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새로운 미백물질을 함유하는 SLN의 제조와 봉입효율에 관한 연구
Study on Encapsulation Efficiency and Preparation of SLN Using Conjugated New Whitening Agent(LA-PEG) and Its Cosmetic Application 원문보기

大韓化粧品學會誌 = Journal of the society of cosmetic scientists of Korea, v.34 no.1, 2008년, pp.15 - 23  

강기춘 ((주)한불화장품 기술연구소) ,  표형배 ((주)한불화장품 기술연구소) ,  이청희 ((주)한불화장품 기술연구소) ,  김태훈 ((주)한불화장품 기술연구소) ,  마상철 ((주)한불화장품 기술연구소) ,  임원철 ((주)한불화장품 기술연구소) ,  정노희 (충북대학교 공업화학과)

초록
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본 연구는 유용성 물질 포집에 효과적인 solid lipid nanoparticle(SLN)을 이용하여 수용성물질인 LA-PEG을 새로운 제조방법에 응용하여 실험하였다. 지질로 사용된 오일은 coconut oil, macadamia oil, 그리고 jojoba oil 3가지로 이들의 특징은 생분해성이 강하다. 외부유화제로는 Tween 20, Tween 60을 이용하여 T-SLN을 제조하였으며, SLN의 입자 분포를 비교 분석한 결과 coconut oil을 지질로 하여 사용한 것이 크기가 가장 작았으며 사용한 계면활성제의 양에 따라 입자크기와 분포형태가 달라졌다. 1%의 Tween 60과 macadamia oil을 이용한 베이스가 입자크기가 가장 컸다. 방출관찰결과 coconut oil을 지질로 한 2%의 Tween 20의 베이스가 가장 늦게 방출되었고, 가장 빠른 방출한 것은 Tween 60 2% 베이스였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study is on encapsulation of a new whitening agent, LA-PEG using solid lipid nanoparticle(SLN) method, one of nanoparticle preparation method. Classical method has high capsulation efficiency for hydrophobic compounds but has demerit of low capsulation efficiency($2{\sim}3%$) for hyd...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구에서는 3가지의 생분해성이 좋은 오일을 이용하여 상온에서 sonication하여 친수성 물질인 LA- PEG를 함유하여 제조하였다. 즉, 친수성 물질(LA- PEG)을 유상의 내부에 함유시키기 위해 1차로 W/O 형태의 에멀젼을 형성시키고 이 1차 유제를 계면활성제(Tween 20, Tween 60)가 용해된 수상에 분산시켜 sonication 시킴으로써 SLN을 제조하여 보다 많은 양의 친수성 물질을 어떤 조건에서 이루어질 수 있는지를 실험하여 차후 수용성 물질의 SLN 방법에 초석이 되고자 실험을 실시하였다. 제조된 SLN의 물리 화학적인 특성을 파악하기 위해 형태, 크기분포, 시간 및 온도에 따른 입자 안정성, 캡슐화 효율(봉입율)을 측정 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
SLN은 무엇으로 각광받고 있는가? 피부에 효능물질을 전달할 때 전달효율을 높이기 위해에멀젼[1], 리포좀[2], 미셀[3], 사이크로텍스트린 포집체[4], 고분자성 입자[5] 및 고형지질나노입자(solid lipid nanoparticle, SLN)[6] 등의 전달체에 효능물질을 봉 입시켜 피부에 도포하는 연구들이 많이 보고되어 있다. 이들 중 1991년 Lucks[7] 등에 의해서 도입된 SLN은 기존의 콜로이드성 효능물질 운반체들이 지닌 단점들을 배제하고 장점들만을 취합한 새로운 효능물질 전달체로서 각광 받고 있다[8]. 고형지방 나노입자의 제조 방법은 크게 용매증발법(solvent evaporation method)과 용융분산법(melt dispersion technique)으로 나누어지며 용매 증발법은 용융분산법에 의해 제조된 SLN보다 작은 크기 분포를 가지지만 빈약한 기계적 특성을 가지는 것으로 알려져 있다[9].
고형지질나노입자(SLN)가 유기용매에 의한 잔류 독성에 대한 염려가 없는 이유는 무엇인가? 또한 Rila Cortesi 등은 SLN은 친지질성 물질에 대해서는 높은 캡슐과 효율을(70 % 이상) 가지는 반면 친수성 물질에 대해서는 낮은(2 ~ 3 %) 효율을 가지는 단점이 있다고 보고하였으며 W/O/W double emulsion 기법을 이용하여 캡슐화 효율을 높일 수 있다고 하였다[10]. 이런 SLN은 생체적합성 고형지질을 전달체의 플렛폼으로 사용하므로 생체에 대한 독성이 낮고 제조 과정 중에 유기 용매를 사용하지 않으므로 유기용매에 의한 잔류 독성에 대한 염려도 없다. 본 연구에서는 SLN을 제조하기 위하여 핵심물질로서 상온에서는 액상이며, 저온에서는 고체인 3가지의 생분해성이 우수한 coconut oil, jojoba oil, macadamia oil을 선정하였다.
고형지방 나노입자의 제조 방법은 크게 어떻게 나누어지는가? 이들 중 1991년 Lucks[7] 등에 의해서 도입된 SLN은 기존의 콜로이드성 효능물질 운반체들이 지닌 단점들을 배제하고 장점들만을 취합한 새로운 효능물질 전달체로서 각광 받고 있다[8]. 고형지방 나노입자의 제조 방법은 크게 용매증발법(solvent evaporation method)과 용융분산법(melt dispersion technique)으로 나누어지며 용매 증발법은 용융분산법에 의해 제조된 SLN보다 작은 크기 분포를 가지지만 빈약한 기계적 특성을 가지는 것으로 알려져 있다[9]. 또한 Rila Cortesi 등은 SLN은 친지질성 물질에 대해서는 높은 캡슐과 효율을(70 % 이상) 가지는 반면 친수성 물질에 대해서는 낮은(2 ~ 3 %) 효율을 가지는 단점이 있다고 보고하였으며 W/O/W double emulsion 기법을 이용하여 캡슐화 효율을 높일 수 있다고 하였다[10].
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참고문헌 (12)

