$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

돼지 미성숙 난자의 체외 성숙 시간이 배 발생과 부화에 미치는 영향
Effect of In Vitro Maturation Time of Porcine Immature Oocytes on the Subsequent Development and Hatching after In Vitro Fertilization 원문보기

韓國受精卵移植學會誌 = Korean journal of embryo transfer, v.21 no.2, 2006년, pp.129 - 135  

김재영 (차병원 여성의학연구소 불임의학연구소) ,  박향 (차병원 여성의학연구소 불임의학연구소) ,  김재명 (포천중문의과대학교) ,  이정형 (포천중문의과대학교) ,  박용수 (경상북도 축산기술연구소) ,  곽동석 (대구대학교 공과대학 생명공학과) ,  박흠대 (대구대학교 공과대학 생명공학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구는 돼지 체외 수정란의 생산에 있어서 체외성숙 시간이 핵성숙, 다정자 침입율 및 배 발생과 배반포의 부화율 배반포의 부화에 미치는 효과를 검토하였다. 돼지 난포란의 핵성숙율이 체외성숙 36, 38, 40, 42 및 44 시간째에 각각 68.0, 78.0, 79.5, 73.8 및 81.8%로서 각 군간에 유사한 경향이었으며, 체외 수정 후 다정자 침입율도 각각 48.7, 36.0, 44.4, 38.9 및 31.8%로서 차이가 없었다. 체외 성숙 시간에 따른 2세포기 발달율은 체외 성숙 36시간군이 77.3%로서 가장 높았고, 체외 성숙 40 및 44 시간의 70.6 및 70.3%와는 유의차가 인정되었다(p<0.05). 배반포 발달율은 38시간군의 23.1%가 체외 성숙 44 시간군의 15.6%보다 유의하게 높았다(p<0.05). 따라서 돼지 난포란의 44시간 체외 성숙이 배 발생에 비효과적이었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was conducted to investigate the effect of in vitro maturation (IVM) duration of porcine follicular oocytes on maturation rate, polyspermic rate, and subsequent embryo development. The nuclear maturation rates of oocytes matured for 36, 38, 40, 42 and 44 hr were similar between 68.0, 78.0...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 연구는 돼지 체외 수정란의 생산에 있어 고 품질 배반포 생산에 필요한 배양 체계를 확립하기 위하여 체외 성숙 시간이 돼지 미성숙 난자의 핵 성숙, 배 발생 및 배반포의 부화에 미치는 영향을 검토하였다.
  • 본 연구는 돼지 체외 수정란의 생산에 있어서 체외성숙 시간이 핵성숙, 다정자 침입율 및 배 발 생과 배반포의 부화율 배반포의 부화에 미치는 효과를 검토하였다. 돼지 난포란의 핵성숙율이 체외성숙 36, 38, 40, 42 및 44 시간째에 각각 68.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (34)

  1. Austin CR. 1967. Chromosome deterioration in aging eggs of the rabbit. Nature, 213:1018-1019 

  2. Byun TH and Lee SH. 1992. Morphological and cellular criteria ovaries, follicles and oocytes for in vitro maturation in the pig. Korean J. Emb. Trans., 7:97-110 

  3. Ding J and Foxcroft GR. 1994. Epidermal growth factor enhances oocyte maturation in pigs. Mol. Reprod. Dev., 39:30-40 

  4. Dokras A, Sargent IL and Barlow DH. 1993. Human blastocyst grading: an indicator of developmental potential? Hum. Reprod., 8:2119-2127 

  5. Downs SM. 1989. Specificity of epidermal growth factor action on maturation of the murine oocytes and cumulus oophorus in vitro. Biol. Reprod., 41:371-379 

  6. Edwards RG. 1965. Maturation in vitro of mouse, cow, pig, rhesus monkey and human ovarian oocytes. Nature, 208:349-351 

  7. Fukui Y, Terawaki Y and Ono H. 1982. Effect of gonadotropins and steroids and culture on bovine oocytes maturation. Theriogenology, 18: 161-175 

  8. Funahashi H and Day BN. 1993. Effects of duration of exposure to supplemental hormones on cytoplasmic maturation of pig oocytes in vitro. J. Reprod. Fertil., 98:179-185 

  9. Funahashi H, Cantley TC, Stumpf TT, Terlouw SL and Day BN. 1994. Use of low-salt culture medium for in vitro maturation of porcine oocytes is associated with elevated oocyte glutathione levels and enhanced male pronuclear formation after in vitro fertilization. Biol. Reprod., 51: 633-639 

  10. Hensleigh MA and Hunter AG. 1985. In vitro maturation of bovine cumulus-enclosed primary oocytes and their subsequent in vitro fertilization and cleavage. J. Dairy. Sci., 68:1456-1462 

  11. Hunter RHF. 1991. Oviductal function in pigs with particular reference to the pathological condition of polyspermy. Mol. Reprod. Dev., 29:385-391 

