$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

[국내논문] Protoporphyrinogen Oxidase (Protox) 유전자 과다발현 제초제 저항성 형질전환 벼의 생육저해 기작
Mechanism of Growth Inhibition in Herbicide-Resistant Transgenic Rice Overexpressing Protoporphyrinogen Oxidase (Protox) Gene 원문보기

한국잡초학회지 = Korean journal of weed science, v.30 no.2, 2010년, pp.122 - 134  

국용인 (순천대학교 생명산업과학대학 자원식물개발학과) ,  신지산 (순천대학교 생명산업과학대학 자원식물개발학과) ,  윤영범 (순천대학교 생명산업과학대학 자원식물개발학과) ,  권오도 (전남농업기술원 작물연구과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구의 목적은 다양한 생물종의 Protox 유전자 과다발현 제초제 저항성 형질전환 벼의 저항성 수준과 생육저해 원인이 생육시기별 tetrapyrrole 중간물질 축적과 대사 경로 물질, 활성산소 발생, 지질과산화 작용 및 항산화 효소 능력과 관련성이 있는지를 조사하는데 있다. Myxococcus xanthus(MX, MX1, PX), Arabidopsis thaliana(AP31, AP36, AP37) 및 인간(H45, H48, H49) Protox 과다발현 형질전환벼는 비형질전환벼에 비해 oxyfluorfen에 각각 43~65, 41~72 및 17~70배 저항성을 보였다. 다양한 생물종의 Protox 유전자 과다발현 제초제 저항성 형질전환 벼 중에 일부 라인은 다른 광조건하에서 정상적인 생육을 보인 반면에 일부 라인은 초장 및 생체중 감소가 야기되었다. 그러나 일관성 있게 파종 후 7일과 14일에 초장의 감소가 야기 되었던 형질전환 라인은 AP37뿐이었다. 또한 이들 형질전환 벼 라인들은 저광 및 암조건보다 고광조건하에서 초장 및 생체중 감소가 뚜렷하였다. 파종 후 7일째 Proto IX 축적은 AP31, AP37 및 H48에서 비형질전환벼에 비해 유의적으로 많았고, 파종 후 14일째에는 PX, AP37 및 H48에서 유의적으로 많았다. 파종 후 7일째 Mg-Proto IX은 일부 라인(H41과 H48)을 제외하고 그리고 Mg-Proto IX monomethyl ester는 MX, MX1, PX를 제외한 형질전환 라인 간에 차이가 없었다. 비록 terapyrrole 중간물질이 축적 되었더라도 이들 축적량은 Protox 과다발현 형질전환벼의 생육을 저해 하는데 충분하지 않았을 것으로 생각된다. 또한 활성산소종 ($H_2O_2$${O_2}^{{\cdot}_-}$), MDA, ALA 합성 및 엽록소 함량에서도 형질전환 라인간에 유의적인 차이가 인정되지 않아 tetrapyrrole 축적량이 형질전환 벼의 생육저해에 충분하지 못했음을 확인할 수 있었다. 따라서 일부 형질전환벼에서 초기 생육저해는 어떤 단일 요인에 기인되는 것보다 복합적인 요인에 의해 기인되는 것으로 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

We investigated the levels of resistance and accumulation of terapyrroles, reactive oxygen species, lipid peroxidation, and antioxidative enzymes for reasons of growth reduction in herbicide-transgenic rice overexpressing Myxococcus xanthus, Arabidopsis thaliana, and human protoporphyrinogen oxidase...

