$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

수분 부족 스트레스 처리시 Monodehydroascorbate Reductase (MDHAR)의 반응
Response of Monodehydroascorbate Reductase (MDHAR) in Lettuce (Lactuca sativa L.) Leaves Subjected to Water Deficit Stress 원문보기

생물환경조절학회지 = Journal of bio-environment control, v.17 no.4, 2008년, pp.273 - 282  

강상재 (경북대학교 환경원예학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

수분 공급을 제한하여 수분 부족 스트레스를 처리한 상추식물에서 산화적 스트레스와 관련된 monodehydroascorbate reductase (MDHAR)의 활성도, 엽록소 함량, 과산화수소의 함량 등과의 상관관계를 조사한 결과, 생육배지의 수분의 함량이 감소함에 따라 식물체내 과산화수소의 생성량이 증가($R^2$=0.8851)하였으며, 수용성단백질 함량은 점차 감소($R^2$=0.9826)하는 경향을 나타내었다. 총 엽록소함량은 수분 부족 스트레스를 처리한 공시작물에서의 함량이 정상 생육시 보다 그 함량이 대체적으로 낮은 경향을 보였으며, 엽록소 a와 엽록소 b함량 변화도 총 엽록소의 함량변화와 비슷한 경향을 보였다. 그러나 총 엽록소에 대한 카로티노이드의 비율은 수분 부족 스트레스를 처리한 식물에서 정상생육 시 보다 더 높은 경향을 보였다. 수분 부족 스트레스가 진행됨에 따라 아스코브산의 함량은 정상 생육 시 보다 더 높은 경향을 보였으나 환원형인 디하이드로아스코브산의 함량은 수분 부족 스트레스를 처리한 초기에 정상생육 시 보다 더 낮은 경향을 보였다. MDHAR의 활성도는 사이토졸(cytosolic) 분획과 엽록체(chloroplastic) 분획에서 공히 크게 증가하였으며 MDHAR의 mRNA 전사 정도도 수분 부족 스트레스가 진행됨에 따라 크게 증가하였다. 수분함량이 감소함에 따라 MDHAR의 활성도가 크게 증가하였으며, 또한 과산화수소의 함량이 증가함에 따라서도 MDHAR의 활성도가 크게 증가($R^2$=0.9937과 0.8645)되어 수분 부족 스트레스로 나타나는 요인들과 MDHAR 사이에 밀접한 관련이 있음을 확인할 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The relationship between water deficit stress and monodehydroascorbate reductase (MDHAR) activity was determined in lettuce (Lactuca sativa L.) leaves under water stress condition imposed by with-holding water for 72 hrs. Relative water content determined in water deficit stressed lettuce leaves gra...

주제어

참고문헌 (36)

  1. Alexieva, V., I. Sergiev, S. Mapelli, and E. Karanov. 2001. The effect of drought and ultraviolet radiation on growth and stress markers in pea and wheat. Plant Cell and Environment 24:1337-1344 

  2. Arnon, D.I. 1949. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiol. 24:1-15 

  3. Asada, K. 1992. Ascorbate peroxidase-a hydrogen peroxide scavenging enzyme in plants. Physiologia Plantarum 85:235-241 

  4. Asada, K., and M. Takahashi, 1987. Production and scavenging of active oxygen in photosynthesis. In Photoinhibition: Topics in photosynthesis(eds D.J. Kyle, C. B. Osmond and C.J. Arntzen), pp. 227-287, Elsevier, Amsterdam 

  5. Bradford, M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 59:248-254 

  6. Chang, S., J. Puryear, and J. Cairney. 1993. A simple method for isolating RNA from pine trees. Plant Mol. Biol. Rep. 11:113-116 

  7. Chang, C.C., L. Ball, M.J. Fryer, N.R. Baker, S. Karpinski, and P.M. Mullineaux. 2004. Induction of ascorbate peroxidase 2 express in wounded Arabidopsis leaves does involve known wound signaling pathways but is associated with changes in photosynthesis. Plant J. 38:499-511 

  8. Conklin, P.L. 2001. Recent advances in the role and biosynthesis of ascorbic acid in plants. Plant, Cell and Environment 24:383-394 

  9. Foyer, C.H., and B. Halliwell. 1976. Presence of glutathione and glutathione reductase in chloroplasts: a proposed role in ascorbic acid metabolism. Planta 133:21-25 

  10. Foyer, C.H., J. Rowell, and D. Walker. 1983. Measurements of the ascorbate content of spinach leaf protoplasts and chloroplasts during illumination. Planta 157:239-244 

  11. Foyer, C., H. Lopez-Delgado, J.F. Dat, and I.M. Scott. 1997. Hydrogen peroxide- and glutathione-associated mechanism of acclimatory stress tolerance and signalling. Physiol. Plant 100:241-254 

  12. Grantz, A.A., D.A. Brummell, and A.B. Bennett. 1995. Ascorbate free radical reductase mRNA levels are induced by wounding. Plant Physiol. 108:411-418 

  13. Heber, U., C. Moyake, J. Mano, C. Ohno, and K. Asada. 1996. Monodehydroascorbate radical detected by electron paramagnetic resonance spectrometry as a sensitive probe of oxidative stress in intact leaves. Plant and Cell Physiol. 37:1066-1072 

