한국 서해산 암컷 비단가리비, Chlamys farreri의 난형성과정 중 생식세포 분화 및 생식주기 Germ Cell Differentiations during Oogenesis and Reproductive Cycle in Female Jicon Scallop, Chlamys farreri on the West Coast of Korea원문보기
1998년 3월부터 1999년 2월까지 전라남도 대흑산도 연안에서 채집한 비단가리비를 대상으로 생식소중량지수, 생식세포 분화 및 난소주기를 조직, 세포학적 관찰에 의해 조사하였다. 초기 난황형성 난모세포에서, 골지체, 미토콘드리아 및 조면소포체들은 지방적 형성에 관여하였다. 후기난황형성난모세포에서 생식상피상에 존재하는 외인성 물질들 즉, 글리코겐 입자들 및 지방 과립상 물질들이 난황막의 미세융모를 통해서 난모세포의 난질로 통과해 들어갔다. 후기난황형성난모세포에서, 난황과립들과 다포체들은 단백질성 난황과립형성에 관여하였다. 난황형성과정은 내인성 자율합성과 외인성 타가합성에 의해서 일어난다. 보조세포들은 초기단계인, 전난황형성 난모세포 및 초기 난황형성 난모세포들의 형성 및 발달에 영양세포로서 기능을 한다. 생식소 중량지수의 월별 변화는 난소 발달단계들과 밀접한 관련을 가지며 변하였다. 본 종의 생식주기는 초기활성기(1~3월), 후기활성기(3~4월), 완숙기(4~8월), 부분산란기(6~8월), 퇴화 및 비활성기(8~12월)의 5단계로 구분되었다. 산란은 6~8월 사이에 일어나며, 주산란기는 수온이 높은 7~8월이었다.
1998년 3월부터 1999년 2월까지 전라남도 대흑산도 연안에서 채집한 비단가리비를 대상으로 생식소중량지수, 생식세포 분화 및 난소주기를 조직, 세포학적 관찰에 의해 조사하였다. 초기 난황형성 난모세포에서, 골지체, 미토콘드리아 및 조면소포체들은 지방적 형성에 관여하였다. 후기난황형성난모세포에서 생식상피상에 존재하는 외인성 물질들 즉, 글리코겐 입자들 및 지방 과립상 물질들이 난황막의 미세융모를 통해서 난모세포의 난질로 통과해 들어갔다. 후기난황형성난모세포에서, 난황과립들과 다포체들은 단백질성 난황과립형성에 관여하였다. 난황형성과정은 내인성 자율합성과 외인성 타가합성에 의해서 일어난다. 보조세포들은 초기단계인, 전난황형성 난모세포 및 초기 난황형성 난모세포들의 형성 및 발달에 영양세포로서 기능을 한다. 생식소 중량지수의 월별 변화는 난소 발달단계들과 밀접한 관련을 가지며 변하였다. 본 종의 생식주기는 초기활성기(1~3월), 후기활성기(3~4월), 완숙기(4~8월), 부분산란기(6~8월), 퇴화 및 비활성기(8~12월)의 5단계로 구분되었다. 산란은 6~8월 사이에 일어나며, 주산란기는 수온이 높은 7~8월이었다.
The gonadosomatic index, germ cell differentiation, and the ovarian cycle in female jicon scallop, Chlamys farreri were studied by histologic and cytologic observations. In the early vitellogenic oocyte, the Golgi complex, mitochondria and rough endoplasmic reticulum were involved in the formation o...
The gonadosomatic index, germ cell differentiation, and the ovarian cycle in female jicon scallop, Chlamys farreri were studied by histologic and cytologic observations. In the early vitellogenic oocyte, the Golgi complex, mitochondria and rough endoplasmic reticulum were involved in the formation of lipid droplets. In the late vitellogenic oocyte, exogenous substances, namely, glycogen particles and lipid granular substances appeared in the germinal epithelium passed into the ooplasm through the microvilli of the envelope. Yolk granules and multivesicular bodies were involved in the formation of proteinecious yolk granules in the late vitellogenic oocyte. Vitellogenesis occurrs by endogenous autosynthesis and exogenous heterosynthesis. The auxiliary cells function as nutritive cells in the formation and development of the previtellogenic and early vitellogenic oocytes in their earlr stages. Monthly changes in the gonadosomatic index were closely associated with ovarian developmental phases. The reproductive cycle of this species can be classified into five stages: early active stage (January to March), late active stage (March to April), ripe stage (April to August), partially spawned stage (June to August), and spent/inactive stage (August to December). Spawning occurred from June to August, and the major spawning season was from July to August when the sea water was at high temperature.