Keyword

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 따라서 본 연구의 목적은 다양한 생물종의 Protox 유전자 과다발현 제초제 저항성 형질전환 벼의 생육 저해 원인이 생육시기별 tetrapyrrole 중간물질 축적과 대사 경로 물질, 활성산소 발생, 지질과산화작용 및 항산화 효소 능력 등과의 관련성이 있는지를 조사하는데 있다.
  • 본 연구의 목적은 다양한 생물종의 Protox 유전자 과다발현 제초제 저항성 형질전환 벼의 저항성 수준과 생육저해 원인이 생육시기별 tetrapyrrole 중간물질 축적과 대사 경로 물질, 활성산소 발생, 지질과산화 작용 및 항산화 효소 능력과 관련성이 있는지를 조사하는데 있다. Myxococcus xanthus(MX, MX1, PX), Arabidopsis thaliana(AP31, AP36, AP37) 및 인간(H45, H48, H49) Protox 과다발현 형질전환벼는 비형질전환벼에 비해 oxyfluorfen에 각각 43~65, 41~72 및 17~70배 저항성을 보였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
protoporphyrin Ⅸ는 어디에 축적되는가? Protox 활성 저해는 결과적으로 Protogen Ⅸ을 축적케하고 이 Protogen Ⅸ은 엽록체에서 세포질로 이동하여 빠르게 Proto Ⅸ으로 산화된다(Lee 등 1993). Proto Ⅸ은 친유성을 가지고 있기 때문에 다시 엽록체로 이동할 수 없어 결국 원형질막에 축적된다. Proto Ⅸ이 엽록체와 미토콘드리아에 위치한 Mg 및 Fe-chelatase와 상호작용을 할 수 없기 때문에 엽록소와 heme 합성에 Proto Ⅸ을 이용할 수 없게 된다(Matringe 등 1989).
Porphyrin 생합성 경로가 이루어지는 곳은? Porphyrin 생합성 경로는 식물의 대사과정에서 매우 중요한 엽록소와 heme을 만드는 과정으로 엽록체와 미토콘드리아에서 이루어진다(Duke 등 1991). 식물에서는 글루탐산으로부터 형성된 5-aminolevulinic acid(ALA)은 ALA 탈수효소의 작용에 의해 porphobilinogen(PBG)으로 되고 이 PBG에 의해 만들어진 tetrapyrrole이 단계적인 산화적 탈카르복실화 과정을 거쳐 protoporphyrinogen Ⅸ(Protogen Ⅸ)으로 된다.
Protox를 저해하는 제초제란? Protogen Ⅸ은 protophophyrinogen oxidase(Protox)의 작용에 의해 protoporphyrin Ⅸ(Proto Ⅸ)으로 산화된 후 Mg-Proto Ⅸ chelatase에 의해 마그네슘과 결합하면 엽록소 합성으로 이루어지고 Fe-Proto Ⅸ chelatase에 의해 철과 결합하면 heme 합성으로 이루어진다(Duke 등 1991). Porphyrin 생합성 경로에 관여한 효소 중의 하나인 Protox를 저해하는 제초제는 diphenyl ether계를 비롯한 9개 계통에 27종의 제초제가 있으며 이들 제초제는 식물체에 급격한 탈수와 탈색을 일으키는 접촉형제초제이다(Duke 등 1991). 이들 제초제의 작용점인 Protox는 porphyrin 생합성 과정에서 Protogen Ⅸ이 Proto Ⅸ으로 산화되는 과정을 촉매하는 효소이다(Duke와 Rebeiz 1994).
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (26)

  1. Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72:248-254. 

  2. Buege, J. A., and S. D. Aust. 1978. Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol. 52:302-310. 

  3. Chen, G. X., and K. Asada. 1989. Ascorbate peroxidase in tea leaves : occurrence of two isozymes and the differences in their enzymatic and molecular propenies. Plant Cell Physiol. 30:987-998. 

  4. Duke, S. O., and C. A. Rebeiz. 1994. Porphyrin biosynthesis as a tool in pest management : an overview, in Porphyric pesticides: Chemistry, toxicology, and pharmaceulical applicalions, ed by Duke SO and Rebeiz CA, American Chemical Society, Washington, DC. USA, pp. 1-17. 

  5. Duke, S. O., J. Lydon, J. M. Becerril, T. D. Sherman, L. P. Lehnen and H. Matsumoto. 1991. Protoporphyrinogen oxidase-inhibiting herbicides. Weed Sci. 39:465-473. 

  6. Egley. G. H, R. N., Paul Jr, K. C. Vaughn and S. O. Duke. 1983. Role of peroxidase in the development of water-impermeable seed coats in Sida spinosa L. Plants. 157:224-232. 

  7. Ha, S. B., S. B. Lee, D. E. Lee, J. O. Guh and K. Back. 2003. Transgenic rice plants expressing Bacillus subtilis protoporphyrinogen oxidase gene show low herbicide oxyfluorfen resistance. Biologia Plantarum. 47:277-280. 

  8. Ha, S. B., S. B. Lee, Y. Lee, K. Yang, N. Lee, S. M. Jang, J. S. Chung, S. Jung, Y. S. King, S. G. Wi and K. Back. 2004. The plastidic Arabidopsis protoporphyrinogen IX oxidase gene, with or without the transit sequence, confers resistance to the diphenyl ether herbicide in rice. Plant Cell Environ. 27:79-88. 

  9. Hiscox, J. D., and G. F. Israetstam. 1979. A method for the extraction of chlorophyll from leaf tissues without maceration. Can. J. Bot. 57:1332-1334. 

