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문제 정의
- 따라서, 본 연구에서는 열처리 덱스트린을 이용하여 효소 저항성이 보다 높은 난소화성 덱스트린을 제조하기 위한 에탄올의 처리 조건을 설정하였고, 또한 강산성 양이온 교환수지를 이용하여 효소 반응액 중의 저분자와 고분자 당질을 분리함으로써 난소화성 획분이 보다 높은 시료의 제조 가능성을 제시하였다.
- 열처리 덱스트린의 효소 반응 후 분리수지를 이용하여 효소 반웅액 중의 저분자 물질을 분리함으로써 난소화성 획분을 중가시킬 수 있는지 확인하기 위해 본 실험에서는 강산성 양이온 교환수지의 일종인 분리 수지를 사용하였다. 백색 덱스트린을 30%(w/w) 농도로 용해하고, 내열성 a-amylase를 기질 대비 0.
제안 방법
- 또한, 동일한 효소 반응액에 고형분 대비 중량비로 5배의 95% 에탄올을 첨가하여 균일하게 혼합한 다음 상온에서 1, 3, 5, 10 및 24시간 동안 방치하여 침전을 형성시키고 전술한 바와 같이 처리한 후 침전의 수율 둥을 분석하였다. 그리고 위와 같이 제조한 효소 반응액의 농도를 20, 30, 40 및 50%(w/w)로 조절한 다음 고형분 대비 중량비로 5배의 95% 에탄올을 첨가하여 균일하게 혼합하고, 상온에서 3시간 동안 방치하여 침전을 형성시킨 후 전술한 바와 같이 처리한 다음 분석하였다.
- , France)^- 투입하였으며, fraction collector(DC-1200, EYELA, Japan)로 분취시 시간 간격은 전자는 뵨, 그리고 후자는 뵨으로 하였다. 그리고 위와 동일한 효소 반응액을 50% (w/w)로 농축한 후 분리 실험에 적용하였으며, 분리 실험의 조건으로 당액의 통액량은 분리수지 L당 고형분 62.5 g으로 하였고, 나머지 조건은 전술한 바와 동일하게 하였으며, 각 시간대별로 분취된 시료의 당 조성은 HPLC(Waters Co., USA)로 분석하였다. 분석 조건은 용리액를 초순수로 하고, 컬럼은 Aminex Carbohydrate HPX-87C(7.
- 0%로 나타나, 전체적으로 3시간의 방치로 충분한 처리 효과를 거둘 수 있었다. 그리고 효소 반응액의 농도를 20, 30, 40, 50%(w/w)로 조절하고 고형분 대비 중량로 5배의 에탄올을 혼합한 다음 상온에서 3시간 동안 방치하여 생성된 침전을 전과 같이 정제한 후 각 시료의 수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석하여 Fig. 3에 나타내었다. 농도를 20, 30, 40 및 50%(w/w)로 중가시킴에 따라 수율은 각각 21.
- 또한, 난소화성 획분(indigestible fraction)과 식이섬유(dietary fiber) 의 분석에 식이섬유 분석 용 효소 kit(Sigma)를 사용하였고, 열처리 덱스트린의 효소 반응 후 여과시 Tbyo 5A(Advantec, japan), GF/B, GF/F (Whatman, UK) 및 membrane filterfMetricel, Gelman Sciences, USA)를 사용하였다. 그리고, 정제를 위해 양이온(SK 1B, 삼양사) 및 음이온 교환수지 (WA 30, 삼양사)를 사용하였고, 분리수지로서는 Table. 2와 같은 특성을 갖는 강산성 양이온 교환수지(UBK 530, Mitsubishi Kasei Co.
- 높은 난소화성 획분을 갖는 난소화성 덱스트린은 열처리 덱스트린의 효소 가수분해액을 에탄올 또는 강산성 양이온 교환수지(UBK 530)로 처리함으로써 제조하였다. 난소화성 획분, 식이섬유 및 수율을 고려하여 a-amylase와 amyloglucosidase를 반응시킨 가수 분해액으로부터 난소화성 덱스트린을 제조하기 위한 에탄올 처리의 최적 조건은 에탄올을 30%(w/w) 효소 반응액에 고형분 대비 5배로 첨가하여 상온에서 3시간 동안 방치시키는 공정이었다.
