곤충병원성 선충인 Steinernema carpocapsae All (ScA)과 포천(ScP) 계통, S.glaseri NC (SgN)와 동래(SgD) 계통, Heterorhabditis bacteriophora NC 1 계통(HbN)이 당근뿌리혹선충 (Meloidogyne hapla)의 난낭 형성에 미치는 영향을 구명하기 위하여 토마토를 이용한 pot실험을 수행한 결과는 다음과 같다. 450마리의 당근뿌리혹선충이 있는 100g 토양에 곤충병원성 선충을 2.5$\times$$10^{5}$ 마리 농도로 처리한 결과 ScA처리에서 9.4-36.5개, SgN처리에서 5.7-24.7개, HbN처리에서 11.2-16.0개로서 당근뿌리혹선충 단독 처리에서의 62.5개보다 난낭수가 매우 적었다. Steinernema선충을 100㎤당 100마리, 200마리의 당근뿌리혹선충에 대해 2,020마리/토양 350g와 1.6$\times$$10^{5}$ 마리 농도로 처리한 결과 Steinernema 선충의 종간, 계통별 또는 처리농도 간에는 난낭수의 차이가 없었으나, 당근뿌리혹선충 단독 처리와 비교하면 난낭수가 현저히 감소하였다 곤충병원성 선충을 당근뿌리혹선충 처리 3일 전에 처리한 것이 3일 후에 처리한 것보다 난낭 형성 억제에 더 효과적이었다. 한편, 곤충병원성 선충은 토마토의 생육에 아무런 영향을 끼치지 않았다.
곤충병원성 선충인 Steinernema carpocapsae All (ScA)과 포천(ScP) 계통, S.glaseri NC (SgN)와 동래(SgD) 계통, Heterorhabditis bacteriophora NC 1 계통(HbN)이 당근뿌리혹선충 (Meloidogyne hapla)의 난낭 형성에 미치는 영향을 구명하기 위하여 토마토를 이용한 pot실험을 수행한 결과는 다음과 같다. 450마리의 당근뿌리혹선충이 있는 100g 토양에 곤충병원성 선충을 2.5$\times$$10^{5}$ 마리 농도로 처리한 결과 ScA처리에서 9.4-36.5개, SgN처리에서 5.7-24.7개, HbN처리에서 11.2-16.0개로서 당근뿌리혹선충 단독 처리에서의 62.5개보다 난낭수가 매우 적었다. Steinernema선충을 100㎤당 100마리, 200마리의 당근뿌리혹선충에 대해 2,020마리/토양 350g와 1.6$\times$$10^{5}$ 마리 농도로 처리한 결과 Steinernema 선충의 종간, 계통별 또는 처리농도 간에는 난낭수의 차이가 없었으나, 당근뿌리혹선충 단독 처리와 비교하면 난낭수가 현저히 감소하였다 곤충병원성 선충을 당근뿌리혹선충 처리 3일 전에 처리한 것이 3일 후에 처리한 것보다 난낭 형성 억제에 더 효과적이었다. 한편, 곤충병원성 선충은 토마토의 생육에 아무런 영향을 끼치지 않았다.
The entomopathogenic nematodes, Steinernema carpocapsae All strain (ScA), S.glaseri NC strain (SgN) and H. bacteriophora NC 1 strain (HbN), were evaluated for the effects on egg mass formation by the northern root-knot nematode, Meloidogyne hapla in pot experiment using tomato. In the first experime...