  10. Jacobs, J. M., N. J. Jacobs, T. D. Sherman and S. O. Duke. 1991. Effect of diphenyl ether herbicides on oxidalion of protoporphyrinogen to protoporphyrin in organella and plasma membrane inriched fractions of barley. Plant Physiol. 97: 197-203. 

  11. Jana, S., and M. A. Choudhuri. 1981. Glycolate metabolism of three submerged aquatic angiosperms during aging. Aqual. Bit. 12:345-354. 

  12. Jung, H. I., and Y. I. Kuk. 2007. Resistance mechanisms in protoporphyrinogen oxidase (PROTOX) inhibitor-resistant transgenicrice. J. Plant Biol. 50(5):586-594. 

  13. Jung. H. I., Y. I. Kuk, K. Back and N. R. Burgos. 2008. Resistance pattern and antioxidant enzyme profiles of protoporphyrinogen oxidase (PROTOX) inhibitor-resistant transgenic rice. Pestic. Biochem. Physiol. 91:53-65. 

  14. Jung, S., Y. Lee, K. Yang, S. B. Lee, S. M. Jang, S. B. Ha and K. Back. 2004. Dual targeting of Myxococcus xanthus protoporphyrinogen oxidase into chloroplasts and mitochondria and high level oxytluorfen resistance. Plant Cell Environ. 27: 1436-1446. 

  15. Jung, S., H. J. Lee, Y. Lee, K. Kang, Y. S. Kim, B. Grimm and K. Back. 2008. Toxic tetrapyrrole accumulation in proloporphyrinogen IX oxidase-overexpressing transgenic rice plants. Plant Mol. Biol. 67:535-546. 

  16. Lee, H. J., S. B. Lee, J. S. Chung. S. U. Han, J. O. Guh, J. S. Jeon, G. An and K. Back. 2000. Transgenic rice plants expressing a Bacillus subtilis protoporphyrinogen oxidase gene are resistant to diphenyl ether herbicide oxytluorfen. Plant Cell Physiol. 41 :743-749. 

  17. Lee, Y., S. Jung and K. Back. 2004. Expression of human protoporphyrinogen oxidase in rransgenic rice induces both a phmodynamic response and oxyfluorfen resistance. Pestic. Biochem. Physiol. 80:65-74. 

  18. Lee, H. J., M. V. Duke and S. O. Duke. 1993. Cellular localization of protoporphyrinogen-oxidizing activities of etiolated barley (Hordeum vulgare L.) leaves. Plant Physiol. 102:881-889. 

  19. Lermontova, I., and B. Grimm. 2000. Overexpression of plastidic proloporphyrinogen IX oxidase leads to resistance to the diphenyl-ether herbicide acifluorfen. Plant Physiol. 122:75-83. 

  20. Matringe, M., J. M. Camadro, P. Labbe and R. Scalia. 1989. Protoporphyrinogen oxidase the target for diphenyl ether herbicides. Biochem. J. 260:231-235. 

  21. Mishra, N. P., R K. Mishra and G. S. Singhal. 1993. Changes in the activities of antioxidant enzymes during exposure of intact wheat leaves of strong visible light at different temperature in the presence of protein synthesis inhibitors. Plant Physiol. 102:903-910. 

  22. Rao. M. V., G. Paliyath and D. P. Onnrod. 1996. Ultraviolet B- and ozone-induced biochemical changes in antioxidant enzymes of Arabidopsis thaliana. Plant Physiol. 110: 125-136. 

  23. [SAS] Statistical Analysis System. 2000. SAS/STAT Users Guide, Version 7. Cary, NC : Statistical Analysis Systems Institute, Electronic Version. 

  24. Scalia, R., and M. Matringe. 1994. Inhibitors of protoporphyrinogen oxidase as herbicides: diphenyl ethers and related photobleaching molecules. Rev. Weed Sci. 6:103-132. 

  25. Spychalla, J. P., and S. L. Desborough. 1990. Superoxide dismutase. catalase, and tocopherol content of stored potato tubers. Plant Physiol. 94:1214-1218. 

  26. Wang, A. G., and Luo, G. H. Quantitative relation between the reaction of hydroxylamine and superoxide anion radicals in plants. Plant Physiol. Commun. 6:55-57. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

활용도 분석정보

상세보기
다운로드
내보내기

활용도 Top5 논문

해당 논문의 주제분야에서 활용도가 높은 상위 5개 콘텐츠를 보여줍니다.
더보기 버튼을 클릭하시면 더 많은 관련자료를 살펴볼 수 있습니다.

관련 콘텐츠

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

유발과제정보 저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로