Chicken anemia virus (CAV) has been recognized as an immunosuppressive agent and plays role as an etiological agent of multifactorial diseases in chicken. In this study, we investigated distribution of CAV antibody by ELISA and the virus gene by PCR in poultry farms in Jeongeup, Jeonbuk province. In...
Chicken anemia virus (CAV) has been recognized as an immunosuppressive agent and plays role as an etiological agent of multifactorial diseases in chicken. In this study, we investigated distribution of CAV antibody by ELISA and the virus gene by PCR in poultry farms in Jeongeup, Jeonbuk province. In the test using ELISA kit, 41 (95.3%) of 43 flocks and 88.6% of the individual chickens were positive, respectively. By PCR, 90.9% of the broiler breeders and 75.0% of White-semi breeders were found positive, respectively. All hatchery was negative by PCR. Of the clinical cases from 49 poultry flocks, 87.5% of flocks and 54.7% for each samples were found positive by ELISA, respectively. By PCR test, 21 (42.9%) of 49 flocks were positive. Major clinical signs of the infected flocks were growth retardation, femoral subcutaneous bleeding, depression, limping, and continuing selection. The genetic analysis of separate N genes of CAV showed highly homologous each other. The nucleotide sequence of field isolates had homology ranged from 99.9% to 97.5% with Chinese strains, and 99.9% to 99.6% with Japanese strain. Phylogenetic analysis based on the N gene of CAV isolates showed the closely relation with Chinese strains. The results of this survey could be used as basic data for development of vaccine.
Chicken anemia virus (CAV) has been recognized as an immunosuppressive agent and plays role as an etiological agent of multifactorial diseases in chicken. In this study, we investigated distribution of CAV antibody by ELISA and the virus gene by PCR in poultry farms in Jeongeup, Jeonbuk province. In the test using ELISA kit, 41 (95.3%) of 43 flocks and 88.6% of the individual chickens were positive, respectively. By PCR, 90.9% of the broiler breeders and 75.0% of White-semi breeders were found positive, respectively. All hatchery was negative by PCR. Of the clinical cases from 49 poultry flocks, 87.5% of flocks and 54.7% for each samples were found positive by ELISA, respectively. By PCR test, 21 (42.9%) of 49 flocks were positive. Major clinical signs of the infected flocks were growth retardation, femoral subcutaneous bleeding, depression, limping, and continuing selection. The genetic analysis of separate N genes of CAV showed highly homologous each other. The nucleotide sequence of field isolates had homology ranged from 99.9% to 97.5% with Chinese strains, and 99.9% to 99.6% with Japanese strain. Phylogenetic analysis based on the N gene of CAV isolates showed the closely relation with Chinese strains. The results of this survey could be used as basic data for development of vaccine.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
제안 방법
2009년 1월부터 2009년 12월까지 전북 정읍지소 관내 종계장 및 부화장 가금질병 모니터링 사업에 의거 종계장 19농가, 백세미 종계장 9농가 및 산란계 10농가, 부화장 5개소 등 총 43개소를 대상으로 항체검사를 실시하였고 항원검사는 종계장 11농가, 백세미 종계장 8농가, 부화장 병아리 5개소의 총 24개소에 대한 폐사 및 도태계와 병성감정 의뢰 된 24농가 가검물 49건은 항체 및 항원검사를 실시하였으며 CAV의 유전자를 품종별로 구분하여 분석을 실시하였다.
CAV N gene의 증폭에 사용한 primer는 Carterina 등(2004)과 동일하게 합성하여 forward primer (5′-GACTGTAAGATGGCAAGACGAGCTC-3′)와 reverse primer (5′-GGCTGAAGGATCCCTCATTC-3′)를 사용하여 PCR을 다음과 같이 수행하였다.