  1. B. Tart, T. Sambandan, and S. Yalkowsky, A new parenteral emulsion for the administration of taxol, Pharm. Res., 4, 162 (1987) 

  2. P. Crosasso, M. ceruti, P. Bnisa, S. Arpicco, F. Dosio, and I. Cattck, Characterization and properties of sterically stabilized paclitaxel-contaning liposomes, J. Controlled Rel., 63(19), 30 (2000) 

  3. H. Alian-Onyuksel, S. Ramakrishnan, H. Chai, and J. Pezzuto, A mixed micellar formulation suitable for the parenteral administration of taxol, Pharm. Res., 11, 206 (1994) 

  4. U. Shama, S. Balasubramanian, and R. Straubinger, Pharmaceutical and physical properties of paclitaxel (taxol) complexes with cyclodextrins, J. Pharm. Sci., 84, 1223 (1995) 

  5. L. Mu and S. F. Fabrication, characterization and in vitro release of paclitaxel (taxol) loaded poly (lactic-co-glycolicacid) microspheres prepared by spay drying technique with lipid/cholesterol emulsifiers, J. Controlled Rel., 76, 239 (2001) 

  6. R .Cavalli, O. Caputo, and M. Gasco, Preparation and characterization of solid lipid nanospheres containing paclitaxel, Eur. J Pharn Sci., 10, 305 (2000) 

  7. J. S. Lucks, R. H. Muller, and B. Koning, Solid lipid nano-particle (SLN)-an alternative parenteral drug carrier system, Eur. J. Pharm. Biopharm., 38, 33S (1992) 

  8. C. Schwarz, W. Mehnert, J. S. Lucks, and R. H. Muller, Solid lipid nanoparticles (SLN) for controlled drug delivery I: Production. characterization and sterilization, J. Controlled Rel., 30, 83 (1994) 

  9. B. D. Kim, Preparation and characterization of solid lipid nanoparticle (SLN) made from coconut butter stabilized curdlan, M. S. Thesis, Chosun University, Kwangju (2002) 

  10. C. Rita, E. Elisabetta, L. Giovanni, and N. Claudio, Production of lipospheres as carriers for bioactive compounds, Biomaterials, 23, 2283 (2001) 

  11. R. Muller, H. M. Radtke, and S. S. Wissing, Solid lipid nanoparticles (SLN) and nanostructured lipid carriers (NLC) in cosmetic and dermatological preparations, Adv. Drug Delivery Rev., 54, S131 (2002) 

  12. W. Heike, K. H. Kowtka, C. M. Lehr, and U. F. Schaefer, pH profiles in human skin: influence of two in vitro test systems for drug delivery testing, Eur. J. Pharm. Biopharm., 55, 57 (2001) 

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