- , USA) 덱스트린을 사용하였으며, 내열성 α-amylase(Termamyl 120LS)와 amylogucosidase(AMG 300L)는 Novo사(USA)제품을 사용하였고, p-amylase(BBA-1500)는 Finsugar사(Finland)의 제품을, 전이 효소 (Trans- glucosidase S)는 Amano사(Japan) 제품을 사용하였다. 또한, 난소화성 획분(indigestible fraction)과 식이섬유(dietary fiber) 의 분석에 식이섬유 분석 용 효소 kit(Sigma)를 사용하였고, 열처리 덱스트린의 효소 반응 후 여과시 Tbyo 5A(Advantec, japan), GF/B, GF/F (Whatman, UK) 및 membrane filterfMetricel, Gelman Sciences, USA)를 사용하였다. 그리고, 정제를 위해 양이온(SK 1B, 삼양사) 및 음이온 교환수지 (WA 30, 삼양사)를 사용하였고, 분리수지로서는 Table.
- 상층액을 제거하고, 중류수로 침전을 용해시킨 다음 농축하면서 잔여의 에탄올을 제거하고, 각 시료의 침전수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석하였다. 또한, 동일한 효소 반응액에 고형분 대비 중량비로 5배의 95% 에탄올을 첨가하여 균일하게 혼합한 다음 상온에서 1, 3, 5, 10 및 24시간 동안 방치하여 침전을 형성시키고 전술한 바와 같이 처리한 후 침전의 수율 둥을 분석하였다. 그리고 위와 같이 제조한 효소 반응액의 농도를 20, 30, 40 및 50%(w/w)로 조절한 다음 고형분 대비 중량비로 5배의 95% 에탄올을 첨가하여 균일하게 혼합하고, 상온에서 3시간 동안 방치하여 침전을 형성시킨 후 전술한 바와 같이 처리한 다음 분석하였다.
- 7%로 거의 유사한 수준으로 나타나, 5배의 첨가량으로 충분히 에탄올 처리 효과를 얻을 수 있었다. 또한, 전술한 40%(w/w) 농도의 효소 반응액에 고형분 대비 중량비로 5배의 에탄올을 혼합한 다음 상온에서 1, 3, 5, 10, 24시간 동안 방치하여 생성된 침전을 전과 동일하게 처리한 다음 수율, 난소화성 획분및 식이섬유 함량을 분석하여 Fig. 2에 나타내었다. 에탄올 혼합 후 24시간 동안 방치시 수율은 52.
- 6 mL, 컬럼 온도는 85-C로 하였고, 검출기로는 RI detector!- 사용하였다. 또한, 황색 덱스트린을 30%(w/w) 농도로 열수에 용해하고, a-amylase 를 기질 대비 0.2%(w/w) 수준으로 55℃에서 48시간 동안 반웅시킨 후 전과 동일하게 정제한 다음 분리 실험에 적용하였다. 분리 실험의 조건으로 효소 반웅액의 농도는 50%(w/w)(sp.
- 05%(v/w) 첨가하여 48시간 동안 처리한 다음 정제 과정을 거쳐 에탄올 처리 실험에 이용하였다. 먼저, 효소 반웅액의농도를 40%(w/w)로 조절하고, 고형분 대비 중량비로 3, 5, 7, 10배의 에탄올을 혼합한 다음 상온에서 3시간 방치하여 생성된 침전을 중류수로 용해하고, 농축하면서 잔여 에탄올을 제거한 후 각 시료의 수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석한 결과는 Fig. 1과 같았다. 침전의 수율은 7배의 첨가량^서 51.
- 05%(v/w) 첨가하여 55P에서 48시간 동안 반웅하였다. 반응 종료 후 분말활성탄을 덱스트린 대비 0.7%(w/w) 첨가하여 끓는 시점에서 10초간 처리한 다음 Ibyo 5A 여과지를 이용하여 진공 aspirator(A-3S, EYELA, Japan)로 여과하였다. 이어서, glass filter를 이용하여 GF/B, GF/F로 활성탄을 제거한 후 최종 membrane filter를 거친 다음 rotary vacuum evaporator(NE-1Y EYELA, Japan)로 40%(w/w)까지 농축하였고, 4%(w/w) NaOH 용액로 활성화시킨 음이온 교환수지(WA 30)를 효소 처리액의 2배 부피로 첨가한 후 40℃로 조절된 항온수조에서 정속 교반기로 24시간 동안 교반하여 탈색한 다음 GF/B로 여과하였다.
