본 연구는 한우에 PGF$_2$$\alpha$와 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)를 처리하여 발정 및 배란을 동기화 시켰으며, 2차 GnRH 투여후 배란시간, 2차 GnRH 투여후 시간 경과에 따른 수태율과 발정ㆍ배란 동기화법에 의한 수태율을 조사하고자 실시하였다. 시험축은 총 4개 농가에서 경산우 150두를 무작위로 선발하여 시험에 공시하였으며, 발정ㆍ배란동기화 방법에 따라 발정을 유기한 후 1회 인공수정을 실시하고 수태율에 미치는 영향을 조사하였다. 호르몬처리 방법으로는 GnRH+PCF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)와 PGF$_2$$\alpha$를 이용한 발정동기화 방법을 사용하였다. 2차 GnRH 투여 후 배란시간을 알아보기 GnRH 투여 후 24시간 후부터 32시간까지 2시간 간격으로 초음파 Sonovet-600(Medison. Korea)를 이용하여 난소를 촬영하였다. 1. 호르몬 투여후 발정동기 화율은 PGF$_2$$\alpha$ 투여구에서 40.0%와 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)처리구에서 91.3%로 나타났다. 2. 2차 GnRH 주사후 24시간에 배란이 시작되어 32시간에 배란이 종료되었으며, 배란율은 28시간째에 46.6%가 배란되어 가장 높게 나타났다. 3. 2차 GnRH주사후 6∼24시간에 수정한 군이 6시간 이전과 30시간 이후에 수정시킨 군에 비해 높은 수태율을 나타냈다. 4. 호르몬 처리별 수태율은 PGF$_2$$\alpha$, CIDR 및 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)에서 각각 50.0, 36.0와 76.9%로 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+CnRH(Ov-synch)군에서 가장 높은 수태율을 나타냈다.
본 연구는 한우에 PGF$_2$$\alpha$와 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)를 처리하여 발정 및 배란을 동기화 시켰으며, 2차 GnRH 투여후 배란시간, 2차 GnRH 투여후 시간 경과에 따른 수태율과 발정ㆍ배란 동기화법에 의한 수태율을 조사하고자 실시하였다. 시험축은 총 4개 농가에서 경산우 150두를 무작위로 선발하여 시험에 공시하였으며, 발정ㆍ배란동기화 방법에 따라 발정을 유기한 후 1회 인공수정을 실시하고 수태율에 미치는 영향을 조사하였다. 호르몬처리 방법으로는 GnRH+PCF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)와 PGF$_2$$\alpha$를 이용한 발정동기화 방법을 사용하였다. 2차 GnRH 투여 후 배란시간을 알아보기 GnRH 투여 후 24시간 후부터 32시간까지 2시간 간격으로 초음파 Sonovet-600(Medison. Korea)를 이용하여 난소를 촬영하였다. 1. 호르몬 투여후 발정동기 화율은 PGF$_2$$\alpha$ 투여구에서 40.0%와 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)처리구에서 91.3%로 나타났다. 2. 2차 GnRH 주사후 24시간에 배란이 시작되어 32시간에 배란이 종료되었으며, 배란율은 28시간째에 46.6%가 배란되어 가장 높게 나타났다. 3. 2차 GnRH주사후 6∼24시간에 수정한 군이 6시간 이전과 30시간 이후에 수정시킨 군에 비해 높은 수태율을 나타냈다. 4. 호르몬 처리별 수태율은 PGF$_2$$\alpha$, CIDR 및 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch)에서 각각 50.0, 36.0와 76.9%로 GnRH+PGF$_2$$\alpha$+CnRH(Ov-synch)군에서 가장 높은 수태율을 나타냈다.