  12. Hunter RHF and Greve T. 1997. Could artificial insemination of cattle be more fruitful? Penalties associated with aging eggs. Reprod. Dom. Anim., 32:137-141 

  13. Husiman W. 1994. Quality system in the medical laboratory: the role of a quality manual. Ann. Biol. Clin., 52:457-461 

  14. Jarrell VI, Day BN and Prather RS. 1991. The transition from maternal to zygotic control of development occurs during the 4-cell stage in the domestic pigs, Sus crofa: Quantitative aspects of protein synthesis. Biol. Reprod., 44:62-68 

  15. Ka HH, Sawai K, Wang WH, Im KS and Niwa K. 1997. Animo acids in maturation medium and presence of cumulus cells at fertilization promote male pronuclear formation in porcine oocytes matured and penetrated in vitro. Biol. Reprod., 57:1478-1483 

  16. Kim NH, Funahashi H, Moon SJ, Abeydeera L, Prather RS and Day BN. 1996. Effects of oviductal fluid on the cortical granule reaction and polyspermy in the porcine oocytes. J. Reprod. Fertil., 107:79-86 

  17. Kim NH, Moon SJ, Prather RS and Day BN. 1996. Cryoskeletal alteration in aged porcine oocytes and parthenogenesis. Mol. Reprod. Dev., 43:513-518 

  18. Leibfried-Rutledge ML, Crister ES and First NL. 1986. Effect of fetal calf serum and bovine serum albumin on in vitro maturation and ferilization of bovine and hamster cumulus oocyte complexes. Biol. Reprod., 35:850-857 

  19. Long CR, Damiani P, Pinto-Correia C, Maclean RA, Duby RT and Robi JM. 1994. Morphology and subsequent development in culture of bovine oocytes matured in vitro under various conditions of fertilization. J. Reprod. Fertil., 102: 361-369 

  20. Marchal R, Feugang JM, Perreau C, Venturi E, Terqui M and Mermillod P. 2001. Meiotic and developmental competence of prepubertal and adult swine oocytes. Theriogenology, 56:17-29 

  21. Massip A, Mermillod P, Wils C and Dwssy F. 1993. Effect of dilution procedure and culture condition after thawing on survival of frozen bovine blastocysts produced in vitro. J. Reprod. Fertil., 97:65-69 

  22. Mattioli M, Galeati G and Seren E. 1988. Effect of follicle somatic cells during pig oocyte maturation on egg penetrability and male pronucleus formation. Gamete Res., 20:177-183 

  23. Motlik J, Grozet N and Fulka J. 1984. Meitoic competence in vitro of pig oocytes isolated from antral follicles. J. Reprod. Fertil., 72:323-328 

  24. Naito K, Fukuda Y and Toyoda Y. 1988. Effects of porcine follicular fluid on male pronucleus formation in porcine oocytes matured in vitro. Gamete Res., 21:289-295 

  25. Overstr MEW. 1996. In vitro assessment of embryo viability. Theriogenology, 45:3-16 

  26. Park YS, Kim SS, Kim JM, Park HD and Byun MD. 2005. The effects of duration of in vitro maturation of bovine oocytes on subsequent development, quality and transfer of embryos. Theriogenology, 64:123-134 

  27. Petters RM and Wells KD. 1993. Culture of pig embryos. J. Reprod. Fertil., 48:61-73 

  28. Schoenback RA, Peters MS, Rickords LF, Stumpf TT and Prather RS. 1992. Characterization of deoxyribonucleic acid synthesis and the transition from maternal to embryonic control in the 4-cell porcine embryos. Biol. Reprod., 47:1118-1125 

  29. Wang WH, Abeydeera LR, Cantley TC and Day BN. 1997. Effects of oocytes maturation media on development of pig embryos or produced by in vitro fertilization. J. Reprod. Fertil., 111: 101-108 

  30. Wang WH, Abeydeera LR, Okuda K and Niwa K. 1994. Penetration of porcine oocytes during maturation in vitro by cryopreserved, ejaculated spermatozoa. Biol. Reprod., 50:510-515 

  31. Yoshida M. 1989. Improved viability of two-cell stage pig embryos resulting from in vitro fertilization of oocytes matured in vivo. J. Anim. Reprod., 35:34-37 

  32. Yoshida M, Mizoguchi Y, Ishigaki K, Kojima T and Nagai T. 1993. Birth of piglets derived from in vitro fertilization of pig oocytes matured in vitro. Theriogenology, 39:1303-1311 

  33. Zhu J, Telfer EE, Fletcher J, Springbett A, Dobrinsky JR, Desousa PA and Wilmut L. 2002. Improvement of an electrical activation protocol for porcine oocytes. Biol. Reprod., 66:635-641 

  34. 한만희. 1996. 체세포와의 공배양이 돼지 체외수정란의 배발달에 미치는 영향. 충남대학교 석사학위논문 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로