The entomopathogenic nematodes, Steinernema carpocapsae All strain (ScA), S.glaseri NC strain (SgN) and H. bacteriophora NC 1 strain (HbN), were evaluated for the effects on egg mass formation by the northern root-knot nematode, Meloidogyne hapla in pot experiment using tomato. In the first experiment, 2.5$\times$10$^{5}$ infective juveniles (Ijs) of entomopathogenic nematodes were inoculated to 100 g of the soil infected with ca. 450 Ijs of M. hapla/100 ㎤ in 150 $mell$ container. The number of egg mass was significantly decreased to 9.4-36.5 in ScA, to 5.7-24.7 in SgN and to 11.2-16.0 in HbN treatments compared with 62.5 in M.hapla alone. In the second experiment, ScA and S.carpocapsae Pocheon strain (ScP) and SgN and S.glaseri Dongrae strain (SgD) were treated to 350 g of the soil infected with 100, 200 M.hapla larvae/100 ㎤ in 450 $mell$ container The entomopathogenic nematodes were inoculated at the rate of 2,020 Ijs and 1.6$\times$105 Ijs in 350 g soil. The number of egg mass of M.hapla were significantly decreased in the entomopathogenic nematode treatments compared with M.hapla alone although no differences were observed among Steinernema species, strains, or infection concentrations. Treatments of entomopathogenic nematodes 3 days before M.hapla inoculation were more effective on reduction of egg mass formation than those of 3 days after M.hapla treatments. Growth of tomato was not affected by entomopathogenic nematode treatments.
The entomopathogenic nematodes, Steinernema carpocapsae All strain (ScA), S.glaseri NC strain (SgN) and H. bacteriophora NC 1 strain (HbN), were evaluated for the effects on egg mass formation by the northern root-knot nematode, Meloidogyne hapla in pot experiment using tomato. In the first experiment, 2.5$\times$10$^{5}$ infective juveniles (Ijs) of entomopathogenic nematodes were inoculated to 100 g of the soil infected with ca. 450 Ijs of M. hapla/100 ㎤ in 150 $mell$ container. The number of egg mass was significantly decreased to 9.4-36.5 in ScA, to 5.7-24.7 in SgN and to 11.2-16.0 in HbN treatments compared with 62.5 in M.hapla alone. In the second experiment, ScA and S.carpocapsae Pocheon strain (ScP) and SgN and S.glaseri Dongrae strain (SgD) were treated to 350 g of the soil infected with 100, 200 M.hapla larvae/100 ㎤ in 450 $mell$ container The entomopathogenic nematodes were inoculated at the rate of 2,020 Ijs and 1.6$\times$105 Ijs in 350 g soil. The number of egg mass of M.hapla were significantly decreased in the entomopathogenic nematode treatments compared with M.hapla alone although no differences were observed among Steinernema species, strains, or infection concentrations. Treatments of entomopathogenic nematodes 3 days before M.hapla inoculation were more effective on reduction of egg mass formation than those of 3 days after M.hapla treatments. Growth of tomato was not affected by entomopathogenic nematode treatments.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
따라서 본 연구는 토양중에서 기주곤충에 대한 탐색행동 양상과 크기, 기생효과의 차이가 있는 미국과 우리나라에서 분리 된 ScA와 ScP, SgN과 SgD, 그리고 HbN 등 곤충병원성 선충의 종과 처리시기에 따른 당근뿌리혹선충에 의한 난낭형성 억제 효과를 알아보고자 실시하였다.
제안 방법
무처리는 살균수만 10ml처리하였다 실험은 1996 년 9월 초에 수행되었으며 모든 컵은 유리온실(낮; 25-30°C, 밤; 20-23°C)내에서 관행적 관리방법에 따라 물관리를 하였다. 곤충병원성 선충 처 리 45일 후에 토마토를 컵에서 조심스럽게 들어내어 깨끗이 씻은 후줄기와 뿌리의 길이, 건물중을 측정하였다. 뿌리는 Phloxine B 용액으로 염색하여 난낭수를 조사하였다 (Daykin and Hussey, 1985).
실험은 1996년 10월중순에 수행되었으며 모든 컵은 유리온실(낮; 23-28°C, 밤; 18-20。0내에서 관행적 관리방법에 따라 물관리를 하였다. 곤충병원성 선충 처리 50일 후 토마토를 조심스럽 게 뽑아 뿌리를 깨끗이 씻은 다음 Phloxine B 용액으로 염색하여 난낭수를 조사하였다. 토마토의 생육에 미치는 영향을 알아보기 위해 줄기와 뿌리길이 줄기와 뿌리의 건물중을 측정하였다.
