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Peroxidase/H2O2 조건에서 리그닌 전구물질에 따른 탈수소 중합반응 특성 연구
Study on Dehydrogenative Polymerization of Monolignols by Peroxidase/H2O2 원문보기

목재공학 = Journal of the Korean wood science and technology, v.38 no.3 = no.162, 2010년, pp.223 - 229  

문선주 (서울대학교 농업생명과학대학 산림과학부) ,  김광호 (서울대학교 농업생명과학대학 산림과학부) ,  엄인용 (서울대학교 농업생명과학대학 산림과학부) ,  이수민 (국립산림과학원 화학미생물과) ,  김용환 (광운대학교 화학공학과) ,  최준원 (서울대학교 농업생명과학대학 산림과학부)

초록
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본 연구에서는 천연리그닌의 전구물질인 3종의 모노리그놀[p-coumaryl alcohol (PCA), coniferyl alcohol(CA), sinapyl alcohol (SA)]을 이용하여 horseradish peroxidase (HRP, EC. 1.11.1.7)/$H_2O_2$ 조건하에서 dehydrogenative polymers (DHPs)를 제조하였다. 합성한 DHPs와 천연리그닌의 구조적 특성을 비교하기 위해 소나무와 포플라 milled wood lignin (MWL)과 함께 Gel permeation chromatography (GPC)에 의한 분자량 측정과 Derivatization followed by reductive cleavage (DFRC) 분석에 의한 ${\beta}$-O-4 결합 빈도를 측정하였다. DHP 합성 수율은 CA만을 단독으로 주입한 G-DHP가 71%로 가장 높았고 PCA에 의한 H-DHP 수율은 42%로 나타났다. 그러나 horseradish peroxidase/$H_2O_2$ 조건하에서 SA 단독으로는 S-DHP는 전혀 합성되지 않았다. 합성한 DHPs의 분자량(Mw)은 3,000~4,700 범위로 측정되었는데, 이는 침엽수 리그닌인 소나무 MWL (G-type lignin: Mw 7340)의 절반 정도였고 활엽수인 포플라 MWL (GS-type lignin: Mw 13,250)의 1/3 수준으로 측정되었다. DHP 합성 과정에서 형성된 ${\beta}$-O-4 결합 빈도는 GS-DHP가 502 ${\mu}mol$/g으로 가장 높았지만 포플라 MWL (1107 ${\mu}mol$/g)의 1/2 수준에 머물렀고, G-DHP의 경우도 약 286 ${\mu}mol$/g으로 H-DHP (127 ${\mu}mol$/g)보다 약 2.5배 이상 많은 ${\beta}$-O-4 결합을 형성하였지만 소나무 MWL (651 ${\mu}mol$/g)과 비교하여 절반 정도로 측정되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study diverse dehydrogenative polymers (DHPs) were synthesized with three precursors of native lignin [p-coumaryl alcohol (PCA), coniferyl alcohol (CA), sinapyl alcohol (SA)] in the presence of horseradish peroxidase (HRP, EC. 1.11.1.7)/$H_2O_2$. To compare the structural features...

