대식세포와 염증성 질환 사이의 밀접한 관계를 고려할 때, 약물, 유전자 및 소분자를 대식세포로 전달하기 위한 전달체의 설계가 중요하다. 이 연구에서 엑소좀의 표면 전하는 시트라콘산에 의해 높은 음전하로 쉽게 변형되었다. 시트라콘산 접합 엑소좀은 기존 엑소좀과 유사한 유체역학적 크기에도 불구하고 - 15 mV의 엑소좀의 표면 전하로부터 – 50 mV까지 감소된 표면 전하를 나타내었다. 혈청 단백질이 없는 배양액의 경우, 엑소좀 및 시트라콘산 접합 엑소좀은 ...
대식세포와 염증성 질환 사이의 밀접한 관계를 고려할 때, 약물, 유전자 및 소분자를 대식세포로 전달하기 위한 전달체의 설계가 중요하다. 이 연구에서 엑소좀의 표면 전하는 시트라콘산에 의해 높은 음전하로 쉽게 변형되었다. 시트라콘산 접합 엑소좀은 기존 엑소좀과 유사한 유체역학적 크기에도 불구하고 - 15 mV의 엑소좀의 표면 전하로부터 – 50 mV까지 감소된 표면 전하를 나타내었다. 혈청 단백질이 없는 배양액의 경우, 엑소좀 및 시트라콘산 접합 엑소좀은 RAW264.7 세포 및 DC2.4 세포로 비슷하게 전달되었다. 그러나 시트라콘산 접합 엑소좀은 높은 음전하로 인해 혈청 단백질의 존재하는 배양액에서 RAW264.7 세포에 기존 엑소좀의 세포 내 흡수보다 우수한 세포 내 흡수를 보였다. 그러나 DC2.4 세포에 대한 엑소좀 및 시트라콘산 접합 엑소좀의 세포 내 흡수에는 유의미한 차이가 없었다. 종합하면, 시트라콘산 접합을 통해 엑소좀 표면에 간단한 표면 개질은 대식세포로 나노 크기의 엑소좀 (~ 60 nm)의 전달을 개선했으며, 이는 효율적인 대식세포 전달을 위한 전달체 개발에 유망한 전략으로 이용될 수 있을 것으로 생각된다.
대식세포와 염증성 질환 사이의 밀접한 관계를 고려할 때, 약물, 유전자 및 소분자를 대식세포로 전달하기 위한 전달체의 설계가 중요하다. 이 연구에서 엑소좀의 표면 전하는 시트라콘산에 의해 높은 음전하로 쉽게 변형되었다. 시트라콘산 접합 엑소좀은 기존 엑소좀과 유사한 유체역학적 크기에도 불구하고 - 15 mV의 엑소좀의 표면 전하로부터 – 50 mV까지 감소된 표면 전하를 나타내었다. 혈청 단백질이 없는 배양액의 경우, 엑소좀 및 시트라콘산 접합 엑소좀은 RAW264.7 세포 및 DC2.4 세포로 비슷하게 전달되었다. 그러나 시트라콘산 접합 엑소좀은 높은 음전하로 인해 혈청 단백질의 존재하는 배양액에서 RAW264.7 세포에 기존 엑소좀의 세포 내 흡수보다 우수한 세포 내 흡수를 보였다. 그러나 DC2.4 세포에 대한 엑소좀 및 시트라콘산 접합 엑소좀의 세포 내 흡수에는 유의미한 차이가 없었다. 종합하면, 시트라콘산 접합을 통해 엑소좀 표면에 간단한 표면 개질은 대식세포로 나노 크기의 엑소좀 (~ 60 nm)의 전달을 개선했으며, 이는 효율적인 대식세포 전달을 위한 전달체 개발에 유망한 전략으로 이용될 수 있을 것으로 생각된다.
Considering the close relation between macrophages and inflammatory diseases, the design of carriers for the delivery of drugs, genes, and small molecules into macrophages is crucial. In this study, the surface charge of exosome (EXO) was easily modified to highly negative charge by citraconylation....
Considering the close relation between macrophages and inflammatory diseases, the design of carriers for the delivery of drugs, genes, and small molecules into macrophages is crucial. In this study, the surface charge of exosome (EXO) was easily modified to highly negative charge by citraconylation. Prepared citraconylated EXO (cit-EXO) exhibited a significantly reduced surface charge down to – 50 from – 15 mV of EXO surface charge, despite similar hydrodynamic size. In the absence of serum proteins, both EXO and cit-EXO were similarly internalized into RAW264.7 cells and DC2.4 cells. However, cit-EXO exhibited superior intracellular uptake to that of EXO for RAW264.7 cells in the presence of serum proteins because of highly negative charges. However, there were no significant differences in intracellular uptake of EXO and cit-EXO for DC2.4 cells. Taken together, simple surface modification onto EXOs via citraconylation improved delivery of nanosized EXO (~60 nm) into macrophages, which could serve as a promising strategy for the development of carriers for efficient macrophage delivery.
Considering the close relation between macrophages and inflammatory diseases, the design of carriers for the delivery of drugs, genes, and small molecules into macrophages is crucial. In this study, the surface charge of exosome (EXO) was easily modified to highly negative charge by citraconylation. Prepared citraconylated EXO (cit-EXO) exhibited a significantly reduced surface charge down to – 50 from – 15 mV of EXO surface charge, despite similar hydrodynamic size. In the absence of serum proteins, both EXO and cit-EXO were similarly internalized into RAW264.7 cells and DC2.4 cells. However, cit-EXO exhibited superior intracellular uptake to that of EXO for RAW264.7 cells in the presence of serum proteins because of highly negative charges. However, there were no significant differences in intracellular uptake of EXO and cit-EXO for DC2.4 cells. Taken together, simple surface modification onto EXOs via citraconylation improved delivery of nanosized EXO (~60 nm) into macrophages, which could serve as a promising strategy for the development of carriers for efficient macrophage delivery.
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