3 X ion마리/ha)였으며 처리 선충현탁액량은 10ml이었다. 무처리는 살균수만 10ml처리하였다 실험은 1996 년 9월 초에 수행되었으며 모든 컵은 유리온실(낮; 25-30°C, 밤; 20-23°C)내에서 관행적 관리방법에 따라 물관리를 하였다. 곤충병원성 선충 처 리 45일 후에 토마토를 컵에서 조심스럽게 들어내어 깨끗이 씻은 후줄기와 뿌리의 길이, 건물중을 측정하였다.
4cm인 토마토 55 일 묘를 선충 처리 7일 전에 컵에 심었다. 사질양토는 850|nm체로 친 후 살균기에 넣어 1회 살균한 다음 24시간 동안 말리고 다시 2차 살균후 건조시킨 후 살균수로 수분을 15% 되게 만들어 실험을 수행하였다. 각 컵은 물빠짐을 위하여 바닥에 4개의 구멍을 뚫었다.
뿌리는 Phloxine B 용액으로 염색하여 난낭수를 조사하였다 (Daykin and Hussey, 1985). 처리는 토마토 묘 1 주를 1 반복으로 10반복 처리하였다.
토마토의 생육에 미치는 영향을 알아보기 위해 줄기와 뿌리길이 줄기와 뿌리의 건물중을 측정하였다. 처리는 토마토 묘 1주를 1반복으로 7반복 처리하였다.
곤충병원성 선충 처리 50일 후 토마토를 조심스럽 게 뽑아 뿌리를 깨끗이 씻은 다음 Phloxine B 용액으로 염색하여 난낭수를 조사하였다. 토마토의 생육에 미치는 영향을 알아보기 위해 줄기와 뿌리길이 줄기와 뿌리의 건물중을 측정하였다. 처리는 토마토 묘 1주를 1반복으로 7반복 처리하였다.
대상 데이터
당근뿌리혹선충은 경남 진주시 명석면의 당근 뿌리혹선충(Meloidogyne hapla) 피해지인 구릿대dahurica) 밭에서 토양을 채집하여 실내에서 고루 섞은 다음, 1, 000 ml 플라스틱 pot에 800 g의 토양을 넣고 45 일된 토마토 묘를 심 었다. 40일후 토마토의 뿌리를 씻은 다음 1cm 크기로 잘라 Baker (1985)의 방법에 준하여 Sodium Hypochloride 용액을 이용하여 알주머니의 알을 분리하였으며 25±2°C 항온기에서 부화시켜 실험에 이용하였다.
당근뿌리혹선충의 피해가 심했던 진주시 명석면 구릿대밭에서 토양을 채집하여 토양을 골고루 섞은 후 150ml들이 플라스틱 컵에 100g씩 넣었으며 토양 수분은 14-22% (17.5%)였다. 당근뿌리혹선충의 유충밀도는 450±0.
뿌리혹선충의 증식과 실험에 이용된 토마토(Lyco- persicon esculentum Mill, BeBe 품종, Takii Seed Com pany, Japan)는 진주시 대곡면에 있는 플러그 육묘장에서 구입하여 사용하였다.
8cm의 45일된 토마토 묘를 이용하였는데, 곤충병원성 선충의 처리시기를 토마토 정식 3일 전, 정식과 동시, 정식 3 일 후로 구분하였다. 실험에 이용된 선충은 ScA, SgN, HbN이었고 접종농도는 2.5X13마리/토양 100g (3.3 X ion마리/ha)였으며 처리 선충현탁액량은 10ml이었다. 무처리는 살균수만 10ml처리하였다 실험은 1996 년 9월 초에 수행되었으며 모든 컵은 유리온실(낮; 25-30°C, 밤; 20-23°C)내에서 관행적 관리방법에 따라 물관리를 하였다.
후였다. 실험에 이용한 곤충병원성 선충은 ScA와 ScP, SgN과 SgD이었다. 실험은 1996년 10월중순에 수행되었으며 모든 컵은 유리온실(낮; 23-28°C, 밤; 18-20。0내에서 관행적 관리방법에 따라 물관리를 하였다.