- 사용하였다. 백색 덱스트린을 30%(w/w) 농도로 용해하고, 내열성 a-amylase를 기질 대비 0.1% (v/w) 수준으로 첨가한 후 95℃에서 2시간 동안 반응시키고, pH를 32로 낮춰 90℃에서 10분간 유지하여 효소를 실활시킨 다음 P-amylase 및 전이효소를 각각 0.05%(v/v)와 0.15%(v/w) 수준으로 동시에 첨가하여 55℃에서 24시간 동안 반응시킨 후 활성탄 처리를 거쳐 최종 0.45 gm 수준까지 정제한 다음 분리 실험에 적용하였다. 분리 실험의 조건으로 효소 반응액의 농도는 28.
- 2%(w/w) 수준으로 55℃에서 48시간 동안 반웅시킨 후 전과 동일하게 정제한 다음 분리 실험에 적용하였다. 분리 실험의 조건으로 효소 반웅액의 농도는 50%(w/w)(sp. gr.= 1.4), 당액의 통액량은 분리수지 L 당 고형분 62.5 g, 당액의 유속은 분당 3.4mL(space velocity = 0.23)로 하여 정량 투입하였고, 당액의 투입 완료 후 초순수를 계속해서 통과시켰으며, fraction collector 분취시 시간 간격은 5분으로 하고, 초기 통액량의 고형분 대비 최종 50%(w/w) 수율로 분취하였다.
- 45 gm 수준까지 정제한 다음 분리 실험에 적용하였다. 분리 실험의 조건으로 효소 반응액의 농도는 28.5%(w/w)(sp. gr.= 1.22), 수지를 채운 유리 컬럼의 jacket 온도는 60℃, 당액의 통액량은 분리수지 L 당 42.9 g, 당액의 유속은 분당 4.4 mL(space velocity = 0.37) 및 9.3 mL(space velocity = 0.8)로 구분하여 정량 펌프(MINIPLUS 3, GUson Co., France)^- 투입하였으며, fraction collector(DC-1200, EYELA, Japan)로 분취시 시간 간격은 전자는 뵨, 그리고 후자는 뵨으로 하였다. 그리고 위와 동일한 효소 반응액을 50% (w/w)로 농축한 후 분리 실험에 적용하였으며, 분리 실험의 조건으로 당액의 통액량은 분리수지 L당 고형분 62.
- 상층액을 제거하고, 중류수로 침전을 용해시킨 다음 농축하면서 잔여의 에탄올을 제거하고, 각 시료의 침전수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석하였다. 또한, 동일한 효소 반응액에 고형분 대비 중량비로 5배의 95% 에탄올을 첨가하여 균일하게 혼합한 다음 상온에서 1, 3, 5, 10 및 24시간 동안 방치하여 침전을 형성시키고 전술한 바와 같이 처리한 후 침전의 수율 둥을 분석하였다.
- 또한, 유동성 수용성 고형물 및 환원당은 미국의 Com Refiners Association에서 제정한 Standard Analytical Methods(SAM)(20)를 이용하였다. 시료의 D.E.(dextrose equivalent)는 어는점과 D.E.와의 상관관계를 이용하는 방법(21)으로 측정하였으며, amylose의 함량은 Sowbhagya 등(22)이 고안한 iodine용액과의 친화력을 이용한 방법으로 분석하였고, 열처리 덱스트린의 최종 농도를 3%(w/w)로 조절하여 HPLC(Watere Co., USA)로 당 조성을 분석하였는데, 조건은 전술한 바와 동일하게 하였다.
- 위의 효소 반응액에 고형분 대비 중량비로 3, 5, 7 및 10배의 95% 에탄올을 첨가하여 균일하게 혼합한 다음 상온에서 3시간 방치하여 침전을 형성시켰다. 상층액을 제거하고, 중류수로 침전을 용해시킨 다음 농축하면서 잔여의 에탄올을 제거하고, 각 시료의 침전수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석하였다.
- 2%(v/w)로 첨가하여 2시간 동안 반응시켰다. 이어서, IN HC1용액으로 pH를 3으로 낮춘 다음 90℃에서 10분간 유지하여 효소를 실활시키고, 다시 pH를 4.5로 조절한 후 amyloglucosidag를 기질 대비 0.05%(v/w) 첨가하여 55P에서 48시간 동안 반웅하였다. 반응 종료 후 분말활성탄을 덱스트린 대비 0.
