$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

Membrane Filter와 Sucrose 농도가 도라지(Platycodon grandiflorum A. DC.) 기내 배양묘의 생장에 미치는 영향
Effects of Membrane Filter and Sucrose Concentrations on the Growth of Balloon Flower (Platycodon grandiflorum A. DC.) Plantlets In Vitro 원문보기

식물생명공학회지 = Korean journal of plant biotechnology, v.31 no.3, 2004년, pp.209 - 217  

최소라 (전라북도농업기술원 진안숙근약초시험장) ,  김명준 (전북대학교 농업과학기술연구소) ,  은종선 (전북대학교 원예학과 생물산업연구소) ,  안민실 (전라북도농업기술원 남원고냉지화훼시험장) ,  임회춘 (전라북도농업기술원 남원고냉지화훼시험장) ,  류정 (전라북도농업기술원 진안숙근약초시험장) ,  유동현 (전라북도농업기술원)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

기내 배양환경을 조절하여 건전한 유식물체를 획득하기 위해 도라지를 무균발아시켜 shoot부분을 NAA 0.1 mg/L가 첨가된 MS 기본배지에 치상한 후 membrane filter 부착 유무와 sucrose 농도를 달리 처리하여 생장반응을 조사하였다. Membrane filter 미부착구에서는 배양용기 내의 $CO_2$$C_2$H$_4$ 농도가 membrane filter 부착구에 비해 높았으며 membrane filter가 부착되지 않았을 때 $CO_2$ 농도는 배양기간이 경과될수록 증가하였으나 $C_2$H$_4$ 농도는 감소하는 경향이었다. 식물체 생장은 membrane filter 부착구가 미부착구에 비해 양호하였고, 미부착구에서는 sucrose 농도가 증가할수록 생육이 양호하게 나타났다. 생체중과 건물중은 membrane filter를 부착하지 않은 sucrose 4.5% 처리구에 비해 membrane filter를 부착한 sucrose 무첨가구에서 비슷하거나 높았다. 엽록소 함량은 membrane filter 부착구에서 미부착구에 비해 높았으며 당 함량도 비슷한 경향이었는데 두 처리간 차이는 더 컸다. 기공은 membrane filter 부착구에서 미부착구에 비해 닫혀 있었으며 엽육조직은 membrane filter를 부착하거나 sucrose 농도가 높을수록 잘 발달하였다. 또한 상토에 이식한 후 13일째 생존율은 sucrose 처리 농도에 관계없이 membrane filter 미부착구는 0%인데 비해 부착구는 100%로 나타났다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The shoots of balloon flower (Platycodon grandiflorum A. DC.) in vitro germinated from seeds were cultured on MS basal medium containing 0.1 mg/L NAA under the various sucrose concentrations and with/without membrane filter (MF) on the lid of vessel. The growth responses were checked to obtain healt...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 실험은 도라지의 기내 배양묘 생산에 있어 배양환경을 조절하는 방법으로 가스 교환이 되는 membrane Ultd를 이용하고 sucrose 농도를 달리 처리하여 타가영양 (heterotrophic) 과 광자가영 양 (photoautotrophic), 광혼합영 양 (photomixo- trophic) (Chung 1995)을 통한 식물체의 생장반응을 조사하여 건전묘 생산에 효과적인 배양방법을 찾고자 하였다.

가설 설정

  • 배양 30일묘의 생육모습을 비교해 보면 (Figure 3), mem­ brane filter를 부착하지 않았을 경우에는 저농도의 sucrose처리에서 엽이 얇고 백화되는 특징을 보이다가 . 5%에서는줄기 하단부에 부착된 엽의 엽록소가 파괴되고 아래로 쳐지는 현상이 나타났는데 이는 일반적인 광도로 도라지 기내 묘를 배양하였을 때에 볼 수 없었던 모습으로 (결과 미제시) membrane filter를 부착하지 않은 상태에서 일반적인배양환경보다 높은 광도를 조사하였을 때 광자가영양체계를 갖지 못한 상태이기 때문에 과도한 호흡을 유발하는 스트레스 원으로 작용되는 것으로 생각된다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (28)

  1. Arnon DI (1959) Copper enzymes in isolated chloroplasts, polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiol 24: 1-15 

  2. Broome O, Zimmerman R (1978) In Vitro propagation from shoot tips of blackberry. Hort Sci 13: 151-153 

  3. Chung JD (1995) Recent Plant Biotechnology, Vol I. Kyungbuk Univ., Taegu, Korea 

  4. Debergh P (1991) Acclimatization techniques of plants from in vitro. Acta Hort 289: 291-300 

  5. Earle ED, Langhans RW (1975) Carnation propagation from shoot tips cultured in liquid medium. Hort Sci 10: 608-610 

  6. Fujiwara K, Kozai T (1995) Physical microenvironment and its effects. In : Aitken-Christie J, Kozai T, Lila Smith M (eds), Automation and environmental control in plant tissue culture. Kluwer Academic Publishers, Netherlands pp 319-369 

