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우슬이 산화적 스트레스와 관련한 세포내 신호전달계에 미치는 영향
Effect of Achyrantis Radixs on Rat Chondrocyte Oxidative Stress and Its Signal Transduction 원문보기

동의생리병리학회지 = Journal of physiology & pathology in Korean Medicine, v.22 no.4, 2008년, pp.841 - 848  

김은정 (동신대학교 물리치료학과) ,  정현우 (동신대학교 한의학과) ,  김계엽 (동신대학교 물리치료학과)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Archyranthes radix has had extensive therapeutic application, and there has been increasing interest in its biological effects. However, the biochemical effects of Archyranthes radix on chondrocyte oxidative stress have never been systematically investigated. Therefore, we investigated the effects o...

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문제 정의

  • 결국 우슬 처리로인한 세포 증식에 ERK1/2 경로가 관여하는 것으로 생각되어진다. 과산화수소수로 유도한 관절 연골세포의 산화적 스트레스에서 p-ERKl/2 신호 전달 경로를 보고자 하였는데, 과산화수소수는 p-ERKl/2를 시간 및 농도의존적으로 자극하였다. 산화적 스트레스로 인 한 ERK1/2의 활성화는 아직도 많은 논란의 여지가되고 있으나 일부 세포 시스템에서 ERK1/2 활성화는 산화적 스트레스에 대항하는 세포 작용과 세포고사와 관련되는 것으로 보고되었다34).
  • 없다. 따라서 뽄 연구에서 세포배 양된 연골세포에서의 우슬의 증식에미치는 영향과 이와 관련한 신호전달 까 전에 대해 알아보고자하였다. 본 연구결과에서는 우슬을 배양된 연골세포에 농도별로처리 시에 5~25 uM까지 농도의존적으로 세포 증식을 증가시켰고, 농도가 50, 100, 200 uM로 높아질수록 세포 증식이 오히려억제됨을 확인하였다.
  • 또한 세포배양된 연골세포에서 과산화수소수 50 pM을 처리한 후p-ERKl/2가 활성화되는지 알아보았다. 과산화수소수 50 liM 처리 10분 후 p-ERKl/2가 발현되기 시작하였고, 시간 경과에 따라p-ERKl/2의 인산화: 가 점차 증가되어, 60분에 최대로발현된 후 120분까지 감소하였다 (Fig.
  • 본 연구에서는 단층 배양한 관절 연골세포에서 우슬과 산화적 스트레스와 연관된 세포씬호 전달 기전을 알아보고자 하였다. 특히 우슬이 세포 수준에서 미치는 증식과 산화적 스트레스의 연구가 매우 미진한 실정이기에, 세포배양된 연골세포에서의 우슬의 증식에 미치는 영향과 이와 관련한 신호전달 기전에 대해 정확한 근거를 제시하는 데 목적이 있다.
  • 본 연구에서는 단층 배양한 관절 연골세포에서 우슬의 증식과 산화적 스트레스와 관련한 한증식과 세포신호전달 기전에대해 알아보고자 하였다.
  • 본 연구에서는 천연물인 우슬의 연골세포에 미치는 증식과산화적 스트레스에 관한 기전을 연구하였다. 우슬은 연골세포 내특정 신호전달체계인 ERK1/2를 꺼쳐 세포 증식 변화에 영향을미치고 있음을 관찰하였다.
  • 하였다. 특히 우슬이 세포 수준에서 미치는 증식과 산화적 스트레스의 연구가 매우 미진한 실정이기에, 세포배양된 연골세포에서의 우슬의 증식에 미치는 영향과 이와 관련한 신호전달 기전에 대해 정확한 근거를 제시하는 데 목적이 있다.
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참고문헌 (46)

  1. Archer, C.W., Morrison, H., Pitsillides, A.A. Cellular aspects of the development of diarthodial joints and articular cartilage. J Anat. 184: 447-456, 1994 

  2. Mitrovic, D., Quintero, M., Stankovic, A., Ryckewaert, A. Cell density of adult human femoral condylar articular cartilage. Joints with normal and fibrillated surfaces. Lab Invest 49(3):309-316, 1983 

  3. Gardner, D.L. Problems and paradigms in joint pathology. J Anat. 184: 1749-1755, 1994 

  4. McCored, J.M. The evolution of free radicals and oxidative stress. Am J Med. 108: 652-659, 2000 

  5. Lee, W.C., Choi, C.H., Cha, S.H., Oh, H.L., Kim, Y.K. Role of ERK in hydrogen peroxide-induced cell death of human glioma cells. Neurochem Res. 30(2):263-270, 2005 