The gonadosomatic index, germ cell differentiation, and the ovarian cycle in female jicon scallop, Chlamys farreri were studied by histologic and cytologic observations. In the early vitellogenic oocyte, the Golgi complex, mitochondria and rough endoplasmic reticulum were involved in the formation of lipid droplets. In the late vitellogenic oocyte, exogenous substances, namely, glycogen particles and lipid granular substances appeared in the germinal epithelium passed into the ooplasm through the microvilli of the envelope. Yolk granules and multivesicular bodies were involved in the formation of proteinecious yolk granules in the late vitellogenic oocyte. Vitellogenesis occurrs by endogenous autosynthesis and exogenous heterosynthesis. The auxiliary cells function as nutritive cells in the formation and development of the previtellogenic and early vitellogenic oocytes in their earlr stages. Monthly changes in the gonadosomatic index were closely associated with ovarian developmental phases. The reproductive cycle of this species can be classified into five stages: early active stage (January to March), late active stage (March to April), ripe stage (April to August), partially spawned stage (June to August), and spent/inactive stage (August to December). Spawning occurred from June to August, and the major spawning season was from July to August when the sea water was at high temperature.
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문제 정의
생식주기에 관한 연구는 산란기와 비단가리비의 연령 사정 및 기입 시기를 추정하게 하는 귀중한 정보를 준다. 그러나 자원 보존과 양식을 위한 기초 자료가 되는 난형성 과정 중 생식세포들의 분화, 그리고 생식주기 및 지역개체군의 산란기에 관한 기초 정보자료가 제대로 밝혀지지 않은 실정이므로, 본 연구에서는 전자현미경적 관찰 및 조직학적 방법을 이용하여 전남 대흑산도 연안에서 채취한 비단가리비 암컷을 대상으로 생식생물학적 기초 자료인 난형성 과정, 생식소 중량지수, 난소 발달 단계에 따른 생식주기를 조사하여 자원보존 및 양식기술 개발을 위한 기초 자료로 제공하려고 한다.
제안 방법
1 M phosphate buffer로 세척하고 ethanol로 단계별 탈수하여 포매하였다. 그리고 semithin section 후 두께 70 nm의 ultrathin section을 uranyl acetate와 lead citrate 용액으로 이중 염색하여 투과전자현미경(TEM)으로 관찰하였다.
비단가리비의 산란기를 간접적으로 파악하기 위하여 생식소 중량지수(GSI)를 월별로 조사하였다. GSI의 월별 변화는 3월에 증가하기 시작하여 5월에 최대값(10.
생식소의 성적 발달상태를 조직학적으로 관찰하기 위해 성숙한 암, 수 개체로부터 생식소를 적출하여 Bouin's solution 에 24시간 고정한 다음, paraffin 절편법으로 3～5 μm 두께의 연속절편을 만들었으며, 핵과 세포질의 구분을 위해 Hansen's heamatoxylin과 0.5% eosin으로 이중 염색한 다음, 생식소의 조직학적 발달단계는 초기활성기, 후기활성기, 완숙기, 부분산란기, 휴지기의 5단계로 나누었으며, 광학현미경하에서 생식소의 발달상태를 관찰하여 발달단계를 판정하였다.
01 mm까지 측정하였다. 육중량(meat weight: MW) 및 생식소중량(gonad weight: GW)은 전자저울(Sartorius; E5500S)을 사용하여 0.01 g까지 측정하였다.
1). 채집된 비단가리비는 실내 연구실로 운반하여 매달 30마리씩 각고(shell height: SH), 각장(shell length: SL) 및 각폭(shell width: SW)은 디지털 Vernier caliper(Mitutoyo Corporation; CD-20B)를 사용하여 0.01 mm까지 측정하였다. 육중량(meat weight: MW) 및 생식소중량(gonad weight: GW)은 전자저울(Sartorius; E5500S)을 사용하여 0.
대상 데이터
실험에 사용한 비단가리비는 전남 대흑산도 연안에서 1998년 3월부터 1999년 2월까지 매월 1회 형망으로 채집하였다 (Fig. 1). 채집된 비단가리비는 실내 연구실로 운반하여 매달 30마리씩 각고(shell height: SH), 각장(shell length: SL) 및 각폭(shell width: SW)은 디지털 Vernier caliper(Mitutoyo Corporation; CD-20B)를 사용하여 0.
이론/모형
산란기를 간접적으로 추정하기 위해 월별 변화 양상을 알기 위해 생식소 중량지수(gonadosomatic index: GSI)를 아래 식에 의해 구하였다.