2/100 cm3마리였다. 초장 9.9±1.8cm의 45일된 토마토 묘를 이용하였는데, 곤충병원성 선충의 처리시기를 토마토 정식 3일 전, 정식과 동시, 정식 3 일 후로 구분하였다. 실험에 이용된 선충은 ScA, SgN, HbN이었고 접종농도는 2.
데이터처리
모든 자료는 Tukey test로 분산분석 하였는데, Stu- dent t-test (a = 0.05)를 이용하여 곤충병원성 선충의 종, 계통, 처리시기, 그리고 농도에 따른 난낭수 차이를 비교하였다(SAS Institute, 1988).
이론/모형
45 일된 토마토 묘를 심 었다. 40일후 토마토의 뿌리를 씻은 다음 1cm 크기로 잘라 Baker (1985)의 방법에 준하여 Sodium Hypochloride 용액을 이용하여 알주머니의 알을 분리하였으며 25±2°C 항온기에서 부화시켜 실험에 이용하였다.
곤충병원성 선충은 미국에서 수입하여 꿀벌부채명나방으로 실내누대 증식하던 ScA, SgN, HbN과 우리나라의 토양으로부터 꿀벌부채명나방을 미끼로 분리한 ScP와 골프장의 등얼룩풍뎅 이 (ExowWa ”论유충에서 분리한 SgD를 Dutky et al. (1964)51 방법으로 증식하여 실험에 이용하였다. 각 선충에 치사된 꿀벌 부채 명나방은 White trap으로 2세 대 감염 충을 수확하여 10°C 냉장고에 보관하였고, 실험에는 수확한지 3 주 이내의 선충을 이용하였다(Woodring and Kaya, 1988).
토마토에서 증식한 당근뿌리혹선충의 알을 Baker (1985)의 방법으로 분리한 후 25°C의 항온기에서 부화시 켰다. 직경 8.
성능/효과
, 1985), 본 실험에서는 당근뿌리혹선충의 피해허용밀도인 100cm3당 100, 200(인위십종*샹), 400마리 (자연토양)가 접종된 토양에 Steinernema spp. 4종과 HbN을 처리한 결과 모든 곤충병원성 선충이 무처리와 비교하여 난낭형성 억제효과가 있었다. 그러나 토마토 뿌리에 형성된 난낭수는 곤충병원성 선충의 종에 따라 차이가 있었다.
1). 곤충병원성 선충 종간 난낭수의 차이는 SgN과 HbN간에는 차이가 없었으나(ts = 1.08, df=58, P<0.05), ScA와 SgN (ts = 2.66, df = 58, P< 0.05) 그리고 ScA와 HbN (ts = 3.09, df=58, P< 0.05)간에는 차이가 있었다. 난낭수는 Steinernema 선충 처리구보다 H.
1, 2). 곤충병원성 선충은 뿌리혹선충에 의한 피해를 줄이는 한편 토마토의 생육도 더 좋게 한다는 결과(Bird and Bird, 1986)가 있으나, 본 실험에서는 전반적으로 곤충병원성 선충 처리와 무처리간에 토마토의 생육은 차이가 없었다(Table 1). 이러한 결과는 실험기간이 짧고 pot 크기가 작아 토마토가 충분히 자라지 못했기 때문으로 생각된다.
05)간에는 차이가 있었다. 난낭수는 Steinernema 선충 처리구보다 H. bacteriophora 처리구에서 더 많이 감소하였다가 = 3.22, df=88, P<0.05). 곤충병원성 선충의 처리시기별 당근뿌리혹선충의 난낭수는 3일 전처리 구가 3일 후 처리구와 동시처리구보다 적었다(ts= 5.
당근뿌리혹선충의 난낭수는 100마리 처리구에서 58.6개, 200마리 처리구에서 87.0개로서 접종밀도가 높을수록 난낭수가 증가하였다<100마리 : 200마리 , ts = 4.76, df = 222, P<0.05) (Fig. 2). Steinernema 처리는 당근뿌리혹선충에 의한 난낭 형성을 현저히 감소시켰으며 그 중 난낭수가 가장 적었던 것은 ScA와 SgN 처리였다.
