강활의 기원식물 중 한강활(Ostericum koreanum)과 중국강활(Notopterygium incisum)을 methanol 추출하여 한강활은 극성에 따라 chloroform과 water로 분획한 후, 이중 chloroform 분획을사용하여 성분분리를 실시하였고 중국강활은 용매의 극성에 따라 hexane, ethyl acetate, butanol, water로 분획하여, 이 중 furanocoumarin성분을 다량 함유하고 있는 ethyl acetate 분획에 대하여 성분분리를 실시하였다. Ethyl acetate 분획을 silica gel을 이용한 gel chromatography를 통해 한강활에서 1개, 중국강활에서 4개, 총 5개의 화합물을 얻었다. 얻어진 화합물은 물리화학적 성상과 문헌조사, 각종 기기분석(1H-NMR, 13C-NMR, Mass)을 통하여 구조동정을 실시하였고 그 결과 CompoundⅠ은 notopterol (C21H22O5)로, CompoundⅡ는 pregrenolone (C21H32O2), CompoundⅢ은 nodakenine(C20H24O9)으로, CompoundⅣ는 ...
강활의 기원식물 중 한강활(Ostericum koreanum)과 중국강활(Notopterygium incisum)을 methanol 추출하여 한강활은 극성에 따라 chloroform과 water로 분획한 후, 이중 chloroform 분획을사용하여 성분분리를 실시하였고 중국강활은 용매의 극성에 따라 hexane, ethyl acetate, butanol, water로 분획하여, 이 중 furanocoumarin성분을 다량 함유하고 있는 ethyl acetate 분획에 대하여 성분분리를 실시하였다. Ethyl acetate 분획을 silica gel을 이용한 gel chromatography를 통해 한강활에서 1개, 중국강활에서 4개, 총 5개의 화합물을 얻었다. 얻어진 화합물은 물리화학적 성상과 문헌조사, 각종 기기분석(1H-NMR, 13C-NMR, Mass)을 통하여 구조동정을 실시하였고 그 결과 CompoundⅠ은 notopterol (C21H22O5)로, CompoundⅡ는 pregrenolone (C21H32O2), CompoundⅢ은 nodakenine(C20H24O9)으로, CompoundⅣ는 ferulic acid (C10H10O4)로 CompoundⅤ는 isoimperatorin(C16H14O4)으로 확인 동정 하였다. 분리된 성분 중 주성분으로 분리된 Compound Ⅰ, Ⅲ, Ⅴ와 식약청에서 제공 받은 그 외의 주성분인 oxypeucedanin, bisabolangelone, imperatorin 등 총 6개의 화합물을 지표물질로 하여 강활의 HPLC를 통한 분석법 개발 및 함량 평가를 실시하였다. HPLC 분석을 위하여 AKZO NOBEL Kromasil 100-5 C18 (250×4.6mm) column을 사용하였고 이동상으로는 물과 아세토니트릴을 75 : 25비율에서 30분간 35 : 65로 변화시켜 사용하였고, UV 254nm 파장에서 확인하였다. 마지막으로, 수집한 38종의 강활 샘플에 대하여 PCA를 실시하여 기원식물 및 재배지역에 대한 강활의 기원별 표준화를 실시하였다. 현재 국내에서는 공정서에 수재된 강활이 이와 같이 성분 함유량의 차이가 큼에도 불구하고 구별되어 사용되지 않아 유통에 있어서 문제가 되고 있다. 특히 중국, 일본과는 다르게 Ostericum koreanum도 강활로 채택하고 있으나, 이 또한 재배 방식에 따라 남강활과 북강활로 나뉘어 재배된 후 수입된 중국강활 등과 함께 ‘강활’로써 혼용되어 사용되고 있다. 이와 같은 현실에서 강활의 종별 성분분리 및, 분리된 성분을 이용한 함량 모니터링은 다 빈도로 사용되는 한약재인 강활의 품질관리를 위한 과학적인 근거를 제시하고, 각 종을 구분지음으로서, 강활 선택 시의 기준일 될 수 있으므로 유통 상의 문제점을 극복하는데 하나의 지표 가 될 수 있을 것으로 사료된다.