PCR 완료 후 반응액 6µl와 loading dye 1µl를 1.5% agarose gel (ethidium bromide 0.5µg/ml in DW)에 100bp DNA marker와 함께 1×TAE buffer가 함유된 전기영동 tank에 gel을 침적시킨 후 100V/cm, 50분간(owl easy cast minigel system) 전기영동을 실시하여 자외선 하에서 특이 band 증폭 유무를 확인하였다.
viral gene spin viral DNA/RNA extraction kit (iNtRON) 및 bioneer exiprep 16 automated nucleic acid extraction system을 이용하여 추출한 nucleotides 3µl와 각 primer 1µl를 PCR premix (Maxime PCR Premix, iNtRON)에 첨가하여 94°C에서 5분, 94°C에 1분 50°C에 1분 및 72°C에 2분씩 35회 반복 반응시킨 후 최종 72°C에서 10분 반응시켰다.
검출된 N gene의 염기서열은 품종별로 육용종계(KCAVBB01) 1개, 토종닭 종계(KCA-VBB02) 1개, 백세미종계(KCAVL03, 04) 2개, 토종닭(KCAVKC08-10) 3개, 육계(KCAVB07) 1개, 백세미(KCAVSG05,06) 2개 총 10개를 비교·분석하였다.
그 후 plate를 5회 세척하고 TMB substrate를 100µl씩 첨가하여 실온에서 15분간 반응시키고, stop solution을 100µl씩 첨가하여 반응을 정지시킨 후 흡광도 650nm에서 측정하여 S/P ratio 0.6 이상을 양성 판정하였다.
염기서열 분석은 N gene에서 증폭된 675bp의 PCR 생성물을 정제한 후 cosmo genetech DNA sequencing service (Cosmo, Korea)를 이용하여 양방향으로 분석하였고 분석된 염기서열은 multilian과 CLUSTALW를 이용하여 비교분석 및 phylogenetic tree를 작성하였다.
즉, 부검 후 장기(흉선, 간 등)를 균질화 후 5% PBS 부유액을 원심분리하고 상층액을 -70°C에 보존하였다.
최근 국내에서는 CAV에 대한 질병 발생이 인식되면서 종계에 대한 백신접종과 실태조사 등을 실시하고 있으나 품종별 감염실태 및 질병 발생에 대한 통계가 부족한 실정이므로 본 연구에서는 품종별 항체가 및 항원 검사와 병성감정 의뢰축에 대한 조사를 병행하여 닭 전염성빈혈에 대한 감염 실태를 파악하고 분리된 유전자염기 서열을 분석하여 외국 분리주와의 유전적 특성을 비교 분석하였다.
성능/효과
국내 분리 염기서열을 중국(AM407847)과 비교한 결과 KCAVKC08주와 1개 부위, KCAVSG05, KCAVVB07, KCAVSG06, KCAVB02, KCAVL04와 4~5개 부위에 nucleotides가 점돌연변이(point mutation)가 되었으며 KCA-VL03과 10개, KCABB01과 16개, KCAVKC09와 22개 및 KCAVKC10와 24개 부위 점돌연변이가 되어 있는 것으로 확인되었다. 검출된 N gene의 염기서열은 품종별로 육용종계(KCAVBB01) 1개, 토종닭 종계(KCA-VBB02) 1개, 백세미종계(KCAVL03, 04) 2개, 토종닭(KCAVKC08-10) 3개, 육계(KCAVB07) 1개, 백세미(KCAVSG05,06) 2개 총 10개를 비교·분석하였다.
아미노산 서열을 보면 육용종계(KCAVBB01)은 3개 부위, 토종종계(KCAVBB02)와 백세미 종계(KCAVL03, 04)는 1개 부위에서 점돌연변이가 발생한 것으로 추정된다. 그리고 중국 분리주(AM407847)와 본 실험에서 분리된 유전자는 99.1~99.6%의 높은 상동성을 보였으며 phylogenetic tree를 분석한 결과 같은 계열에 속하는 것으로 추정되어 국내에서 유행하는 CAV는 서로 밀접한 관계임을 확인할 수 있었다. 이러한 유전자 분석은 여러 연구자에 의해 분석되어지고 있으나 (Craig 등, 2009; Ducatez 등, 2006; van Santen 등, 2001) 국내에서 CAV에 대한 연구가 미비한 실정이므로 앞으로 많은 연구가 필요하리라 본다.