This objective of this experiment were to evaluate the effect of various estrus synchronization programs on estrus detection rate and pregnancy rate in Hanwoo. After Postpartum 60 Days, a total of 150 cows divided into 2 groups. Cows Group 1 were treated with one luteolytic dosage of PGF$_2$
This objective of this experiment were to evaluate the effect of various estrus synchronization programs on estrus detection rate and pregnancy rate in Hanwoo. After Postpartum 60 Days, a total of 150 cows divided into 2 groups. Cows Group 1 were treated with one luteolytic dosage of PGF$_2$$\alpha$(25 mg, im; lutalyse. USA) on Day 0, and with a second dosage 14 d later; cows in Group 2 were treated with GnRH(l00 $\mu\textrm{g}$, im; Conceral. Korea) on Day 0, PGF$_2$$\alpha$ 7 d later, GnRH 2 d later, and then time-inseminated approximately 16 h after this second treatment with GnRH. Ovarian morphology was monitored cows by trans-rectal ultrasonography from 24 hr to 32 hrs after second GnRH injection. The result obtained summarized as follows: 1. Cows synchronization of estrus with GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch) and PGF$_2$$\alpha$ were 91.3 and 40.0%, respectively. 2. Induced ovulation were 24 to 32hr after the second GnRH injection, but high induced ovulation was 28hr. 3. High conception rate were 24hr insemination after the second GnRH injection. 4. Conception rate with PGF$_2$$\alpha$, CIDR and GnRH treatment were 50.0, 36.0 and 76.9%, respectively.
This objective of this experiment were to evaluate the effect of various estrus synchronization programs on estrus detection rate and pregnancy rate in Hanwoo. After Postpartum 60 Days, a total of 150 cows divided into 2 groups. Cows Group 1 were treated with one luteolytic dosage of PGF$_2$$\alpha$(25 mg, im; lutalyse. USA) on Day 0, and with a second dosage 14 d later; cows in Group 2 were treated with GnRH(l00 $\mu\textrm{g}$, im; Conceral. Korea) on Day 0, PGF$_2$$\alpha$ 7 d later, GnRH 2 d later, and then time-inseminated approximately 16 h after this second treatment with GnRH. Ovarian morphology was monitored cows by trans-rectal ultrasonography from 24 hr to 32 hrs after second GnRH injection. The result obtained summarized as follows: 1. Cows synchronization of estrus with GnRH+PGF$_2$$\alpha$+GnRH(Ov-synch) and PGF$_2$$\alpha$ were 91.3 and 40.0%, respectively. 2. Induced ovulation were 24 to 32hr after the second GnRH injection, but high induced ovulation was 28hr. 3. High conception rate were 24hr insemination after the second GnRH injection. 4. Conception rate with PGF$_2$$\alpha$, CIDR and GnRH treatment were 50.0, 36.0 and 76.9%, respectively.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
따라서 GnRH를 이용하여 난포 발육파를 조절한 뒤 PGFza를 병용 투여하여 배란을 동기화함으로써 발정을 관찰하지 않고 일정한 시간에 인공수정을 실시하여 양호한 수태성적을 얻었다고 보고하였다 (Pursely등, 1995; Yavas, 1999). 따라서 본 시험에서는 인공수정에 의한 수태율 향상을 위하여 발정동기화처 리 와 배 란동기 화처 리가 한우의 수태 에 미치는 영향을 검토코자 실시하였다.
본 연구는 한우에 PGFza와 GnRH+PGF2a+GnRH (Ov-synch)를 처리하여 발정 및 배란을 동기화 시 켰으며, 2차 GnRH 투여후 배란시간, 2차 GnRH 투여후 시간 경과에 따른 수태율과 발정 • 배란 동 기화법에 의한 수태율을 조사하고자 실시하였다. 시 험축은 총 4개 농가에서 경산우 150두를 무작위 로 선발하여 시험에 공시하였으며, 발정 배란동 기화 방법에 따라 발정을 유기한 후 1회 인공수정 을 실시하고 수태율에 미치는 영향을 조사하였다.
제안 방법
1) PGFsQ : 발정주기 중 PGF2Q 25mg(Lutalyse. USA)을 1차 투여 후 11일에 PGF2a 25mg을 2차 투여하고 발정관찰 없이 96시간에 1회인공수정을 실시하였다.