- 7%(w/w) 첨가하여 끓는 시점에서 10초간 처리한 다음 Ibyo 5A 여과지를 이용하여 진공 aspirator(A-3S, EYELA, Japan)로 여과하였다. 이어서, glass filter를 이용하여 GF/B, GF/F로 활성탄을 제거한 후 최종 membrane filter를 거친 다음 rotary vacuum evaporator(NE-1Y EYELA, Japan)로 40%(w/w)까지 농축하였고, 4%(w/w) NaOH 용액로 활성화시킨 음이온 교환수지(WA 30)를 효소 처리액의 2배 부피로 첨가한 후 40℃로 조절된 항온수조에서 정속 교반기로 24시간 동안 교반하여 탈색한 다음 GF/B로 여과하였다. 희석된 효소 반응액은 다시 40%(w/w)로 농축하고, 활성화시킨 혼합수지(음이온과 양이온 교환수지를 부피비로 2대 1로 섞은 것를 2배 부피로 첨가한 후 탈색과 동일한 조건으로 탈염하였다.
- 전술한 에탄올 처리법 외에 열처리 덱스트린의 효소 반응 후 분리수지를 이용하여 효소 반응액 중의 고분자 부분과 저분자 부분을 각각 분리해냄으로써 난소화성 획분을 증대시킬 수 있는지를 검토하기 위해본 실험에서는 강산성 양이온 교환수지의 일종이면서 200~240㎛의 균일한 입도를 지닌 분리수지(UBK)를 회분식으로 적용하였다. 먼저, 백색 덱스트린을 기질로 하여 내열성 a-amylase를 처리한 후 P- amylase 및 전이효소를 동시에 반응시켜 제조한 효소 반응액의 농도를 28.
- 정속 교반기(Chemy Stirrer B-100, EYELA, Japan)로 SO~SKTC의 열수를 교반하면서 황색 덱스트린을 40%(w/w)로 첨가하여 완전히 용해시킨 다음 1N NaOH 표준용액으로 pH롤 5.8로 조절한 후 미리 95℃까지 가열된 항온수조 내에서 교반하면서 내열성 a-amylase를 열처리 덱스트린 대비 0.2%(v/w)로 첨가하여 2시간 동안 반응시켰다. 이어서, IN HC1용액으로 pH를 3으로 낮춘 다음 90℃에서 10분간 유지하여 효소를 실활시키고, 다시 pH를 4.
- 황색 덱스트린을 기질로 하여 a-amylase를 0.2%(v/w) 첨가하여 반웅시킨 후 amyloglucosidase를 0.05%(v/w) 첨가하여 48시간 동안 처리한 다음 정제 과정을 거쳐 에탄올 처리 실험에 이용하였다. 먼저, 효소 반웅액의농도를 40%(w/w)로 조절하고, 고형분 대비 중량비로 3, 5, 7, 10배의 에탄올을 혼합한 다음 상온에서 3시간 방치하여 생성된 침전을 중류수로 용해하고, 농축하면서 잔여 에탄올을 제거한 후 각 시료의 수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석한 결과는 Fig.
대상 데이터
- 그리고, 정제를 위해 양이온(SK 1B, 삼양사) 및 음이온 교환수지 (WA 30, 삼양사)를 사용하였고, 분리수지로서는 Table. 2와 같은 특성을 갖는 강산성 양이온 교환수지(UBK 530, Mitsubishi Kasei Co., Japan)를 사용하였다. 식이섬유의 분석을 위해 sodium phosphate와 acetone(Yakuri Co, Japan) 그리고 공업용 에탄올(95% 이상, 대정화금사}을 사용하였다.
- 난소화성 덱스트린의 제조에 Table 1과 같은 특성을 지닌 백색(A.E. Staley Co., USA) 및 황색 (Ceiestar Co., USA) 덱스트린을 사용하였으며, 내열성 α-amylase(Termamyl 120LS)와 amylogucosidase(AMG 300L)는 Novo사(USA)제품을 사용하였고, p-amylase(BBA-1500)는 Finsugar사(Finland)의 제품을, 전이 효소 (Trans- glucosidase S)는 Amano사(Japan) 제품을 사용하였다. 또한, 난소화성 획분(indigestible fraction)과 식이섬유(dietary fiber) 의 분석에 식이섬유 분석 용 효소 kit(Sigma)를 사용하였고, 열처리 덱스트린의 효소 반응 후 여과시 Tbyo 5A(Advantec, japan), GF/B, GF/F (Whatman, UK) 및 membrane filterfMetricel, Gelman Sciences, USA)를 사용하였다.