  6. Galaris, D., Evangelou, A. The role of oxidative stress in mechanisms of metal-induced carcinogenesis. Crit Rev Oncol Hematol. 42: 93-103, 2002 

  7. Balaban, R.S., Nemoto, S., Finkel, T. Mitochondria, oxidants, and aging. Cell. 120(4):483-495, 2005 

  8. Galaris, D., Barbouti, A., Korantzopoulos, P. Oxidative stress in hepatic ischemia-reperfusion injury: the role of antioxidants and iron chelating compounds. Curr Pharm Des. 12: 2875-2890, 2006 

  9. Halliwell, B. Oxidative stress and neurodegeneration: where are we now? J Neurochem. 97: 1634-1658, 2006 

  10. Rhee, S.G. Cell signaling: H2O2, a necessary evil for cell signaling. Science. 312(5782):1882-1883, 2006 

  11. Stone, J.R. Yang, S. Hydrogen peroxide: a signaling messenger. Antioxid Redox Signaling 8: 243-270, 2006 

  12. Jin, N., Hatton, N.D., Harrington, M.A., Xia, X., Larsen, S.H., Rhoades, R.A. $H_2O_2$ -induced egr-1, fra-1, and c-jun gene expression is mediated by tyrosine kinase in aortic smooth muscle cells. Free Radic Biol Med. 29: 736-746, 2000 

  13. Go, Y.M., Gipp, J.J., Mulcahy, R.T., Jones, D.P. $H_2O_2$ -dependent activation of GCLC-ARE4 reporter occurs by mitogen-activated protein kinase pathways without oxidation of cellular glutathione or thioredoxin-1. J Biol Chem. 279: 5837-5845, 2004 

  14. Vilhardt, F., van Deurs, B. The phagocyte NADPH oxidase depends on cholesterol-enriched membrane microdomains for assembly. EMBO J. 23: 739-748, 2004 

  15. Rhee, S.G., Kang, S.W., Jeong, W., Chang, T.S., Yang, K.S., Woo, H.A. Intracellular messenger function of hydrogen peroxide and its regulation by peroxiredoxins. Curr Opin Cell Biol. 17(2):183-189, 2005 

  16. Tenopoulou, M., Doulias, P.T., Barbouti, A., Brunk, U.T., Galaris, D. Role of compartmentalized redox-active iron in hydrogen peroxide-induced DNA damage and apoptosis. Biochem J. 387:703-710, 2005 

  17. Geilen, C.C., Wieprecht, M., Orfanos, C.E. The mitogen-activated protein kinases system (MAP kinase cascade): its role in skin signal transduction. J Dermatol Sci. 12(3):255-262, 1996 

  18. Chang, L., Karin, M. Mammalian MAP kinase signalling cascades. Nature 410(6824):37-40, 2001 

  19. Cano, E., Mahadevan, L.C. Parallel signal processing among mammalian MAPKs. Trends Biochem Sci. 20(3):117-122, 1995 

  20. Boulton, T.G., Nye, S.H., Robbins, D.J., Ip, N.Y., Radziejewska, E., Morgenbesser, S.D., DePinho, R.A., Panayotatos, N., Cobb, M.H., Yancopoulos, G.D. ERKs: a family of protein-serine/threonine kinases that are activated and tyrosine phosphorylated in response to insulin and NGF. Cell 65(4):663-675, 1991 

  21. Khanna, A.K., Chandra, A., Singh, C., Srivastava, A.K., Kapoor, N. Hypolipidemic activity of Achyranthes aspera Linn in normal and triton induced hyperlipidamic rats. J Exp Biol. 30(2):128-130, 1992 

  22. Desta, B. Ethiopian traditional herbal drugs. Part II: Antimicrobial activity of 63 medicinal plants. J Ethnopharmacol. 39(2):129-139, 1993 

  23. Tian, G.Y., Li, S.T., Song, M.L., Zheng, M.S., Li, W. Synthesis of Achyranthes bidentata polysaccharide sulfate and its antivirus activity. Yao Xue Xue Bao. 30: 107-111, 1995 

  24. Lu, T., Mao, C., Zhang, L., Xu, W. The research on analgestic and anti-inflammatory action of different processed products of Achyranthes bidentata. Zhong Yao Cae. 20: 507-509, 1997 

  25. Ratra, P.S. Alkaloid in two species of Achyranthes at different stages of their growth. Trends Sci Life 4: 81-85, 1979 

  26. Seshatri, V., Batta, A.K., Rangaswami, S. Structure of two new saponins from Achyranthes aspera. Indian J Chem Ser. 20: 773-775, 1981 

  27. Raman, M.H., Faroque, A.S.M. Studies on the antibacterial properties of Achyranthes aspera stem. Fitoterapia LXII, pp 92-93, 1996 