강활의 기원식물 중 한강활(Ostericum koreanum)과 중국강활(Notopterygium incisum)을 methanol 추출하여 한강활은 극성에 따라 chloroform과 water로 분획한 후, 이중 chloroform 분획을사용하여 성분분리를 실시하였고 중국강활은 용매의 극성에 따라 hexane, ethyl acetate, butanol, water로 분획하여, 이 중 furanocoumarin성분을 다량 함유하고 있는 ethyl acetate 분획에 대하여 성분분리를 실시하였다. Ethyl acetate 분획을 silica gel을 이용한 gel chromatography를 통해 한강활에서 1개, 중국강활에서 4개, 총 5개의 화합물을 얻었다. 얻어진 화합물은 물리화학적 성상과 문헌조사, 각종 기기분석(1H-NMR, 13C-NMR, Mass)을 통하여 구조동정을 실시하였고 그 결과 CompoundⅠ은 notopterol (C21H22O5)로, CompoundⅡ는 pregrenolone (C21H32O2), CompoundⅢ은 nodakenine(C20H24O9)으로, CompoundⅣ는 ferulic acid (C10H10O4)로 CompoundⅤ는 isoimperatorin(C16H14O4)으로 확인 동정 하였다. 분리된 성분 중 주성분으로 분리된 Compound Ⅰ, Ⅲ, Ⅴ와 식약청에서 제공 받은 그 외의 주성분인 oxypeucedanin, bisabolangelone, imperatorin 등 총 6개의 화합물을 지표물질로 하여 강활의 HPLC를 통한 분석법 개발 및 함량 평가를 실시하였다. HPLC 분석을 위하여 AKZO NOBEL Kromasil 100-5 C18 (250×4.6mm) column을 사용하였고 이동상으로는 물과 아세토니트릴을 75 : 25비율에서 30분간 35 : 65로 변화시켜 사용하였고, UV 254nm 파장에서 확인하였다. 마지막으로, 수집한 38종의 강활 샘플에 대하여 PCA를 실시하여 기원식물 및 재배지역에 대한 강활의 기원별 표준화를 실시하였다. 현재 국내에서는 공정서에 수재된 강활이 이와 같이 성분 함유량의 차이가 큼에도 불구하고 구별되어 사용되지 않아 유통에 있어서 문제가 되고 있다. 특히 중국, 일본과는 다르게 Ostericum koreanum도 강활로 채택하고 있으나, 이 또한 재배 방식에 따라 남강활과 북강활로 나뉘어 재배된 후 수입된 중국강활 등과 함께 ‘강활’로써 혼용되어 사용되고 있다. 이와 같은 현실에서 강활의 종별 성분분리 및, 분리된 성분을 이용한 함량 모니터링은 다 빈도로 사용되는 한약재인 강활의 품질관리를 위한 과학적인 근거를 제시하고, 각 종을 구분지음으로서, 강활 선택 시의 기준일 될 수 있으므로 유통 상의 문제점을 극복하는데 하나의 지표 가 될 수 있을 것으로 사료된다.
By using solvent, hexane, ethyl acetate, butanol, water fractions were obtained from the methanol extract of Notopterygium incisum and chloroform and water fractions were obtained from the Ostericum koreanum. With ethyl acetate fraction in Notopterygium incisum and 4 components were isolated and wit...
By using solvent, hexane, ethyl acetate, butanol, water fractions were obtained from the methanol extract of Notopterygium incisum and chloroform and water fractions were obtained from the Ostericum koreanum. With ethyl acetate fraction in Notopterygium incisum and 4 components were isolated and with chloroform fraction in Ostericum koreanum, 1 component was isolated. All 5 components were obtained by gel column chromatography using silica gel. We reviewed that compoundⅠ was notopterol(C21H22O5), compoundⅡ was pregrenolone(C21H32O2), compoundⅢ was nodakenin, compoundⅣ was ferulic acid (C10H10O4) and compound Ⅴ was isoimperatorin(C16H14O4) through physicochemical data, reference and spectroscopic methods. (1H-NMR,13C-NMR, Mass spectrometry) CompoundⅠ, Ⅲ ,Ⅴ, oxypeucedanin, bisabolangelone and imperatorin were decided as representative components of Osterici Radix. We established HPLC analytical method by using representative components and 30 commercial samples which were collected considering to origins and various cultivated area. The HPLC fingerprinting was successfully achieved with a AKZO NOBEL Kromasil 100-5C18 (250×4.6mm) column . The mobile phase consisted of water(A) and acetonitrile(B) using gradient method of 75(A) to 35(A) for 30min. The fingerprint of chromatograms were recorded at an optimized wavelength of 254nm. This developed analytical method was validated with specificity, selectivity, accuracy and precision. In addition, principal component analysis(PCA) was performed on the analytical data of 38 different Osterici Radix samples in order to classify samples collected from different regions and origins. In spite of botanical origin difference, Osterici Radix were circulated without standardization or clarification of their origins in the commercial medicinal markets in Korea. Using isolated compounds for measuring their contents is the meaning of suggesting distinctive components among Osterici Radixes. We hope that this study contributes to supply of the standardization and quality control of herbal medicine.
By using solvent, hexane, ethyl acetate, butanol, water fractions were obtained from the methanol extract of Notopterygium incisum and chloroform and water fractions were obtained from the Ostericum koreanum. With ethyl acetate fraction in Notopterygium incisum and 4 components were isolated and with chloroform fraction in Ostericum koreanum, 1 component was isolated. All 5 components were obtained by gel column chromatography using silica gel. We reviewed that compoundⅠ was notopterol(C21H22O5), compoundⅡ was pregrenolone(C21H32O2), compoundⅢ was nodakenin, compoundⅣ was ferulic acid (C10H10O4) and compound Ⅴ was isoimperatorin(C16H14O4) through physicochemical data, reference and spectroscopic methods. (1H-NMR,13C-NMR, Mass spectrometry) CompoundⅠ, Ⅲ ,Ⅴ, oxypeucedanin, bisabolangelone and imperatorin were decided as representative components of Osterici Radix. We established HPLC analytical method by using representative components and 30 commercial samples which were collected considering to origins and various cultivated area. The HPLC fingerprinting was successfully achieved with a AKZO NOBEL Kromasil 100-5C18 (250×4.6mm) column . The mobile phase consisted of water(A) and acetonitrile(B) using gradient method of 75(A) to 35(A) for 30min. The fingerprint of chromatograms were recorded at an optimized wavelength of 254nm. This developed analytical method was validated with specificity, selectivity, accuracy and precision. In addition, principal component analysis(PCA) was performed on the analytical data of 38 different Osterici Radix samples in order to classify samples collected from different regions and origins. In spite of botanical origin difference, Osterici Radix were circulated without standardization or clarification of their origins in the commercial medicinal markets in Korea. Using isolated compounds for measuring their contents is the meaning of suggesting distinctive components among Osterici Radixes. We hope that this study contributes to supply of the standardization and quality control of herbal medicine.
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