9%)의 양성율을 보였다. 또한 CAV 감염이 확인된 농가에서는 침울, 성장부진 등으로 인한 꾸준한 도태가 발생하였고 대퇴부 피하출혈과 보행곤란 등의 증상이 관찰되었다.
본 실험의 병성감정 의뢰 가검물에서는 49농가 중 21농가에서 항원이 검출되었으며 이중 전염성빈혈 증상을 보인 농가는 7농가이었고 나머지 농가는 혼합감염이었다. 또한 병성감정의뢰 농가에서 54.8%의 항체 양성율을 보였으며 이중 육계 및 백세미에 비해 사육기간이 길은 토종닭이 76.1%의 양성율을 보여 CAV에 의한 농가의 피해가 많을 것으로 추정 되었다.
0의 상동성을 나타내었다. 또한 이전 외국 분리주와 비교하여 중국(AM407847)과 KCAVKC08, KCAVSG05, KCAVB07, KCAVSG06, KCAVBB02, KCAVL04와는 99.9~99.1%의 높은 상동성을 KCA-VBB01은 97.5%, 중국(DQ141670)과 KCAVKC10은 100%, KCAVKC09와는 99.9%, 일본(AB001893)과 KCAVL03은 99.6%, 중국(AM407822)주와 KCAVB-B01은 98.2%의 상동성을 보였다(Table 3, Fig. 1).
0%의 양성율을 나타냈으나 부화장 1일령 병아리에서는 항원이 검출되지 않았다. 또한, 병성감정 의뢰 가검물 항체검사에서 계군별 87.5%, 개체별 54.8%, 항원은 49건 중 21건(42.9%)의 양성율을 보였다. 또한 CAV 감염이 확인된 농가에서는 침울, 성장부진 등으로 인한 꾸준한 도태가 발생하였고 대퇴부 피하출혈과 보행곤란 등의 증상이 관찰되었다.
6%)의 양성율을 보였다. 또한, 식용란을 생산하는 산란계 10농가(100.0%), 227수 중 155수(68.3%), 부화장 5개소의 1일령 병아리 111수에서 100%의 양성율을 보였다(Table 1).
유전자 분석결과 검출된 10개의 유전자는 서로 높은 상동성으로 품종별 종계에 의한 CAV의 질병 발생 가능성을 추측 할 수 있었다. 또한, 염기서열 분석에서 기존에 보고된 중국 분리주와 연관성이 있는 것으로 조사되었으며 지속적인 N gene에 점돌연변이가 진행된 것으로 조사되었다. 또한, 품종별 높은 항체 양성율과 항원 검출은 CAV가 양계농장에 상재화 되고 있는 것으로 확인되었다.
또한, 염기서열 분석에서 기존에 보고된 중국 분리주와 연관성이 있는 것으로 조사되었으며 지속적인 N gene에 점돌연변이가 진행된 것으로 조사되었다. 또한, 품종별 높은 항체 양성율과 항원 검출은 CAV가 양계농장에 상재화 되고 있는 것으로 확인되었다.
7%의 높은 양성율을 보여 종계의 감염이 심각함을 알 수 있었으며 항원검사에서는 11농가 중 10농가가 확인되어 지속적인 감염이 이루어짐을 확인할 수 있어 난계대전염으로 육계에서의 질병 발생 가능성을 예측할 수 있었다. 백세미종계 8농가 중 4농가에서는 백신을 접종하고 있었으나 백신 접종 여부와 관계없이 93.6%의 높은 항체양성율과 8농가 중 6농가(75.0%)에서 항원이 확인되어 CAV로 인한 질병 발생 가능성과 백신접종에 대한 사양관리의 전반적인 재고가 필요한 것으로 사료되었다. 즉 품종별, 농가별 항체 및 항원 검사를 실시한 후 백신 접종 시기를 결정하여야 질병의 예방에 도움이 될 것으로 사료된다.
