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NTIS 바로가기Journal of embryo transfer = 한국수정란이식학회지, v.27 no.1, 2012년, pp.1 - 7
허창기 (조아제약(주) 조아생명공학연구소) , 양혜영 (조아제약(주) 조아생명공학연구소) , 이은경 (조아제약(주) 조아생명공학연구소) , 한주희 (조아제약(주) 조아생명공학연구소) , 박천규 (조아제약(주) 조아생명공학연구소) , 신택순 (부산대학교 동물생명자원과학과) , 이홍구 (부산대학교 동물생명자원과학과) , 강한석 (부산대학교 동물생명자원과학과) , 안종덕 (조아제약(주) 조아생명공학연구소) , 조성근 (부산대학교 동물생명자원과학과)
Somatic cell nuclear transfer (SCNT) for miniature pig has been developed for xenotransplantation and many other biomedical experiments. However, the efficiency of SCNT is still very low due to many factors. To optimize the surrogate mother condition for improvement of cloned miniature pigs efficien...
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핵심어 | 질문 | 논문에서 추출한 답변 |
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자연 발정 돼지 선발 방법의 단점은 무엇인가? | 복제 돼지 생산을 위한 대리모의 선발 방법은 돈군에서 자연 발정 돼지를 선별해서 사용하는 방법(Takahagi 등, 2005; Kurome 등, 2006), 발정 유도 호르몬의 일정기간 구강 투여하여 비임신돈을 발정동기화 하여 사용하는 방법과 임신돈의 강제 유산을 통한 발정동기화 방법(Guthrie와 Polge, 1978) 등이 시도되었다. 자연 발정 돼지 선발 방법은 간단하고 손쉬운 방법이긴 하나, 많은 개체수를 확보하고 있어야 한다는 단점이 있으며, 대규모 돈군을 확보하지 못하고 연구를 수행하는 연구 그룹에 있어서는 비용과 시간 소모가 많으나, 복제란 생산 시기와 대리모 조건을 조절 가능한 임신돈의 강제 유산을 통한 발정동기화 방법이 가장 효율적이라 사료되었다. 따라서 본 연구에서는 강제 유산을 통한 대리모의 선발 방법에 따라 임신율과 분만율 및 그에 따른 생산 효율과 복제 산자의 검증에 대하여 알아보고자 하였다. | |
미니돼지가 장기 이식이나 수술 및 질병 연구를 위한 모델 동물로 쓰이는 이유는 무엇인가? | 미니돼지는 해부/생리학적으로 인간과 유사해 이종간 장기 이식이나 수술 및 질병 연구를 위한 모델 동물로써 사용되어져 왔다(Prather 등, 2003; Zhao 등, 2009). 최초의 체세포 복제 돼지는 Onishi 등(2000)과 Polejaeva 등(2000)에 의해 최초로 생산되어진 이후 많은 연구자들에 의해 연구되어지고 있으며, Lai 등(2002)에 의해 초급성 면역거부반응 관련 유전자인 alpha-1,3 Galactocyltransferase(GalT)가 제거된(knock-out)된 형질전환 복제 돼지가 생산되면서 미니돼지를 이용한 질환 모델 및 장기이식용 형질전환 동물의 생산에 대한 연구가 활발 하게 진행되어졌다(Phelps 등, 2003; Kolber-Simonds 등, 2004; Loveland 등, 2004; Nottle 등, 2007). | |
형질전환 복제동물의 생산 효율을 높이기 위해 어떤 연구들이 수행되었는가? | 이러한 많은 연구에도 불구하고 형질전환 복제동물의 생산 효율은 여러 가지 문제점들로 인하여 극히 낮은 실정이다. 이러한 효율을 향상 하기 위해서 기본적으로 체외 배양 시스템의 개선 및 복제란의 생산율을 증진시키기 위한 연구들이 수행되어졌으며(Kobayashi 등, 2007; Hwang 등, 2008), 복제란에서의 유전자 발현에 대한 연구(Park 등, 2010; Park 등, 2011)를 통한 생산 효율의 개선 또한 시도되어졌다. 복제 돼지 생산을 위한 대리모의 선발 방법은 돈군에서 자연 발정 돼지를 선별해서 사용하는 방법(Takahagi 등, 2005; Kurome 등, 2006), 발정 유도 호르몬의 일정기간 구강 투여하여 비임신돈을 발정동기화 하여 사용하는 방법과 임신돈의 강제 유산을 통한 발정동기화 방법(Guthrie와 Polge, 1978) 등이 시도되었다. |
Ahn KS, Kim YJ, Kim M, Lee BH, Heo SY, Kang MJ, Kang YK, Lee JW, Lee KK, Kim JH, Nho WG, Hwang SS, Woo JS, Park JK, Park SB and Shim H. 2011. Resurrection of an alpha-1,3-galactosyltransferase gene-targeted miniature pig by recloning using postmortem ear skin fibroblasts. Theriogenology 75:933-939.