2) CIDR + PGFza법 : 발정주기 중 CIDR (SANOFI. France)를 질내에 삽입하고 6일후 PGF2a 25mg을 투여하였으며, 다음 날 황체호르몬을 질내에서 제거한 후 48시간 후에 발정과 관계없이 1회 인공수정을 실시하였다.
호르몬처리 방법으로는 GnRH+PGF2a+GnRH(Ovsynch)와 PGFza를 이용한 발정동기화 방법을 사용하였다. 2차 GnRH 투여 후 배란시간을 알아보기 GnRH 투여 후 24시간 후 부터 32시간까지 2시간 간격으로 초음파 Sonovet-600(Medison. Korea)를 이용하여 난소를 촬영하였다.
3) GnRH + PGF2a +GnRH 법 : GnRH 100ug (Conceral. Korea)을 발정주기 중에 1차 투여하고 7일후 PGF2a 25mg을 투여한 다음 48 시간후에 GnRH 100ug을 2차 투여 후 24시간에 발정과 관계없이 1회 인공수정을 실시하였다.
5kg/두/일) 를 급여하였으며, 물은 자유 음수케 하였다. 또한방목기에는 방목지에서 생초를 자유 채식시켰으며, 농후 사료는 1일 두당 0.7kg을 급여하였다.
본 연구는 한우에 PGFza와 GnRH+PGF2a+GnRH (Ov-synch)를 처리하여 발정 및 배란을 동기화 시 켰으며, 2차 GnRH 투여후 배란시간, 2차 GnRH 투여후 시간 경과에 따른 수태율과 발정 • 배란 동 기화법에 의한 수태율을 조사하고자 실시하였다. 시 험축은 총 4개 농가에서 경산우 150두를 무작위 로 선발하여 시험에 공시하였으며, 발정 배란동 기화 방법에 따라 발정을 유기한 후 1회 인공수정 을 실시하고 수태율에 미치는 영향을 조사하였다.
대상 데이터
본 시험에 공시한 공시죽은 농가의 경우 농가관행으로 사육하였으며, 대관령지소의 경우 사사기에는 08:00~09:00시와 17:00~18:00사이에 옥수수사일레지(20.0kg/두/일)와 농후사료(2.5kg/두/일) 를 급여하였으며, 물은 자유 음수케 하였다. 또한방목기에는 방목지에서 생초를 자유 채식시켰으며, 농후 사료는 1일 두당 0.
본 시험에 사용한 공시축은 평창군 3개 농가와축산기술연구소 대관령지소에서 사육 중인 한우를대상으로 분만 후 60일 이내에 발정이 오지 않았거나 발정발견을 못하여 인공 수정에 공용하지 못한 한우 경산우 150두를 대상으로 실시하였다.
본 시험에 이용된 초음파 진단장치는 Sonovet- 600(Medison. Korea)을 사용하였으며, GnRH 2차 주사 후 24시간부터 32시간까지 2시간 간격으로 배란 여부를 조사하였다.
이론/모형
호르몬처리 방법으로는 GnRH+PGF2a+GnRH(Ovsynch)와 PGFza를 이용한 발정동기화 방법을 사용하였다. 2차 GnRH 투여 후 배란시간을 알아보기 GnRH 투여 후 24시간 후 부터 32시간까지 2시간 간격으로 초음파 Sonovet-600(Medison.
성능/효과
1. 호르몬 투여후 발정동기 화율은 PGF2a 투여구 에서 40.0%와 GnRH+PGF2a+GnRH(Ov-synch)처리구에서 91.3%로 나타났다.
2. 2차 GnRH 주사후 24시간에 배 란이 시작되어 32시간에 배란이 종료되었으며, 배란율은 28 시간째에 46.6%가 배란되어 가장 높게 나타났다.
3. 2차 GnRH 주사후 6~24시간에 수정 한 군이 6 시간 이전과 30시간 이후에 수정시킨 군에 비해 높은 수태율을 나타냈다.