성능/효과
후기 난황형성 난모세포의 난황막내에는 미세융모가 나타났으며, 난황막 주변의 세포질 내에는 여러 개의 공포와 피질과립들이 출현하였다. 그리고 타원형의 핵 주변 세포질 내에는 여러 개의 발달된 미토콘드리아들과 변형된 미토콘드리아 및 조면소포체가 뚜렷하게 나타났다. 이 시기에 난황막 외측의 생식상피 내에는 글리코겐 입자들이 나타났으며, 일부 글리코겐 입자들은 난황막의 미세융모를 통하여 난모세포의 난질 내로 들어오는 것이 발견되었다(Figs.
비단가리비 생식소의 월별 발달 단계를 조직학적으로 조사한 결과, 생식소 발달단계에 따른 생식주기는 초기활성기, 후기활성기, 완숙기, 부분산란기, 그리고 퇴화 및 비활성기의 연속적인 5단계로 구분되었으며, 이들 발달단계는 주기성을 나타내었다. 각 개체별 조직 절편의 발달단계 판정 기준은 아래와 같으며, 월별 생식소 발달단계와 관련된 환경 수온은 Fig.
패류의 산란기를 추정하는 방법으로는 비만도 조사, GSI 조사, 생식소의 조직학적 관찰, 조사를 하는 방법 등이 이용되어 왔다. 비단가리비의 산란기를 알기 위하여 GSI를 조사한 결과, GSI는 5월에 최대값(10.73)에 이른 후, 6월부터 8월까지 감소되었으며, 9월에 최소값을 보였다. 일반적으로 GSI 값은 가장 높을 때 생식소가 성숙한 시기이며, 감소가 일어나는 것은 산란으로 일어나는 것으로 보고되어 있다(Chung et al.
(2005)이 큰가리비(Patinopecten yessoensis)에서 보고한 특징과 유사하게, 작은 타원형이며, 핵 속에는 한 개의 큰 인을 가진다. 세포질이 성장하므로서 세포질 내에는 골지체, 수많은 미토콘드리아들, 그리고 조면 소포체들이 핵 주변 구역에서 많이 나타났다. 이 시기에 전난 황형성난모세포의 핵과 세포질은 체적이 증대되며, 각각의 전난황형성난모세포에는 소수의 보조세포(auxiliary cell)들이 부착되어 나타났다.
, 2006). 이 연구 결과를 종합해 볼 때 대흑산도산 비단가리비의 산란기는 6～8월로 추정된다. 이 결과는 거제산 비단가리비의 산란기는 6～9월이고(임 등, 1995), 백령도산 비단가리비의 산란기는 6～8월이라고 보고(노 등, 1997)되어 한국의 서ㆍ남해안 비단가리비의 산란기는 거의 비슷한 것으로 나타났다.
종합하여 분석해 볼 때 대흑산도산 비단가리비의 산란기는 5～8월로 추정되어진다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
비단 가리비의 초기 난황형성 난모세포 지방적 형성에 관여하는 세포소기관은 무엇인가?
1998년 3월부터 1999년 2월까지 전라남도 대흑산도 연안에서 채집한 비단가리비를 대상으로 생식소중량지수, 생식세포 분화 및 난소주기를 조직, 세포학적 관찰에 의해 조사하였다. 초기 난황형성 난모세포에서, 골지체, 미토콘드리아 및 조면소포체들은 지방적 형성에 관여하였다. 후기난황형성난모세포에서 생식상피상에 존재하는 외인성 물질들 즉, 글리코겐 입자들 및 지방 과립상 물질들이 난황막의 미세융모를 통해서 난모세포의 난질로 통과해 들어갔다.
비단가리비의 분류군은 무엇인가?
비단가리비, Chlamys farreri는 연체동물문(Molluscs), 이매패강(Pelecypoda), 진다치목(Eutaxidonta), 가리비과(Pectinidae)에 속하는 이매패류로서, 이들 대부분은 한해성으로 남․북위 다같이 34°30'보다 고위도 지방에 분포한다(노 등, 1997). 비단가리비는 한국, 중국, 일본, 러시아 등을 포함한 동아시아에서 상업적으로 아주 중요한 이매패류 중 하나이다.
비단가리비의 생식 주기는 어떻게 구분될 수 있는가?
생식소 중량지수의 월별 변화는 난소 발달단계들과 밀접한 관련을 가지며 변하였다. 본 종의 생식주기는 초기활성기(1~3월), 후기활성기(3~4월), 완숙기(4~8월), 부분산란기(6~8월), 퇴화 및 비활성기(8~12월)의 5단계로 구분되었다. 산란은 6~8월 사이에 일어나며, 주산란기는 수온이 높은 7~8월이었다.
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