  7. Goo DH (1999) Growth characteristics of lily by the treatment of aeration in vitro. Kor J Plant Tiss Cult 26: 241-244 

  8. Grout BWW, Aston H (1977) Transplanting of cauliflower plants regenerated from meristem culture. I. Water loss and water transfer related to changes in leaf wax and to xylem regeneration. Hort Res 17: 1-7 

  9. Hakkaart FA, Versluijs JMA (1983) Some factors affecting glassiness in carnations meristem tip culture. Neth J Plant Path 89: 47-53 

  10. Han BH, Joung HY, Choi JK, Paek KY (1996) Effect of different sealing materials on $CO_{2}$ and ethylene concentration in culture vessel, and growth and vitrification on Gypsophila paniculata 'Bristol Fairy'. J Kor Soc Hort Sci 37: 118-122 

  11. Han BH, Paek KY, Choi JK (1992) Structural characteristics of vitrified and glaucous plantlets in Gypsophila paniculata L. in vitro. J Kor Soc Hort Sci 33: 177-189 

  12. Hull HM, Morton HL, Wharrie JR (1975) Environmental influences on cuticle development and resultant foliar penetration. Bot Rev 41: 421-451 

  13. Kim KW, Byun MS (1988) Physiological and morphological characteristics of the glaucous and vitreous carnation plantlets obtaines in vitro. J Kor Soc Hort Sci 29: 216-223 

  14. Kozai T (1991) Controlled environments in conventional and automated micropropagation. Cell Cult Somatic Cell Genet Plants 8: 213-230 

  15. Kozai T, Fujiwara K, Hayashi M, Kitaya Y (1994) Collected papers on environmental control in micropropagation. Vol. I, II. Faculty of Horticulture Chiba Univ., Matsudo, Japan 

  16. Kozai T, Iwanami Y (1988) Effects of $CO_{2}$ enrichment and sucrose concentration under high photon fluxes on plantlet growth of carnation (Dianthus caryophyllus L.) in tissue culture during the preparation stage. J Jap Soc Hort Sci 57: 279-288 

  17. Kozai T, Sekimoto K (1988) Effects of the number of air changes per hour of the closed vessel and the photosynthetic photon flux on the carbon dioxide concentration inside the vessel and the growth of strawberry in vitro. Environ Control Biol 26: 21-29 

  18. Kwon SI, Jeong HK, Kang IK, Kim MJ (2004) Effects of growth regulators and culture environment on ex vitro rooting and acclimatization of apple rootstock in vitro propagated. Kor J Plant Biotechnol 31: 133-138 

  19. Lee EJ, Jeong BR (1999) Growth of Limonium 'Misty Blue' as affected by culture environment in vitro and level of shading during ex vitro acclimatization. J Kor Soc Hort Sci 40: 623-626 

  20. Lee HS, Lim KB, Chung JD, Kim CK (2001) Structural characteristics of leaves and carbohydrate content of propagules grown at different culture conditions in Gerbera hybrida 'Beauty'. Kor J Plant Tiss Cult 28: 117-121 

  21. MacKinney G (1941) Absorption of light by chlorophyll solutions. J Biol Chem 140: 315-322 

  22. Martin JT, Juniper BE (1970) The cuticles of plants. Edward Arnold, London, England 

  23. McCready RM, Guggolz J, Silvieria V, Owens HS (1950) Determination of starch and amylose in vegetables. Anal Chem 22: 1156-1158 

  24. Morris DL (1948) Quantitative determination of carbohydrates with drywood's anthrone reagent. Science 107: 254-255 

  25. Paek KY, Yu KJ, Park SI, Shin SR (1997) Anatomical observation of vitrified and glaucous leaf from Rehmannia glutinosa plant produced in vitro. Kor J Plant Tiss Cult 24: 323-327 

  26. Park KW, Kim YS (1998) Hydroponics in Horticulture. Academy Publisher, Seoul, Korea 

  27. Sharkel KA, Novello V, Sutter EG (1990) Stomatal function and cuticular conductance in whole tissue cultured apple plants. J Amer Soc Hort Sci 115: 468-472 

  28. Sutter EG, Langhans RW (1979) Epicuticular wax formation on carnation plantlets regenerated from shoot tip culture. J Amer Soc Hort Sci 104: 493-496 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로