4. 호르몬 처리 별 수태율은 PGF2a, CIDR 및 GnRH+PGF2a+GnRH(Ov-synch)에서 각각 50.0,36.0와 76.9%로 GnRH+PGF2Q+GnRH(0v-synch)군에서 가장 높은 수태율을 나타냈다.
PGF2a 투여구는 48.9%, GnRH+PGF2a+GnRH 투여구는 91.3%의 발정동기화율을 나타내어 GnRH를 이용한 발정동기화구에서 유의적으로 높게 나타났다 (p<0.001). 이와 같은 결과는 PGFza를 사용하여 발정 동기화를 시켰을 경우 Ryan 등(1995)이 발정 발견 후 8일째 PGFza를 투여하여 11일에 발 정확인 후 인공수정을 시키는 방법으로 실험한 결과 32% 가 발정발현되었다는 보고보다는 16.
Table 3에서는 2차 GnRH 투여 후 인공수정 시간대별 수태율을 조사한 성적으로 GnRH 2차 투여 후 30시간 후에 인공수정한 개체와 2차 GnRH 투여 후 6시간 이전에 인공수정한 개체에서 각각 수태율이 40%로 가장 낮게 나타났고, 18~26시간째에 인공수정한 군에서 50% 이상의 수태율을 나타냈으며, 18시간째에 가장 높은 57.1%의 수태율을 나타냈다. 따라서 GnRH 2차 투여 후 높은 수태율을 얻고자 한다면, 2차 GnRH 투여 후 6시간이 전, 30시 간이후에 인공수정 하는 것보다 2차 GnRH 투여 후 18시간째에 인공수정하는 것이 6시간 이전, 30시간 이후에 인공수정하는 것보다 15% 이상의수태율 증진효과를 가져올 것으로 생각된다.
9%로 나타난 발정동기화 보다 높게 나타났으며, 시간대별 발정 발현율은 24~28시간에 20%, 49~72시간에 55%, 73시간 이후에 15%로 발현되었다고 보고하였다. Stephens와 Rajamahendran(1998)°] PGFza 주사 후 11일에 재차 PGF?a를 투여하여 72시간 이내에 미경산우 30두중 25두가 발정발현 되어 83%의 발현율을 나타내 본 실험의 48.9%보다 발정 발현율이 매우 높았으며, 29두의 미경산우에서 26두가 발정 동기화되 어 발정동기화율은 90%로 나타났디..
공시된 15두의 한우 중 2차 GnRH 주사후 24, 26, 28, 30 그리고 32 시간에 각각 33.3, 46.6, 6.7 및 6.7% 배란이 되어 인공 수정 후 대부분 배란이 되는 것을 알 수 있었으며, Ov-syhch처리 후 시간대 별 배 란율은 Table 2에서 보는 바와 같이 26~28 시간에 79.9%로 가장 높게 배란이 일어났다. 2차 GnRH 투여 후 24시 간째 와 30시간이후 부터는 각각 6.
1%의 수태율을 나타냈다. 따라서 GnRH 2차 투여 후 높은 수태율을 얻고자 한다면, 2차 GnRH 투여 후 6시간이 전, 30시 간이후에 인공수정 하는 것보다 2차 GnRH 투여 후 18시간째에 인공수정하는 것이 6시간 이전, 30시간 이후에 인공수정하는 것보다 15% 이상의수태율 증진효과를 가져올 것으로 생각된다.
1(98/118)%로 큰 차이가없는 배란율을 보고하였다. 따라서 개선된 배란율과 수태율을 원한다면 배란 12시간 전, 즉 14-16 시간에 인공수정을 실시하는 것이 높은 수태율을얻을 수 있을 것으로 생각된다.
3%로 Ste- phens와 Leslie(1998)의 78%보다는 높게 나타났다. 따라서 이러한 결과는 PGF2a 2회 투여구의 경우 본시험에서는 황체 유무에 관계없이 호르몬을 처리하였던 것과 standing heat만을 실험에 공시한 반면 점액 성상 및 2차 발정징후까지 포함한 것에서 기인된 것으로 사료되며, GnRH 처리구의 경우 한우에는 체중에 비하여 많은 GnRH가 투여됨으로써 새로운 난포발육이 확실하게 진행된 결과인 것으로 사료된다.