병성감정 의뢰된 가검물 항체검사결과 24농가 중 21농가(87.5%), 398수 중 218수(54.8%), 이중 백세미 3농가 중 2농가, 70수 중 32수(45.7%), 육계 14농가 중 12농가, 190수 중 81수(42.6%), 토종닭은 7농가 모두와 138수 중 105수(76.1%)가 양성으로 나타났다(Table 2).
본 실험에서 검출된 CAV N gene의 아미노산 서열을 중국분리주(AM407847)와 비교한 결과 KCAVB07, KCAVBB02, KCAVKC08, KCAVSG06, KCAVSG05와 일치하였으며 KCAVL03, KCAVL04, LCAVKC09, KCAVKC10은 1개 부위, KCAVBB01은 3개 부위에서 다른 서열을 나타내었다. 아미노산 서열에 대한 상동성 분석결과 중국 분리주(AM407847)와 99.
국내에서는 성 등(1991년)이 산란 및 육용종계에서 CAV를 분리하였으며 SPF 병아리에 접종하여 14~16일 후 심한 빈혈 증상을 확인하여 보고하였다. 본 실험의 병성감정 의뢰 가검물에서는 49농가 중 21농가에서 항원이 검출되었으며 이중 전염성빈혈 증상을 보인 농가는 7농가이었고 나머지 농가는 혼합감염이었다. 또한 병성감정의뢰 농가에서 54.
부화를 목적으로 알을 생산하는 종계장 19농가 및 백세미 종계장 9농가 중 종계장 2농가에서만 항체가 검출되지 않았고 조사대상 2,041수 중 1,810수(88.7%), 종계는 1,042수 중 925수(88.8%), 백세미종계 661수 중 619수(93.6%)의 양성율을 보였다. 또한, 식용란을 생산하는 산란계 10농가(100.
CAV 감염시 빈혈은 14~16일령에 hematoc-rit가 6~27%로 감소되고 침울 및 창백 증상과 어린 일령에서는 빈혈과 흉선, 골수, F낭의 위축으로 인한 면역억제 및 다리와 가슴근육에 출혈, 날개의 괴사 등을 나타낸다(Goryo 등, 1985; Saif 등, 2003). 실험적으로 10~20일령에 성장부진과 12~21일령에는 폐사가 발생하나 폐사율이 30%를 넘지 않고 20~28일 경에 회복되면 침울 증상이 사라지나 이차 세균 및 바이러스 감염시 폐사율은 증가한다. 또한 면역을 억제하는 질병인 MDV, reticuloendotheliosis virus (REV), IBDV, reovirus 및 cryptosporidiosis와 중복 감염시 CAV의 병원성은 증가하는 것으로 보고되었다(Davidson, 2008; Otaki, 1987; Rosenberger 등, 1989; Toro 등, 2009, 2000, 1997).
본 실험에서 검출된 CAV N gene의 아미노산 서열을 중국분리주(AM407847)와 비교한 결과 KCAVB07, KCAVBB02, KCAVKC08, KCAVSG06, KCAVSG05와 일치하였으며 KCAVL03, KCAVL04, LCAVKC09, KCAVKC10은 1개 부위, KCAVBB01은 3개 부위에서 다른 서열을 나타내었다. 아미노산 서열에 대한 상동성 분석결과 중국 분리주(AM407847)와 99.1~99.6%의 상동성을 나타내었다(Fig. 2).