주제어

AI 본문요약
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제안 방법

  • DFRC 분해산물은 pyridine과 acetic anhydride (1:1, v/v)로 아세틸화한 후에 DB-5 capillary column (60 m × 0.25 mm, 0.25 um)을 장착한 Gas chromatography (HP 6890 series)를 이용하여 분석하였다.
  • DHP의 분자량 분포는 겔크로마토그래피(GPC) 분석을 이용하여 측정하였다. 분자량 측정을 위해 DHP를 pyridine과 acetic anhydride (1:1, v/v)로 아세틸화하였으며, 이를 tetrahydrofuran (THF) 용액에 녹여서 분석하였다.
  • DHP의 분자량을 측정하기 전에 분자량이 다른 10개의 polystyrene 표준물질(Mw; 500∼1,000,000)을 이용하여 검량선을 작성하였다.
  • 를 이용하여 총 5종의 합성 리그닌(DHP)를 제조하였다(Table 1). p-coumaryl alcohol (PCA)와 coniferyl alcohol (CA)로 이루어진 HG-DHP와 coniferyl alcohol (CA)과 sinapyl alcohol (SA)로 구성된 GS-DHP는 각각의 모노리그놀 배합비율을 50:50으로 하여 제조하였다. DHPs의 생성 수율은 각 모노리그놀에 따라 차이가 나타났다.
  • DHP의 분자량 분포는 겔크로마토그래피(GPC) 분석을 이용하여 측정하였다. 분자량 측정을 위해 DHP를 pyridine과 acetic anhydride (1:1, v/v)로 아세틸화하였으며, 이를 tetrahydrofuran (THF) 용액에 녹여서 분석하였다. 본 실험에서 사용한 분석 장비는 Viscotek사의 GPCmax이었고 검출장치는 UV와 RI를 사용하였다.
  • Table 2에는 위에서 합성한 DHPs의 평균 분자량과 다분산도 측정값을 소나무와 포플라에서 추출한 MWL의 측정값과 함께 제시하였다. 실험실에서 추출한 MWL의 수율은 세포벽에 존재하는 총 리그닌의 10% 정도에 머무르기 때문에 MWL이 과연 전체 리그닌을 대표할 수 있느냐에 의문도 제기되기도 했지만(Fujimoto et al., 2005), 현재까지 MWL의 화학적 구조가 천연리그닌과 유사하다는 학설에 근거하여 본 실험에서 제조한 DHP 제조 특성 및 화학구조를 MWL과 비교하였다.
  • 합성 리그닌 제조 과정과 천연리그닌 생합성 과정에서 형성되는 β-O-4 결합 빈도를 관찰하기 위해 리그닌 유형별로 DFRC 분해산물 수율을 비교하였다.
  • 조건하에서 3종의 모노리그놀을 이용하여 합성리그닌을 제조하였다. 합성된 리그닌(DHPs)과 수목에서 생합성된 천연리그닌의 화학 구조적 차이를 비교하기 위해 소나무와 포플라 세포벽에서 MWL를 추출하여 각각의 분자량과 DFRC 분석을 실시하였다.
  • DFRC 분석은 Lu와 Ralph (1997)법에 의거하여 실시하였다. 합성한 DHP는 acetyl bromide 용액에 침지하여 상온에서 12시간 동안 교반시켜 브롬화 반응과 수산기의 아세틸화 반응을 실시하였다. 반응 혼합물에서 AcBr용액을 완전히 제거한 후에 남은잔사는 다시 dioxane/acetic acid/water (5:4:1, v/v/v) 용액에 녹이고 아연분말을 첨가하여 30분 동안 교반하여 DFRC 분해산물을 획득하였다.
  • 현재까지 명확하게 규명되지 않은 리그닌의 고분자 합성과정을 살펴보기 위해서 리그닌 전구물질인 3종의 모노리그놀[p-coumaryl alcohol (PCA), coniferyl alcohol (CA), sinapyl alcohol (SA)]을 이용하여 horseradish peroxidase/H2O2 조건하에서 DHP를 합성하였고, 제조된 DHP와 천연리그닌의 구조적 차이를 구명하기 위해서 소나무와 포플라의 MWL과 평균 분자량 크기 및 β-O-4 결합 형성 빈도를 비교하였다.

대상 데이터

  • 3종의 리그닌 전구물질(p-coumaryl alcohol, coniferyl alcohol, sinapyl alcohol)은 Sigma 사에서 구입한 C6C3형 페놀산(hydroxycinnamic acid)인 p-coumaric acid, ferulic acid, sinapic acid를 이용하여 각각 합성하였다(Fig. 2; Quideau and Ralph 1992). 이 반응은 페놀산(50 mmol)을 에탄올(250㎖)에 녹인 후에 acetyl chloride (25 ㎖)를 서서히 첨가하여 페놀산의 9번 위치에 존재하는 카르복실기가 에세틸화된 ethylated cinnamic acid를 제조한 후에 이를 diisobutylaluminum hydride/toluene 조건하에서 12 시간 동안 반응시켜 3종의 전구물질을 합성하였다.
  • 3종의 리그닌 전구물질은 horseradish peroxidase(HRP, EC 1.11.1.7; Sigma-Aldrich P8250)와 H2O2조건에서 합성리그닌(DHP)을 제조하기 위해 아래와 같이 제조용액을 준비하였다. Solution 1: phosphate buffer (0.
  • 분자량 측정을 위해 DHP를 pyridine과 acetic anhydride (1:1, v/v)로 아세틸화하였으며, 이를 tetrahydrofuran (THF) 용액에 녹여서 분석하였다. 본 실험에서 사용한 분석 장비는 Viscotek사의 GPCmax이었고 검출장치는 UV와 RI를 사용하였다. DHP의 분자량을 측정하기 전에 분자량이 다른 10개의 polystyrene 표준물질(Mw; 500∼1,000,000)을 이용하여 검량선을 작성하였다.
  • 본 실험에서는 모노리그놀에 따른 리그닌의 고분자화 특성과 리그닌의 주요 결합양식인 β-O-4 결합 형성의 차이를 이해하기 위해 horseradish peroxidase/H2O2 조건하에서 3종의 모노리그놀을 이용하여 합성리그닌을 제조하였다.
  • 본 연구에서는 3종의 리그닌 전구물질을 horseradish peroxidase (HRP)와 H2O2를 이용하여 총 5종의 합성 리그닌(DHP)를 제조하였다(Table 1). p-coumaryl alcohol (PCA)와 coniferyl alcohol (CA)로 이루어진 HG-DHP와 coniferyl alcohol (CA)과 sinapyl alcohol (SA)로 구성된 GS-DHP는 각각의 모노리그놀 배합비율을 50:50으로 하여 제조하였다.