0% 보다 약 40% 정도 많은 수태율을 나타냈다. 또한 CIDR+EB처리에서는 52두중 78.8%가 임신을 하여 본 연구에서 CIDR + PGFza를 사용하여 나온 성적보다 40% 정도 높게 나타났다.
3 %가 발정발현되었다. 또한 수태율은 PGF2a 처리 군에서 48%, GnRH + PGF2a +GnRH처리군에서 37.3%로 나타났으며, 임신율은 각각 58두와 50두가 임신하여 27.4%와 28.9%로 GnRH + PGF2a +GnRH 처리군이 조금 높게 나타났다. 이와 같은 Stephens 와 Rajamahendran 등(1998)의 보고와 Stephens와 Leslie등(1998)의 연구 결과는 본 실험의 결과인 PGF2a 2회 처리시 발정발현율이 48.
Table 4는 발정 . 배란 동기화에 의하여 발정에관계없이 일정 시간에 1회 인공수정한 성적으로 PGF2a, CIDR 및 GnRH+PGF2a+GnRH(Ov-synch) 에서 각각 50.0, 36.0와 76.9%의 수태율을 나타내 PGF2a 2회 주사에 의한 발정동기화처리로 얻어진우군의 수태율인 50%보다 GnRH+PGF2a+GnRH (Ovsynch)법으로 처리된 군에서 수태율이 76.9% 로써 유의적으로 높게 나타났다. 이와 같은 결과는 Xu와 Burton이(1997) PGFza를 2회 처리하여 발정동기화한 결과 1회 인공수정한 수태율 61.
본 연구에서 얻어진 결과에 의하면 PGF2a 투여에 따른 발정동기화처리 군에서의 수태율은 50%, GnRH+PGF2a+GnRH(Ov-synch)군에서는 76.9%의수태율을 얻을 수 있어 GnRH+PGF2a+GnRH(Ov- synch)처리가 PGF2a 처리시 보다 20.6% 높은 수태율을 나타냈다. 따라서 GnRH+PGF2a+GnRH(Ov- synch)처리는 높은 수태율을 얻을 수 있는 잇점과발정 발견을 하지 않고도 정시에 집중적으로 인공수정할 수 있다는 장점을 가지고 있어 한우 수태율 증진에 효율적 사용되리라 기대된다.
후속연구
6% 높은 수태율을 나타냈다. 따라서 GnRH+PGF2a+GnRH(Ov- synch)처리는 높은 수태율을 얻을 수 있는 잇점과발정 발견을 하지 않고도 정시에 집중적으로 인공수정할 수 있다는 장점을 가지고 있어 한우 수태율 증진에 효율적 사용되리라 기대된다.