0 x 109마리이다(Thomson, 1992). 본 실험의 결과 미국에서의 선충처리 권장량으로도 당근뿌리혹선충의 피해를 충분히 줄일 수 있음이 확인되었다. 이러한 효과는 식물 뿌리로부터 발산되는 이산화탄소에 의해 유인되어 식물 뿌리로 모이는 곤충병원성 선충과 뿌리혹선충의 성질에 기 인한다(Bird and Bird, 1986; Gaugler a al.
2). 비록 Sreinemema의 처리농도간에는 난낭수에 차이가 없었지만(ts = 0.31, df= 334, P<0.05), 처리시기에 따라서는 첫 번째 실험과 같이난낭 형성에 미치는 영향이 크게 나타났다(ts = 4.06, df= 334, P<0.05).
후속연구
, 1980; Ishibashi and Choi, 1991). 따라서 뿌리혹선충에 대한 효과적인 생물적 방제법이 없는 현실에서 뿌리혹선충이 작물뿌리로 침입하는 것을 억제하는 것과 동시에 치사시킬 수도 있는 병원성 발현의 대상기주가 전혀다르다는 점(Lewis, 2001), 그리고 토양 해충의 종합적방제 측면에서 앞으로 곤충병원성 선충의 이용에 대한 관심과 더욱 활발한 연구가 필요할 것으로 생각된다.
그러나 당근뿌리혹선충을 인위 접종한 실험에서는 Steinernema 종 혹은 계통간에 차이가 없었다. 이는 용기의 크기와 토양에 대한 곤충병원성 선충의 처리량 차이에 기인한 것으로 생각되므로 보다 더 세밀한 연구가 필요하다. 미국 등에서 시판되고 있는 곤충병원성 선충의 권장처리량은 acre당 1.
참고문헌 (29)
Akhurst, R.J. and G.B. Dunpy. 1993. Tripartite interactions between symbiotically associated entomopathogenic bacteria, nematodes, and their insect hosts. pp. 1-23, In Parasities and pathogens of insects. Vol. 2: Pathogens, eds. by N.E. Beckage, S.N. Thompson and B.A. Federici. 294 pp. Academic Press. San Diego
Baker, K.R. 1985. Nematode extraction and bioassays. pp. 19-35, In An advanced treatise on Meloidoeyne. Vol. 11. Methodology, eds. by K.R. Baker, C.C. Cater and J.N. Sasser. 223 pp. North Carolina State University Graphics. Raleigh. North Carolina
Baker, K.R., D.P. Schmitt and J.L. Imbriani. 1985. Nematode population dynamics with emphasis on determing damage potential to crops. pp. 135-148, In An advanced treatise on Meloidogyne. Vol. 11. Methodology, eds. by K.R. Baker, C.C. Cater and J.N. Sasser. 223 pp. North Carolina State University Graphics. Raleigh. North Carolina
Bird, A.B. and J.J. Bird. 1986. Observations on the use of insect parasitic nematodes as a means of biological control of root-knot nematodes. Intem. J. Parasit. 16: 511-516
Cho, M.R., B.C. Lee, D.S. Kim, H.Y. Jeon, M.S. Yiem and J.O. Lee. 2000. Distribution of plant-parasitic nematodes in fruit vegetable production areas in Korea and identification of root-knot nematodes by enzyme phenotypes. Korean J. Appl. Entomol.39: 123-129
Choi, Y.E. 1996. Nematodes of Korea. pp. 182-186. Ililsa Daegu. Korea
Choi, Y.E. and Y.J. La. 1994. Plant Nematology. pp. 61-65. Hyangmunsa. Seoul. Korea
Choo, H.Y., H.K. Kaya, S.M. Lee, H.H. Kim and D.W. Lee. 1998. Biocontrol research with nematodes against insect pests in Korea. Jpn. J. Nematol. 28: 29-41
Choo, H.Y., H.K. Kim, J.C. Park, S.M. Lee and J.I. Lee. 1987. Insects and nematodes associated with horticultural crops and effect of nursery soil conditions on the infection of root-knot nematode. Korean J. Plant Prot. 26: 195-201
Choo, H.Y., S.M. Lee, B.K. Chung, Y.D. Park and H.H. Kim. 1995. Pathogenicity of Korean entomopathogenic Nematodes (Steinemematidae and Heterorhabditidae) against local agriCU-Itural and forest insect pests. Korean J. Appl. Entomol. 34: 314-320