Fujimura T, Takahagi Y, Shigehisa T, Nagashima H, Miyagawa S, Shirakura R and Murakami H. 2008. Production of alpha 1,3-galactosyltransferase gene-deficient pigs by somatic cell nuclear transfer: a novel selection method for gal alpha 1,3-Gal antigen-deficient cells. Mol. Reprod. Dev. 75:1372- 13788.
Guthrie HD and Polge C. 1978. Treatment of pregnant gilts with a prostaglandin analogue, cloprostenol, to control oestrus and fertility. J. Reprod. Fertil. 52:271-273.
Hwang IS, Park MR, Moon HJ, Shim JH, Kim DH, Yang BC, Ko YG, Yang BS, Cheong HT and Im GS. 2008. Osmolarity at early culture stage affects development and expression of apoptosis related genes (Bax- ${\alpha}$ and Bcl-xl) in preimplantation porcine NT embryos. Mol. Reprod. Dev. 75: 464-471.
Kobayashi M, Asakuma S and Fukui Y. 2007. Blastocyst production by in vitro maturation and development of porcine oocytes in defined media following intracytoplasmic sperm injection. Zygote 15:93-102.
Kolber-Simonds D, Lai L, Watt SR, Denaro M, Arn S, Augenstein ML, Betthauser J, Carter DB, Greenstein JL, Hao Y, Im GS, Liu Z, Mell GD, Murphy CN, Park KW, Rieke A, Ryan DJ, Sachs DH, Forsberg EJ, Prather RS and Hawley RJ. 2004. Production of ${\alpha}$ -1,3-galactosyltransferase null pigs by means of nuclear transfer with fibroblasts bearing loss of heterozygosity mutations. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 101:7335-7340.
Koo OJ, Kang JT, Kwon DK, Park HJ and Lee BC. 2010. Influence of ovulation status, seasonality and embryo transfer method on development of cloned porcine embryos. Reprod. Domest. Anim. 45:773-778.
Kurome M, Ishikawa T, Tomii R, Ueno S, Shimada A, Yazawa H and Nagashima H. 2008. Production of transgenic and non-transgenic clones in miniature pigs by somatic cell nuclear transfer. J. Reprod. Dev. 54:156-163.
Kurome M, Ueda H, Tomii R, Naruse K and Nagashima H. 2006. Production of transgenic-clone pigs by the combination of ICSI-mediated gene transfer with somatic cell nuclear transfer. Transgenic Res. 15:229-240.
Lai L, Kolber-Simonds D, Park KW, Cheong HT, Greenstein JL, Im GS, Samuel M, Bonk A, Rieke A, Day BN, Murphy CN, Carter DB, Hawley RJ and Prather RS. 2002. Production of alpha-1,3-galactosyltransferase knockout pigs by nuclear transfer cloning. Science 295:1089-1092.
Loveland BE, Milland J, Kyriak ou P, Thorley BR, Christiansen D, Lanteri MB, van Regensburg M, Duffield M, French AJ, Williams L, Baker L, Brandon MR, Xing PX, Kahn D and McKenzie IFC. 2004. Characterization of a CD46 transgenic pig and protection of transgenic kidneys against hyperacute rejection in non-immunosuppressed baboons. Xenotransplantation 11:171-183.