  28. Takemoto, T., Ogawa, S., Nishimoto, N., Hirayama, H., Taniguchi S. Studies on the constituents of Achyranthes radix. Ⅶ. The insect-moulting substances in Achyranthes and Cyathula genera "supplement". Yakugaku Zasshi 88(10):1293-1297, 1968 

  29. Roehm, N.W., Rodgers, G.H., Hatfield S.M., Glasebrook, A.L. An improved colorimetric assay for cell proliferation and viability utilizing the tetrazolium salt XTT. J Immunol Methods. 142(2):257-265, 1991 

  30. Bradford, M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 72: 48-254, 1976 

  31. Gao, X.Y., Wang, D.W., Li, F.M. Determination of ecdysterone in Achyranthes bidentata Bl. and its activity promoting proliferation of osteoblast-like cells. Yao Xue Xue Bao. 35(11):868-870, 2000 

  32. Halliwell, B. Oxidative stress and neurodegeneration: where are we now? J Neurochem. 97: 1634-1658, 2006 

  33. DiPietrantonio, A.M., Hsieh, T., Wu, J.M. Activation of caspase 3 in HL-60 cells exposed to hydrogen peroxide. Biochem Biophys Res Commun. 255(2):477-482, 1999 

  34. Lee, W.C., Choi, C.H., Cha, S.H., Oh, H.L., Kim, Y.K. Role of ERK in hydrogen peroxide-induced cell death of human glioma cells. Neurochem Res. 30(2):263-270, 2005 

  35. Xia, Z., Dickens, M., Raingeaud, J., Davis, R.J., Greenberg, M.E. Opposing effects of ERK and JNK-p38 MAP kinases on apoptosis. Science. 270(5240):1326-1331, 1995 

  36. Wang, X., Martindale, J.L., Liu, Y., Holbrook, N.J. The cellular response to oxidative stress: influences of mitogen-activated protein kinase signalling pathways on cell survival. Biochem J. 15(333):291-300, 1998 

  37. Stadheim, T.A., Kucera, G.L. Extracellular signal-regulated kinase (ERK) activity is required for TPA-mediated inhibition of drug-induced apoptosis. Biochem Biophys Res Commun. 245(1):266-271, 1998 

  38. Asada, S., Fukuda, K., Nishisaka, F., Matsukawa, M., Hamanisi C. Hydrogen peroxide induces apoptosis of chondrocytes; involvement of calcium ion and extracellular signal-regulated protein kinase. Inflamm Res. 50(1):19-23, 2001 

  39. Ishikawa, Y., Kitamura, M. Anti-apoptotic effect of quercetin: intervention in the JNK- and ERK-mediated apoptotic pathways. Kidney Int. 58(3):1078-1087, 2000 

  40. Kang, H.J., Soh, Y., Kim, M.S., Lee, E.J., Surh, Y.J., Kim, H.R., Kim, S.H., Moon A. Roles of JNK-1 and p38 in selective induction of apoptosis by capsaicin in ras-transformed human breast epithelial cells. Int J Cancer. 103(4):475-482, 2003 

  41. Jung, M.Y., Kwon, S.K., Moon, A. Chemopreventive allylthiopyridazine derivatives induce apoptosis in SK-Hep-1 hepatocarcinoma cells through a caspase-3-dependent mechanism. Eur J Cancer. 37(16):2104-2110, 2001 

  42. Wattenberg, L.W. Inhibition of carcinogenesis by minor anutrient constituents of the diet. Proc Nutr Soc. 49(2):173-183, 1990 

  43. Kim, M.S., Kang, H.J., Moon, A. Inhibition of invasion and induction of apoptosis by curcumin in H-ras-transformed MCF10A human breast epithelial cells. Arch Pharm Res. 24(4):349-354, 2001 

  44. Kim, H.A., Lee, Y.J., Seong, S.C., Choe, K.W., Song, Y.W. Apoptotic chondrocyte death in human osteoarthritis. J Rheumatol. 27: 455-462, 2000 

  45. Takahashi, T., Ogawa, Y., Kitaoka, K., Tani, T., Uemura, Y., Taguchi, H., Kobayashi, T., Seguchi, H., Yamamoto, H., Yoshida, S. Selective COX-2 inhibitor regulates the MAP kinase signaling pathway in human osteoarthritic chondrocytes after induction of nitric oxide. Int J Mol Med. 15(2):213-219, 2005 

  46. Wang, H., Wang, Z., Chen, J., Wu, J. Apoptosis induced by NO via phosphorylation of p38 MAPK that stimulates NF-kappaB, p53 and caspase-3 activation in rabbit articular chondrocytes. Cell Biol Int. 31(9):1027-1035, 2007 

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