참고문헌 (21)
Lucy, M. C., Stevenson, J. S. and Call, E. P. 1986. Controlling first service and calving interval by prostaglandin $F_2\alpha$ , gonadotropin-releasing hormone, and timed insemination. J. Dairy. Sci. 69:2186-2294
Martines, N. F., Kastelic, J. P., Adams, G. P., and Mapletoft, R. J. 2001. The use of a progesterone-releasing device(ClDR-B) or melengestrol acetate with GnRH, LH, or estradiol benzoate for fixed-time Al in beef heifers. J. Anim. Sci. 80:1746-1751
Pursley, J. R., Kosorok, M. and Wiltbank, M. 1990. Reproductive management of lactating dairy cows using synchronization of ovulation. J. Dairy. Sci. 80:301-306
Pursley, J. R., Wilbank, M. C., Stevenson, J. S., Ottobre, J. S., Garverick, H. A. and Anderson, L. L. 1997. Pregnancy raye per artificial insemination for cows and heifers inseminated at a synchronized ovulation or synchronized estrus. J. Dairy. Sci. 80:295-300
Pursley, J. R., Silcox, R. and Wilbank, M. C. 1998. Effect of time of artificial insemination on pregnancy rates, calving rates, pregnancy loss, and gender ratio after synchronization of ovulation in lactating dairy cows. J. Dairy. Sci. 81:2139-2144
Roche, J. F., Prendiville, D. J. and Davis, W. D. 1987. Calving rate following fixed time insemination after a 12-day progesterone treatment in dairy cows, beef cows and heifers. Vet. Rec, 101(21):417-419
Ryan, D. P., Bao, M. K. and Williams, G. L. 1995. Metabolic and luteal sequelae to heightened dietary fat intake in under nourished, anestrous beef cows induced to ovulate. J. Anim. Sci. 73:2086-2093
Ryan, D. P., Snijders, S., Yaakub, H. and O'Farrell, K. J. 1995. An evaluation of estrus synchronization programs in reproductive management of dairy herds. J. Anim. Sci. 73:3687-95
Stephen, J. L., Ken, E. L., Henry, J. C., David, F. K. and Gregory, P. K. 1998. Measures of estrus detection and pregnancy in dairy cows after administration of gonadotropinreleasing hormone within an estrus synchronization program based on prostaglandin $F_2\alpha$ . J. Dairy. Sci. 81:375-381
Stevenson, J. S., Lucy, M. C. and Call, E. P. 1987. Failure of time inseminations and associated luteal function in dairy cattle after two injections of prostaglandin $F_2\alpha$ . Theriogenology Vol. 28 No. 6
Stevenson, J. S., Kobayashi, Y. and Thompson, K. E. 1999. Reproductive performance of dairy in various programmed breeding systems including ovsynch and combinations of gonadotropin-releasing hormone and prostaglandin $F_2\alpha$ . J. Dairy. Sci. 82:506-15
Stevenson, J. S., Mee, M. O. and Stewart, R. E. 1989. Conception rates and calving intervals after prostaglandin $F_2\alpha$ or prebreeding progesterone in dairy cows. J. Dairy. Sci. 72:208-18.
Stevenson, J. S., Smith, J. F. and Hawkins, D. E. 2000. Reproductive outcomes for dairy heifers treated with combinations of prostaglandin $F_2\alpha$ alpha, norgestomet, and gonado-tropin-releasing hormone. Daily. Sci. 83:2008-15
Stevenson, J. S., Thompson, K. E., Forbes, W. L., Lamb, G. C., Grieger, D. M. and Corah, L. R. 2000. Synchronizing estrus and(or) ovulation in beef cows after combinations of GnRH, norgestomet, and prostaglandin $F_2\alpha$ with or without timed insemination. J. Anim. Sci. 78: 1747-1752
Thatcher, W. W., Macmillan, K. L., Hansen, P. J. and Drost, M. 1989. Concepts for regulation of corpus luteum function by the conceptus and ovarian follicle to improve fertility. Theriogenology 31:149-164
Twagiramungu, H., Guilbault, L. A., Proulx, J., Villeneuve, P. and Dufour, J. J. 1992. Infiuence of an agonist of gonadotropin-releasing hormone (buserelin) on estrus synchronization and fertility in beef cows. J. Anim. Sci. 70:1904-1910
Xu, Z. Z., Burton, L. J., and Macmillan, K. L. 1997. Reproductive performanmce of lactating dairy cows followong estrus synchronzation regimens with $PGF_2\alpha$ and progesterone. Theriogenlogy 47:687-701
Xu, Z. Z. and Burton, L. J. 2000. Estrus synchronization of lactating dairy cows with GnRH, progesterone, and prostaglandin $F_2\alpha$ . J. Dairy. Sci. 83:471-6
Yavas, Y., Johnson, W. H. and Walton, J. S. 1999. Modification of follicular dynamics by exogenous FSH and progesterone, and the induction of evaluation using hCG in postpartum beef cows. Theriogenology 52:949-963
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.