Daykin, M.E. and R.S. Hussey. 1985c. Staining and hiStOPath0-logical techniques in nematology. pp. 135-148, In An advanced treatise on Meloidogyne. Vol. II. Methodology, eds. by K.R. Baker, C.C. Cater and J.N. Sasser. 223 pp. North Carolina State University Graphics. Raleigh. North Carolina
Dutky, S.R., J.V. Thompson and G.E. Cantwell. 1964. A techni-que for the mass propagation ofthe DD-136 nematode. J. Insect Pathol. 6: 417-422
Gaugler, R., L. Lebeck, B. Nakagaki and G.M. Boush. 1980. Ohentation of the entomogenous nematode Neoaplectana carpocapsae to carbon dioxide. Environ. Entomol. 9: 649-652
Gouge, D.H., A.A. Otto, A. Schirocki and N.G.M. Hague. 1994. Effects of steinernematids on the root-knot nematode Meloi-doeyne javanica. Ann. appl. Biol. 124: 134-135
Grewal, P. 2000. Nematicidal effects of entomopathogenic nema-todes and their symbiotic bacteria on plant-parasitic nematodes. Soci. Inver. Pathol. XXXIII Annual Meeting Guanajuato, Mexico. p. 48
Han, M.W., G.H. Lee, G.S. Lee, J.H. Kim, Y.H. Kim and J.O. Lee. 1997. Biological control of greenhouse insect pests in Korea. pp. 44-60, In Biological control of insect pests, eds. by K.S. Boo, K.C. Park and J.K. Jung. 186 pp. Proc. Int. Symp Suwon, Korea
Hartman, K.M. and J.N. Sasser. 1985d. Identification of Me10i-dogyne species on the basis of differential host test and perineal -pattern morphology. pp. 69-77, In An advanced treatise on Meloidogyne. Vol. II. Methodology, eds. by K.R. Baker, C.C. Cater and J.N. Sasser. 223 pp. North Carolina State University Graphics. Raleigh. North Carolina
Hatakeda, K., S. Ito, Y. Ikusima and T. Asano. 1985. A new nematicidal compound in french marigold. Jpn. J. Nematol. 15: 11-13
Hewlett, T.E. and A.C. Tarjan. 1983. Sinopsis of the genus Meloidogyne Goeldi, 1887. Nematropica 13: 79-102
Ishibashi, N. and D.R. Choi. 1991. Biological control of soil pests by mixed application of entomopathogenic and fungivorous nematodes. J. Nematol. 23: 175-181
Ishibashi, N. and E. Kondo. 1986. Steinemema feltiae (DD-136) and S. etaseri: Persistence in soil and bark compost and their influence on native nematodes. J. Nematol. 18: 310-316
Jarosz, J., M. Balcerzak and H. Skrzypek. 1991. Involvement of larvicidal toxins in pathogenesis of insect parasitism with the rhabditoid nematodes, Steinernema feltiae and Heterorhabditis bacteriophora. Entomophaga 36: 361-368
Kim, H.H., H.Y. Choo, C.G. Park, S.M. Lee and J.B. Kim. 1998. Biological control of the northrn root-knot nematode, Meloi-doeyne hapla with plant extract. Korean J. Appl. Entomol. 37: 199-206
Lewis, E.E., P.S. Grewal and S. Sardanelli. 2001. Interactions between the Steinernema feltiae-Xenorhabdus bovienii insect pathogen complex and the root-knot nematode Meloidogyne incognita. Biological Control 21: 55-62
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.