Martinez EA, Caamano JN, Gil MA, Rieke A, McCauley TC, Cantley TC, Vazquez JM, Roca J, Vazquez JL, Didion BA, Murphy CN, Prather RS and Day BN. 2004. Successful nonsurgical deep uterine embryo transfer in pigs. Theriogenology 61:137-146.
Nottle MB, Beebe LF, Harrison SJ, McIlfatrick SM, Ashman RJ, O'Connell PJ, Salvaris EJ, Fisicaro N, Pommey S, Cowan PJ and d'Apice AJ. 2007. Production of homozygous ${\alpha}$ -1,3-galactosyltransferase knockout pigs by breeding and somatic cell nuclear transfer. Xenotransplantation 14:339-344.
Onishi A, Iwamoto M, Akita T, Mikawa S, Takeda K, Awata T, Hanada H and Perry AC. 2000. Pig cloning by microinjection of fetal fibroblast nuclei. Science 289:1188-1190.
Park CH, Uh KJ, Mulligan BP, Jeung EB, Hyun SH, Shin T, Ka H and Lee CK. 2011. Analysis of imprinted gene expression in normal fertilized and uniparental preimplantation porcine embryos. PLoS. One 6:e22216.
Park MR, Kim BK, Lee HC, Lee P, Hwang S, Im GS, Woo JS, Cho C, Choi SH, Kim SW and Ko YG. 2010. The imprinted messenger TNA expression in cloned porcine preimplantation embryos. J. Emb. Trans. 25:127-131.
Petters RM and Wells KD. 1993. Culture of pig embryos. J. Reprod. Fertil. Suppl. 48:61-73.
Phelps CJ, Koike C, Vaught TD, Boone J, Wells KD, Chen SH, Ball S, Specht SM, Polejaeva IA, Monahan JA, Jobst PM, Sharma SB, Lamborn AE, Garst AS, Moore M, Demetris AJ, Rudert WA, Bottino R, Bertera S, Trucco M, Starzl TE, Dai Y and Ayares DL. 2003. Production of ${\alpha}$ -1,3-galactosyltransferase-deficient pigs. Science 299:411-414.
Polejaeva IA, Chen SH, Vaught TD, Page RL, Mullins J, Ball S, Dai Y, Boone J, Walker S, Ayares DL, Colman A and Campbell KH. 2000. Cloned pigs produced by nuclear transfer from adult somatic cells. Nature 407:86-90.
Prather RS, Boice ML, Gibson J, Hoffman KE and Parry TW. 1995. In vitro development of embryos from Sinclair miniature pigs: a preliminary report. Theriogenology 43:1001-1007.
Prather RS, Hawley RJ, Carter DB, Lai L and Greenstein JL. 2003. Transgenic swine for biomedicine and agriculture. Theriogenology 59:115-123.
Ringe J, Kaps C, Schmitt B, Buscher K, Bartel J, Smolian H, Schultz O, Burmester GR, Haupl T and Sittinger M. 2002. Porcine mesenchymal stem cells. Induction of distinct mesenchymal cell lineages. Cell Tissue Res. 307:321-327.
Takahagi Y, Fujimura T, Miyagawa S, Nagashima H, Shigehisa T, Shirakura R and Murakami H. 2005. Production of alpha 1,3-galactosyltransferase gene knockout pigs expressing both human decay-accelerating factor and N-acetylglucosaminyltransferase III. Mol. Reprod. Dev. 71:331-338.
Yoshioka K, Suzuki C, Tanaka A, Anas IM and Iwamura S. 2002. Birth of piglets derived from porcine zygotes cultured in a chemically defined medium. Biol. Reprod. 66: 112-119.
You J, Jeon YB, Hyun SH, Park SB and Lee E. 2010. Reproductive efficiency and characteristics of cloned miniature piglets produced from domestic commercial gilts. J. Emb. Trans. 25:215-219.
Zhao J, Ross JW, Hao Y, Spate LD, Walters EM, Samuel MS, Rieke A, Murphy CN and Prather RS. 2009. Significant improvement in cloning efficiency of an inbred miniature pig by histone deacetylase inhibitor treatment after somatic cell nuclear transfer. Biol. Reprod. 81:525-530.
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