염기서열 Phylogenetic tree 분석한 결과 CAVBB01, KCAVKC09, KCAVKC10은 중국 분리주(AM407849, DQ141670)와 같은 계열에 속하였고, KCAVSG05, KCAVB07은 미국(AF311900)과 인도(EU424059)주 계열, 아르헨티나(EU871781) 및 일본(AB001893)분리주는 KCAVL03, KCAVKC08, LCAVSG06, KCAVBB02은 비교 대상인 중국(AM407847)과 같은 계열을 구성하였으며 분리주 모두 중국주, 미국, 아르헨티나와 유전적으로 밀접한 관계를 나타냈으며 일본 및 인도주는 중국주(AM407822)에 포함되어 같은 계열에 속하는 것을 확인할 수 있었다(Fig. 3).
검출된 N gene의 염기서열은 품종별로 육용종계(KCAVBB01) 1개, 토종닭 종계(KCA-VBB02) 1개, 백세미종계(KCAVL03, 04) 2개, 토종닭(KCAVKC08-10) 3개, 육계(KCAVB07) 1개, 백세미(KCAVSG05,06) 2개 총 10개를 비교·분석하였다. 염기서열 상동성 분석 결과 종계인 KCAVBB01과 KCA-VBB02는 97.3%, 산란계 KCAVL03과 KCAV04는 99.3%, 토종닭 KCAKC08과 KCAVKC09, KCAV-KC10은 96.6~96.7%, 백세미 KCAVSG05와 KCAVS-G06은 99.0의 상동성을 나타내었다. 또한 이전 외국 분리주와 비교하여 중국(AM407847)과 KCAVKC08, KCAVSG05, KCAVB07, KCAVSG06, KCAVBB02, KCAVL04와는 99.
유전자 분석결과 검출된 10개의 유전자는 서로 높은 상동성으로 품종별 종계에 의한 CAV의 질병 발생 가능성을 추측 할 수 있었다. 또한, 염기서열 분석에서 기존에 보고된 중국 분리주와 연관성이 있는 것으로 조사되었으며 지속적인 N gene에 점돌연변이가 진행된 것으로 조사되었다.
국내 분리 6주는 중국 분리주(AM407847)와 상동성이 높았으며 중국주(AM407822, DQ141670) 및 일본(AM001893)주와도 상동성을 보였다. 육용종계에서 분리된 KCAVBB01은 육계의 KCAVB07과 97.9%의 비교적 낮은 상동성을 보였으며 토종종계에서 분리된 KCAVBB02와 KCAVKC08과는 99.4%, KCAVKC09 및 KCAVKC10과는 96.3~96.4%, 백세미 종계에서 분리된 KCAVL03, KCAVL04는 98.1~99.3%의 상동성을 보였고 같은 계열에는 속하지만, 분리주의 점돌연변이가 발생한 것으로 추정된다.
정읍지소 관내 양계 사육농장에 대한 품종별 CAV의 항체검사를 결과 백신을 접종하지 않은 종계에서 항체양성율은 88.7%의 높은 양성율을 보여 종계의 감염이 심각함을 알 수 있었으며 항원검사에서는 11농가 중 10농가가 확인되어 지속적인 감염이 이루어짐을 확인할 수 있어 난계대전염으로 육계에서의 질병 발생 가능성을 예측할 수 있었다. 백세미종계 8농가 중 4농가에서는 백신을 접종하고 있었으나 백신 접종 여부와 관계없이 93.
종계장의 폐사 및 도태계를 대상으로 항원검사결과 11농가 중 10농가(90.9%), 백세미종계장 8농가 중 6농가(75.0%)의 양성율을 보였으며 부화장 5개소 1일령 병아리에서는 항원이 검출되지 않았다. 또한 병성감정 의뢰된 가검물 49건 검사에서는 21건(42.