- , Japan)를 사용하였다. 식이섬유의 분석을 위해 sodium phosphate와 acetone(Yakuri Co, Japan) 그리고 공업용 에탄올(95% 이상, 대정화금사}을 사용하였다.
이론/모형
- 에 따라 정량하였다. 또한, 유동성 수용성 고형물 및 환원당은 미국의 Com Refiners Association에서 제정한 Standard Analytical Methods(SAM)(20)를 이용하였다. 시료의 D.
- 수용성 식이섬유의 난소화성 획분 분석법(2,23)을 이용한 HPLC법으로 측정하였으며, 난화성 덱스트린의 식이섬유 함량은 식품공전(23) 및 Pisky-AOAC법(24)을 이용한 효소 중량법으로 측정하였다.
- 원료로 사용된 열처리 덱스트린의 수분, 조단백 및 조화분은 AOAC방법(19)에 따라 정량하였다. 또한, 유동성 수용성 고형물 및 환원당은 미국의 Com Refiners Association에서 제정한 Standard Analytical Methods(SAM)(20)를 이용하였다.
성능/효과
- 8에 나타내었다. DPl(glucose)은 초기 효소반 응액의 43.6%에서 분리 후 7.1%로 감소하였으며, DP4+(maltotetraose 이상)의 고분자 부분은 초기 효소 반웅액의 51.1%에서 분리 후 91.2%로 상승하였고, 이로 인해 D.E.는 분리 전 49에서 분리 후 16으로 감소하였다. 그리고, 저분자 당류의 분리로 난소화성 획분은 분리 전 44.
- 는 분리 전 49에서 분리 후 16으로 감소하였다. 그리고, 저분자 당류의 분리로 난소화성 획분은 분리 전 44.5%에서 분리 후 78.9%로 상승하여 난소화성 덱스트린의 난소화성 획분 중가를 위해 분리 수지를 사용할 수 있음을 확인하였다.
- 2%로 감소하는 것으로 볼 때 상대적으로 높은 에탄올 농도 하에서는 비교적 고분자의 당류도 용해되었기 때문으로 생각되었다. 난소화성 획분은 5배의 첨가량에서 74.5%, 7배에서 77.6% 수준으로 나타났으며, 식이섬유 함량은 5배에서 47.2%, 7배에서 48.7%로 거의 유사한 수준으로 나타나, 5배의 첨가량으로 충분히 에탄올 처리 효과를 얻을 수 있었다. 또한, 전술한 40%(w/w) 농도의 효소 반응액에 고형분 대비 중량비로 5배의 에탄올을 혼합한 다음 상온에서 1, 3, 5, 10, 24시간 동안 방치하여 생성된 침전을 전과 동일하게 처리한 다음 수율, 난소화성 획분및 식이섬유 함량을 분석하여 Fig.
- 1%를 나타내었다. 난소화성획분은 1시간에서 63.3%, S시간에서 65.7% 그리고 24시간에서 67.5%로 나타났고, 식이섬유 함량에서는 각각 40.6%, 51.5% 및 49.0%로 나타나, 전체적으로 3시간의 방치로 충분한 처리 효과를 거둘 수 있었다. 그리고 효소 반응액의 농도를 20, 30, 40, 50%(w/w)로 조절하고 고형분 대비 중량로 5배의 에탄올을 혼합한 다음 상온에서 3시간 동안 방치하여 생성된 침전을 전과 같이 정제한 후 각 시료의 수율, 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 분석하여 Fig.
- 3에 나타내었다. 농도를 20, 30, 40 및 50%(w/w)로 중가시킴에 따라 수율은 각각 21.0%, 42.5%, 50.1% 및 61.8%로 중가하였으나, 난소화성 획분은 역으로 78.8%, 77.3%, 74.4% 및 62.2%로 감소하였으며, 식이섬유 함량도 78.5%, 64.8%, 56.7% 및 44.6%로 감소하였다. 따라서, 난소화성 획분, 식이섬유 함량뿐만 아니라 수율과 관련된 경제성 등을 종합적으로 고려할 때 난소화성 획분이 높은 난소화성 덱스트린을 제조하기 위한 에탄올의 처리 조건은 열처리 덱스트린을 기질로 a-amylase와 amyloglucosidase를 처리한 효소 반웅액의 농도를 30%(w/w)로 하고, 고형분 대비 5배의 에탄올을 첨가하여 상온에서 3시간 동안 방치시키는 것이 효율적이라고 생각되었으며, 상기의 과정을 통해 원료 열처리 덱스트린보다 전분 가수분해 효소에 더욱 저항성을 갖는 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있었다.
