염과 2,3-BD와 PHS를 함께 처리한 후 오메가 3 유전자 발현 확인
표 고온스트레스를처리한후오메가 3 유전자발현확인
표 엑토인 및 하이드록시엑토인의 구조
표 Metabolic pathway of Ectoine in Halomonas elongata
표 호염성 균주의 채집지 및 배양된 콜로니
표 분리된 균주로부터 ectoine생산성 확인
표 분리된 균주의 16S rRNA 유전자 분석을 통한 동정 결과
표 Halmonas smyrnensis Hs7-1과 Hs7-2의 계통도
표 Halmonas smyrnensis Hs7-1과 Hs7-2의 염도에 따른 ectoine 생산량
표 Halomonas elongata의 ectABC operon 구조
표 ectABC 유전자 확보 및 발현벡터 삽입을 위한 primer 서열
표 Hs, Hs7-1, 그리고 Hs7-2 균주로부터 확보된 ectABC 유전자
표 Hs 균주로부터 확보된 ectABC 유전자 염기서열
표 Hs7-1 균주로부터 확보된 ectABC 유전자 염기서열
표 Hs7-2 균주로부터 확보된 ectABC 유전자 염기서열
표 Hs, Hs7-1 및 Hs7-2 균주의 EctA, EctB, EctC 아미노산 서열
표 E. coli에서 EctA, EctB, 그리고 EctC의 발현을 위한 발현벡터의 제작
표 E. coli BL21에서 EctA, EctB, 그리고 EctC의 발현 확인
표 ectA, ectB 그리고 ectC 유전자 및 이의 발현을 위한 발현벡터의 제작
표 단백질 발현 유도
표 EctC expression cassette 및 이를 위한 PCR 프라이머
표 EctABC 발현벡터에 EctC expression cassette 삽입을 위한 DNA 확인
표 +ectC 플라스미드의 방향성 확인
표 pET21a-ectABC+ectC 플라스미드의 방향성 확인
표 E. coli BL21에서 EctA, EctB, 그리고 EctC의 발현 확인
표 Aspartate로부터 ectoine으로 bioconversion을 위한 효소 발현
표 엑토인과 하이드록시엑토인의 standard curve
표 HPLC 분석을 통한 엑토인 확인
표 균주에 따른 가바 생산
표 Pathway for glucose and xylose utilization for GABA production in recombinant C. glutamicum
표 Vectors constructed for heterologous expression of mutated glutamate decarboxylase (Glu89Gln/△452-466), xylose isomerase and xylulokinase from E. coli
표 Glutamate production of different C. glutamicum strains after 120 h of flask culture. Concentrations of glutamate, lactate and acetate is shown
표 Time profiles of carbon utilization of recombinant C. glutamicum ATCC　13032　T(○, ○), C. glutamicum KCTC 1447 (△, △) and C. glutamicum KCTC 1852(□, □) using different combinations of carbon sources: A- 50 g/L glucose, B – 40 g/L glucose, 10 g/L xylose, C – 30 g/L glucose and 20 g/L xylose, D- 20 g/L glucose and 30 g/L xylose
표 Glutamate and GABA production of C. glutamicum ATCC 13032, C. glutamicum KCTC 1447 and C. glutamicum KCTC 1852 expressing glutamate decarboxylase, xylose isomerase and xylulokinase under strong synthetic promoters, H30 and H36, after 120 h of flask cultivation in medium containing different combinations of carbon sources: A – 50 g/L glucose, B-40g/L glucose and 10 g/L xylose, C – 30 g/L glucose and 20 g/L xylose, D- 20 g/L glucose and 30 g/L xylose
표 GABA production of different glutamate-overproducing C. glutamicum strains after 120 h of cultivation with GP1 medium containing different concentrations of glucose and xylose
표 fruit bunch biosugar solution used as carbon source
표 Time profile of carbon utilization (A) and GABA production (B) of recombinant C. glutamicum KCTC 1852 expressing glutamate decarboxylase, xylose isomerase and xylulose kinase under strong H36 promoter in shake flask culture set-up with EFB solution and chemical grade sugars with ratio of 45 g/L glucose and 5 g/L xylose after 120 h. Legend: EFB Solution (Glucose -▲, Xylose - ■) ; Chemical grade sugar solution (Glucose -▲, Xylose - ■)
표 Time profile of carbon source utilization and metabolite production of recombinant C. glutamicum KCTC 1852 expressing key genes glutamate decarboxylase, xylose isomerase and xylulokinase from E. coli under strong synthetic promoter, H36 in batch culture fermentation using chemical grade sugars at pH 6 (A) and pH 7 (B) and EFB biosugar at pH 6 (C) and pH 7 (D) with glucose-xylose ratio of 90:10. Legends: cell growth(▲), glucose (△), xylose (■), glutamate (Ο), GABA (●)
표 Timeprofile of GABA production by recombinant C. glutamicum strains expressing GadBmut under Pvgb (A) and Pvgb8 (B)
표 GABA production by recombinant C.glutamicum strains expressing GadBmut under different synthetic promoters after 120 h of flask cultivation

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