후속연구
즉 품종별, 농가별 항체 및 항원 검사를 실시한 후 백신 접종 시기를 결정하여야 질병의 예방에 도움이 될 것으로 사료된다. 또한 산란계 농가는 68.3%의 항체양성율을 보였으나 항원은 검출되지 않았으며 산란계는 식용란 생산을 목적으로 사육함으로 비교적 타 품종의 질병 전파 양상은 다르다고 생각되어지지만 식용란의 운반 과정에 철저한 소독을 실시해야 할 것으로 사료된다. 백세미 생산 부화장의 1일령 병아리는 100%의 항체양성율을 보였으나 항원은 검출되지 않아 약간의 의문점이 제기되었으나 이는 적은 수의 검사개체와 종계장 추적결과 관내에 위치하지 않아 감염여부을 확인할 수 없음이 아쉬움을 남겼다.
국내에서 유행하는 CAV는 유전적으로 연관되어 있는 것으로 추정되어 부화를 목적으로 하는 모든 종계부터 근본적인 질병 대책이 요구되며 주기적인 모니터링 검사를 통한 항원 및 항체 검사를 실시하여 백신 접종 여부와 시기에 대한 선택에 검토가 필요하다. 또한 일부 백신을 접종하고 있음에도 불구하고 질병의 발생은 증가 추세이므로 품종별 정확한 조사와 품종별 유전적 연관성에 대한 연구가 필요할 것으로 사료된다.
그러나 면역력 저하는 특별한 임상증상이 없는 경우도 있어 농가에서는 질병에 대한 대처와 관리 등도 어려울 뿐만 아니라 질병 발생시 사육기간이 짧은 육계, 백세미 및 토종닭에서는 CAV로 인한 질병의 피해를 인식하지 못하여 더욱 큰 피해가 발생하는 경우가 있어 CAV에 대한 근본적인 대책의 마련이 시급한 실정이다. 또한, 개체간의 수평감염 뿐 아니라 난계대에 의한 수직감염이 가능한 질병으로 부화를 목적으로 사육하는 종계에 대한 질병 모니터링과 지속적인 관찰이 요구되며 질병 발생을 최소화하기 위해서는 발생 농장에 대한 항체 및 항원 검사와 유전자 분석을 실시하고 상용화된 백신과의 상관관계를 확인하여 종계에 대한 백신 접종과 위생관리 강화의 노력이 요구된다.
6%의 높은 상동성을 보였으며 phylogenetic tree를 분석한 결과 같은 계열에 속하는 것으로 추정되어 국내에서 유행하는 CAV는 서로 밀접한 관계임을 확인할 수 있었다. 이러한 유전자 분석은 여러 연구자에 의해 분석되어지고 있으나 (Craig 등, 2009; Ducatez 등, 2006; van Santen 등, 2001) 국내에서 CAV에 대한 연구가 미비한 실정이므로 앞으로 많은 연구가 필요하리라 본다.
0%)에서 항원이 확인되어 CAV로 인한 질병 발생 가능성과 백신접종에 대한 사양관리의 전반적인 재고가 필요한 것으로 사료되었다. 즉 품종별, 농가별 항체 및 항원 검사를 실시한 후 백신 접종 시기를 결정하여야 질병의 예방에 도움이 될 것으로 사료된다. 또한 산란계 농가는 68.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
2~4주 닭에서 CAV로 인한 닭의 폐사율은?
CAV는 종종 면역 억제를 동반한 lymphoid의 위축과 바이러스 및 세균, 곰팡이 감염 등의 이차감염이 이루어지고 hemorrhagic syndrome이나 aplastic anemia과 연계되어 질병의 원인체 역할을 하는 것으로 나타나고 있다. 또한, 2~4주 닭에서 전염성빈혈 증후군을 유발하여 성장부진이 나타나고 폐사율이 10~20%에서 60%까지도 가능하다(McNulty, 1991). 6주 이상의 일령에서는 aplastic anemia-hemorrhagic syndrome 발생의 병인론에서 중요한 역할을 한다.
Circoviridae는 무엇인가?