- 6%로 감소하였다. 따라서, 난소화성 획분, 식이섬유 함량뿐만 아니라 수율과 관련된 경제성 등을 종합적으로 고려할 때 난소화성 획분이 높은 난소화성 덱스트린을 제조하기 위한 에탄올의 처리 조건은 열처리 덱스트린을 기질로 a-amylase와 amyloglucosidase를 처리한 효소 반웅액의 농도를 30%(w/w)로 하고, 고형분 대비 5배의 에탄올을 첨가하여 상온에서 3시간 동안 방치시키는 것이 효율적이라고 생각되었으며, 상기의 과정을 통해 원료 열처리 덱스트린보다 전분 가수분해 효소에 더욱 저항성을 갖는 난소화성 덱스트린을 제조할 수 있었다. 감자 열처리 덱스트린을 이용하고 효소 반응 후 유기 용매 등으로 취하여 난소화성 획분이 더욱 높은 난소화성 덱스트린을 제조하는 방법이 알려져 있다(8,25).
- 적은 식품 소재로 인식되어 왔다. 또, 전분 유래의 난소화성 덱스트린도 FDA에서 GRAS(GeneraUy Recognized As Safe) 물질로 확인되었으며, 급성 독성 시험 결과 lAo치는 체중 1kg당 20g 이상으로서 매우 안전한 소재로 검중되었다(1). 천연 소재인 전분으로부터 유래된 난소화성 덱스트린은 수용성이며, 용액이 투명하고, 점도와 감미도가 낮으며, 장내 비피더스균의 중식 인자 등으로 보고되어 있다(2,3).
- 7에 걸쳐 나타내었다. 분리 양상을 나타낸 그림에서 가장 이상적인 것은 maltotetraose 이상의 고분자와 glucose를 포함하는 저분자 당류가 겹치는 면적을 최소화하는 것인데, 같은 농도의 시료를 흘렸을 때는 통액 속도가 느릴수록 중복되는 부분이 적어 유리하였고, 농도가 다른 시료를 동일한 속도로 흘렸을 때는 효소 반응액의 농도가 낮을수록 겹치는 면적이 적어 보다 분리가 용이함을 알 수 있었다. 그러나, 이와 같은 분리 공정을 상업화하기 위해서는 연속 공정에 대한 설계가 필요한뎨, 일본에서는 의사 이동상이란 연속 공정을 개발하여 전분당의 분리 공정에 실제 이용하는 것으로 알려져 있다(28) 또한, 황색 덱스트린을 기질로 하고 a.
- 2에 나타내었다. 에탄올 혼합 후 24시간 동안 방치시 수율은 52.4%로 1시간 방치한 경우의 51.8%와 거의 차이가 없었으며, 3시간 방치한 경우에는 52.1%를 나타내었다. 난소화성획분은 1시간에서 63.
- 난소화성 획분, 식이섬유 및 수율을 고려하여 a-amylase와 amyloglucosidase를 반응시킨 가수 분해액으로부터 난소화성 덱스트린을 제조하기 위한 에탄올 처리의 최적 조건은 에탄올을 30%(w/w) 효소 반응액에 고형분 대비 5배로 첨가하여 상온에서 3시간 동안 방치시키는 공정이었다. 포도당을 포함하는 저분자 당류와 고분자 당류를 강산성 양이온 교환수지에 의해 분리한 결과 내열성 a-amylase와 amyloglucosidase에 의한 초기 효소 반응액은 43.6%의 DPl(glucose)과 51.5%의 DP4+(maltotetraose이상)를 나타낸 반면, 양이온 교환수지에 의해 초기 효소 반응액의 50%까지 분 취한 난소화성 덱스트린은 7.1%의 DPl(glucose)과 91.2%의 DP4+(maltotettaose이상>를 나타내었다. 따라서, 초기 효소 반옹액의 난소화성 획분 44.
후속연구
- 따라서, 난소화성 획분이 보다 증가된 난소화성 덱스트린을 제조하기 위해서는 glucose 수준까지 가수분해하는 amyloglucosidase를 필히 사용하여야 하며, 생성된 glucose를 비롯한 저분자의 당류를 에탄올 및 분리 수지로 분리하여 난소화성 획분 및 식이섬유 함량을 보다 중가시킬 수 있었는데, 이를 상업적으로 활용하기 위해서는 연속 공정을 전제로 한 공정설계가 필요할 것으로 생각되었다.
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