  14. Hossain, M.A. and K. Asada. 1984. Purification of dehydroascorbate reductase from spinach and its characterization as a thiol enzyme. Plant and Cell Physiol. 25:85-92 

  15. Iturbe-Ormaetxe, I., P.R. Escuredo, C. Arrese-Igor, and M. Becana. 1998. Oxidative damage in pea plants exposed to water deficit or paraquat. Plant Physiol. 116:173-181 

  16. Jimenez, A., J.A. Hernandez, L.A. del-Rio, and F. Sevilla. 1997. Evidence for the presence of the ascorbate glutathione cycle in mitochondria and peroxisomes of pea leaves. Plant Physiol. 114:275-284 

  17. Kang, S.J., J.Y. Oh, and J.D. Chung. 1999. Changes of antioxidant enzyme activities in leaves of lettuce exposed to ozone. J. Kor. Soc. Hort. Sci. 40:541-544 

  18. Kang, S.J., J.Y. Oh, and J.H. Kim. 2001. Effect of temperature of irrigation water on the growth and activities of some enzymes in cucumber seedling(Cucumis sativus L.) J. Kor. Soc. Hort. Sci. 42:399-404 

  19. Kim, T.S., S.J. Kang, and W.C. Park. 1999. Changes in antioxidant enzymes activities of soybean leaves subjected to water stress. J. Korean Soc. Agric. Chem. Biotechnol. 42:246-251 

  20. Leterrier, M., F.J. Corpas, J.B. Barosso, L.M. Sandalio, and L.A. del Rio. 2005. Peroxisomal monodehydroascorbate reductase. genomic clone characterization and functional analysis under environmental stress conditions. Plant Physiol. 138:2111-2123 

  21. Levin, A., R. Tenkaken, R. Dixon, and C. Lamb. 1994. $H_2O_2$ from the oxidative burst orchestra the plant hypersensitive disease resistance response. Cell 79: 583-593 

  22. Lichtenthaler, H.K. 1987. Chlorophyll and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. Methods Enzymol. 148:350-382 

  23. Mittler, R. 2002. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends in Plant Sci. 7:405-410 

  24. Morell, S., H. Follmann, M.D. Tullio, and I. Haberlein. 1997. Dehydroascorbate and dehydroascorbate reductase are phantom indicator of oxidative stress in plants. FEBS Letters 414:567-570 

  25. Padh, H. 1990. Cellular functions of ascorbic acid. Biochem. and Cell Biol. 68:1166-1173 

  26. Pastori, G.M., G. Kiddle, J. Antonie, S. Bernard, S. Veljovic-Jovanovic, P.J. Verrier, G. Noctor, and C.H. Foyer. 2003. Leaf vitamine C contents modulate plant defense transcripts and regulate genes that control development through hormone signaling. The Plant Cell 15:939-951 

  27. Sambrook, J., E. Fritsch, T. Maniatis. 1989. Molecular cloning: A Laboratory Manual, Ed 2. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY 

  28. Sano, S., S. Tao, Y. Endo, T. Inaba, M.A. Hossain, C. Miyake, M. Matsuo, H. Aoki, and K. Saito. 2005. Purification and cDNA cloning of chloroplastic monodehydro ascorbate reductase from spinach. Biosci. Biotechnol. Biochem. 69:762-772 

  29. Shigeoka, S., T. Ishikawa, M. Tamoi, Y. Miyakawa, T. Takeda, Y. Yabuta, and K. Yoshimura. 2002. Regulation and function of ascorbate peroxidase isoenzymes. J. of Exp. Bot. 53:1305-1319 

  30. Smirnoff, N. and G.L. Wheeler. 2000. Ascorbic acid in plants: biosynthesis and function. Crit. Rev. Plant Sci. 19:267-290 

  31. Tambussi, E.A., C.G. Bartoli, J. Beltrano, J.J. Guiamet, and J.L. Araus. 2000. Oxidative damage to thylakoid proteins in water stressed leaves of wheat (Triticum aestivum). Physiologia Plantarum 108:398-404 

  32. Tokunaga, T., K. Miyahara, K. Tabata, and M. Esaka. 2005. Generation and properties of ascorbic acid-overproducing transgenic tobacco cells expressing sense RNA for L-galactono-1,4-lactone dehydrogenase. Planta 220:845-863 

  33. Veljovic-Jovanovic, S.D., C. Pignocchi, G. Noctor, and C.H. Foyer. 2001. Low ascorbic acid in the vtc-1 mutant of Arabidopsis is associated with decreased growth and intercellular redistribution of the antioxidant system. Plant Physiol. 127;426-435 

  34. Yabuta, Y., T. Maruta, K. Yoshimura, T. Ishikawa, and S. Shigeoka. 2004. Two distinct redox signaling pathways for cytosolic APX induction under photooxidative stress. Plant Cell Physiol. 45:1586-1594 

  35. Yoshimura, K., Y. Yabuta, T. Ishikawa, and S. Shigeoka. 2000. Expression of spinach ascorbate peroxidase isoenzymes in response to oxidative stresses. Plant Physiol. 123:223-233 

  36. Zlatev, Z.S., F.C. Lidom, J.C. Ramalho, and I.T. Yordanov. 2006. Comparision of resistance to drought of three bean cultivar. Biologia Plantrum 50:389-394 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로