양돈 및 양계에서 최근 문제시 되는 Circoviridae는 외피가 없는 14~25nm의 single-stranded circular DNA 바이러스로 porcine circovirus (PCV), psittacine beak and feather disease virus (PBFDV), chicken anemia virus (CAV)를 포함하나 CAV는 PCV 및 PBFDV와 유전자 구조로 구분되며 human TT virus와 비슷하다. CAV는 일본에서 Yuasa 등(1979)이 최초로 보고, 이후 전 세계적으로 확인되고 있으며 단일 혈청형을 가지고 있다(McNulty, 1991; Saif 등, 2003).
CAV가 최초로 보고된 시기는?
양돈 및 양계에서 최근 문제시 되는 Circoviridae는 외피가 없는 14~25nm의 single-stranded circular DNA 바이러스로 porcine circovirus (PCV), psittacine beak and feather disease virus (PBFDV), chicken anemia virus (CAV)를 포함하나 CAV는 PCV 및 PBFDV와 유전자 구조로 구분되며 human TT virus와 비슷하다. CAV는 일본에서 Yuasa 등(1979)이 최초로 보고, 이후 전 세계적으로 확인되고 있으며 단일 혈청형을 가지고 있다(McNulty, 1991; Saif 등, 2003). CAV는 종종 면역 억제를 동반한 lymphoid의 위축과 바이러스 및 세균, 곰팡이 감염 등의 이차감염이 이루어지고 hemorrhagic syndrome이나 aplastic anemia과 연계되어 질병의 원인체 역할을 하는 것으로 나타나고 있다.
Caterina KM, Frasca S Jr, Girshick T, Khan MI. 2004. Development of a multiplex PCR for detection of avian adenovirus, avian reovirus, infectious bursal disease virus, and chicken anemia virus. Mol Cell Probes 18(5): 293-298.
Craig MI, Rimondi A, Delamer M, Sansalone P, Konig G, Vagnozzi A, Pereda A. 2009. Molecular characterization of chicken infectious anemia virus circulating in Argentina during 2007. Avian Dis 53(3): 331-335.
Davidson I, Artzi N, Shkoda I, Lublin A, Loeb E, Schat KA. 2008. The contribution of feathers in the spread of chicken anemia virus. Virus Res 132(1-2): 152-159.
Huseyin HADiML H, Osman ERGANIS, Leyla GULER, Sait UCAN U. 2008. Investigation of Chicken Infectious Anemia Virus Infection by PCR and ELISA in Chicken Flocks. Turk J Vet Anim Sci 32(2): 79-84.
Otaki Y, Nunoya T, Tajima M, Tamada H, Nomura Y. 1987. Isolation of chicken anaemia agent and Marek's disease virus from chickens vaccinated with turkey herpesvirus and lesions induced in chicks by inoculating both agents. Avian Pathol 16(2): 291-306.
Rosenberger JK, Cloud SS. 1989. The effects of age, route of exposure and coinfection with infectious bursal disease virus on the pathogenicity and transmissibility of chicken anemia agent (CAA). Avian Pathol 33(4): 753-759.
Roussan DA. 2006. Serological Survey on the Prevalence of Chicken Infectious Anemia Virus in Commercial Broiler Chicken Flocks in Northern Jordan. Int J Poult Sci 5(6): 544-546.
Saif YM, Barnes HJ, Glisson JR, Fadly AM, McDougald LA, Swayne DE. 2003. Diseases of poultry, 11th ed. Iowa State University Press, Ames, Iowa: 181-202.
Toro H, van Santen VL, Hoerr FJ, Breedlove C. 2009. Effects of chicken anemia virus and infectious bursal disease virus in commercial chickens. Avian Dis 53(1): 94- 102.
Toro H, Gonzalez C, Cerda L, Hess M, Reyes E, Geissea C. 2000. Chicken anemia virus and fowl adenoviruses: association to induce the inclusion body hepatitis/ hydropericardium syndrome. Avian Dis 44(1): 51-58.
Urlings HA, de Boer GF, van Roozelaar DJ, Koch G. 1993. Inactivation of chicken anaemia virus in chickens by heating and fermentation. Vet Q 15(3): 85-88.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.