이론/모형

  • DFRC 분석은 Lu와 Ralph (1997)법에 의거하여 실시하였다. 합성한 DHP는 acetyl bromide 용액에 침지하여 상온에서 12시간 동안 교반시켜 브롬화 반응과 수산기의 아세틸화 반응을 실시하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
목질화 반응은 무엇인가? , 2003). 모든 고등식물의 세포벽에는 철이온(Fe)을 함유한 peroxidase (EC. 1.11.1.7)와 H2O2가 존재하는데, 이들은 세포벽으로 이동한 모노리그놀들을 ‘one electron oxidation’ 반응에 의해 페놀라디칼로 전환시키고 라디칼들은 서로 중합반응에 의해 리그닌이라는 고분자체를 형성하게 된다. 이러한 목질화 반응(lignification)은 세포벽의 2차막이 형성되는 과정에서 이루어지며, 이러한 과정동안 리그닌은 다른 세포벽 구성물질인 셀룰로오스/헤미셀룰로오스와 다양한 화학적 결합을 이루게 된다(Higuchi 1985, Watanabe 1995).
Dehydrogenative polymer은 무엇인가? Dehydrogenative polymer (DHP)는 실제 식물 세포벽과 유사한 조건하에서 모노리그놀을 peroxidase와 H2O2를 이용하여 in vitro에서 합성한 리그닌 고분자이다(Faix, 1986; Faix and Beinhoff, 1988). Horseradish peroxidase (HRP)는 지금까지 수목에서 리그닌 생합성 과정을 이해하기 위한 DHP 합성 연구에 널리 활용되어온 식물성 peroxidase이다(Syrjaenen and Brunow, 2000).
리그닌은 무엇인가? 리그닌은 자연계에서 셀룰로오스 다음으로 풍부하게 존재하는 2차 대사산물로 지구상의 모든 고등 식물의 세포벽을 구성하는 주요 페놀성 천연물질이다. 식물체에게 물리적인 강성과 외부의 병원균에 대한 저항성을 부여하는 임무를 담당하는 리그닌은 Fig.
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참고문헌 (12)

  1. Barakat, A., H. Winter, C. Rondeau-Mouro, B. Saake, B. Charbert, and B. Cathala. 2007. Studies of xylan interaction and cross-linking to synthetic lignins formed by bulk and end-wise polymerization : a model study of lignin carbohydrate complex formation. Planta 226: 267-281. 

  2. Boerjan, Q., J. Ralph, and M. Baucher. 2003. Lignin biosynthesis. Annu. Rev. Plant Biol. 54: 519-546. 

  3. Faix, O. 1986. Investigation of lignin polymer models (DHP) by FTIR spectroscopy. Holzforschung 40: 273-280. 

  4. Faix, O. and O. Beinhoff. 1988. FTIR spectra of milled wood lignins and lignin polymer models (DHP) with enhanced resolution obtained by deconvolution. Journal of wood chemistry and technology 8: 505-522. 

  5. Freudenberg, K. 1956. Beitraege zur Erforschung des Lignins. Angewandte Chemie. 68: 508-512. 

  6. Higuchi, T. 1985. Biosynthesis of lignin. In: Biosynthesis and biodegradation of wood components. Eds: T. Higuchi, Academic press, Inc. pp 141-160. 

  7. Lu, F. and J. Ralph. 1997. Derivatization followed by reductive cleavage (DFRC method), a new method for lignin analysis: Protocol for analysis of DFRC monomers. J. Agric. Food. Chem. 45: 2590-2592. 

  8. Quideau, S. and J. Ralph. 1992. Facile Large-Scale Synthesis of Coniferyl, Sinapyl, and p-Coumaryl Alcohol, J. Agric. Food Chem. 40: 1108-1110. 

  9. Syrjaenen, K. and G. Brunow. 2000. Regioselectivity in lignin biosynthesis. The influence of dimerization and cross-coupling. J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1: 183-187. 

  10. Takahama, U., T. Oniki, and H. Shimokawa. 1996. A possible mechanism for the oxidation of sinapyl alcohol by peroxidase-dependent reactions in theapoplast: Enhancement of the oxidation by hydroxycinnamic acids and components of the apoplast. Plant cell physiology 37: 499-504. 

  11. Watanabe, T. 1995. Important properties of lignin-carbohydrate complexes (LCCs) in environmentally safe paper making. Trends in glycoscience and glycotechnology 7: 57-68. 

  12. Lu, F. and J. Ralph. 1998. The DFRC Method for Lignin Analysis. 2. Monomers from Isolated Lignins. J. Agric. Food. Chem. 46: 547-552. 

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