$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

[국내논문] 절편부위와 사이토키닌이 갓의 재분화에 미치는 영향
Effects of different types and ages of explants and cytokinins on shoot regeneration in Brassica juncea L. 원문보기

Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, v.40 no.2, 2013년, pp.72 - 78  

노경희 (국립농업과학원 농업생명자원부) ,  곽보경 (국립농업과학원 농업생명자원부) ,  김종범 (국립농업과학원 농업생명자원부) ,  이경렬 (국립농업과학원 농업생명자원부) ,  김현욱 (국립농업과학원 농업생명자원부) ,  김순희 (국립농업과학원 농업생명자원부) ,  강한철 (국립농업과학원 농업생명자원부)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구는 갓(Brassica juncea L. Czern)의 효율적 재분화조건 확립을 위해 재분화가 잘되는 절편체 종류와 절편체의 나이 그리고 재분화율 향상에 관여하는 사이토키닌 종류와 적정 함량을 조사하였다. 절편체 종류에 따른 갓의 재분화율은 다음과 같았다: 잎자루 달린 자엽> 하배축> 잎자루 달린 본엽> 자엽> 본엽. 또한 파종 후 5일된 잎자루 달린 자엽에서의 재분화능이 가장 양호하였다. 6종의 사이토키닌 중에서- 6-${\gamma}$-${\gamma}$-Dimethylallylamino-purine (2-ip), 6-${\gamma}$-${\gamma}$-Dimethylallylamino-purine riboside (2-ip riboside), 6-Benzyl amino-purine (BAP), Thidiazuron (TDZ), Zeatin, Zeatin riboside-TDZ $8{\mu}M$ 처리구에서 재분화율이 평균 80%로 가장 높은 것을 알 수 있었다. 이렇게 획득한 재분화 식물체는 온실로 옮겨져 재배되었으며, 정상적인 생육과정을 거쳐 개화가 이루어지는 것이 관찰되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

To establish an efficient protocol for plant regeneration of Brassica juncea L. Czern, the effects of explant types, explant ages and cytokinins on shoot regeneration were examined in this study. Shoot regeneration was markedly affected by the explant types used in the following order: cotyledon wit...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 2009). 따라서 본연구에서는 국내에서 많이 재배되고 있는 청갓의 효율적 재분화조건 확립을 위해서 재분화가 잘되는 적정 절편체와 재분화능이 가장 양호한 절편체의 나이를 살펴보았으며, 재분화율 및 식물체 생장에 가장 효과적인 사이토키닌 종류와 함량을 조사하였다.
  • 본 연구는 갓(Brassica juncea L. Czern)의 효율적 재분화 조건 확립을 위해 재분화가 잘되는 절편체 종류와 절편 체의 나이 그리고 재분화율 향상에 관여하는 사이토키닌 종류와 적정 함량을 조사하였다. 절편체 종류에 따른 갓의 재분화율은 다음과 같았다: 잎자루 달린 자엽> 하배축> 잎자루 달린 본엽> 자엽> 본엽.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
국내에서 채소용으로 재배되는 갓의 형태적 특징은? taisai, 잎과 줄기 채소용. 우리나라에서 주로 채소용으로 재배되고 있는 갓은 잎이 넓고 톡 쏘는 매운 맛이 적고 섬유질이 거의 없어 부드럽고 잎과 줄기에 잔털이 없는 형태적 특징을 갖는다(농촌진흥청 2003).
갓의 기원은 무엇인가? 갓(Brassica juncea (L.) Czern, Indian mustard, AABB genome, 2n=36)은 배추(Brassica) 속(屬)의 순무(B. rapa, turnip, AA genome, 2n=20)와 흑겨자(B. nigra, black mustard, BB genome, 2n=16)가 자연상태에서 종간교잡으로 만들어진 야생종이 기원이라 추정되고 있으며(Hemingway 1976), 형태와 용도에 따라 크게 4개의 아종(Sub-species)으로 나뉜다(Spect and Diederichsen 2001); (1)Brassica juncea ssp. integrifolia, 잎 채소용, (2)Brassica juncea ssp.
사이토키닌 종류가 갓의 재분화에 미치는 영향을 관찰한 결과, 2-ip와 Zeatin 함량에 따른 재분화율 변화 추이는? 재분화율을 보면 BAP와 TDZ 처리구 에서 64% ~ 80%로 양호한 반응을 보였으며, 특히 TDZ 8 μM 처리구에서 재분화율이 평균 80%로 가장 뛰어남을 알 수 있었다. 2-ip와 Zeatin은 함량이 증가할수록 재분화율이 증가하는 경향인 반면, 2-ip riboside와 Zeatin riboside은 함량이 증가할수록 재분화율이 감소하는 경향을 보였는데, 이러한 경향은 2-ip 처리구에서 뚜렷하게 보여졌다. 절편당 형성되는 줄기수를 보면 BAP와 TDZ 처리구에서 평균 2개의 줄기를 형성하며 상대적으로 양호한 반응을 보인 반면, 나머지 처리구에서는 평균 1.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (38)

  1. 농촌진흥청 (2003) 표준영농교본. In: 엽채류 재배, Vol. 140, 삼미기획, pp 111-116 

  2. Agarwal PK, Ranu RS (2000) Regeneration of plantlets from leaf and petiole explants of Pelargonium X Hortorum. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 36:392-397 

  3. Akasaka-Kennedy Y, Yoshida H, Takahata Y (2005) Efficient plant regeneration from leaves of rapeseed (Brassica napus L.): the influence of AgNO3 and genotype. Plant Cell Rep 24:649-654 

  4. Babic V, Datla RS, Scoles GJ, Keller WA (1998) Development of an efficient Agrobacterium-mediated transformation system for Brassica carinata L. Plant Cell Rep 17:183-188 

  5. Bhuiyan MSU, Min SR, Choi KS, Lim YP, Liu JR (2009) Factors for high frequency plant regeneration in tissue cultures of Indian mustard (Brassica juncea L.). J Plant Biotechnol 36:137-143 

  6. Burnett L, Arnoldo M, Yarrow S, Huang B (1994) Enhancement of shoot regeneration from cotyledon explants of Brassica rapa spp oleifera through pretreatment with auxin and cytokinin and use of ethylene inhibitors. Plant Cell Tiss Org Cult 37:253-256 

  7. Cardoza V, Stewart CN (2004) Brassica biotechnology: Progress in cellular and molecular biology. In Vitro Cell Dev Biol- Plant 40:542-551 

  8. Guo DP, Zhu ZJ, Hu XX, Zheng SJ (2005) Effect of cytokinins on shoot regeneration from cotyledon and leaf segment of stem mustard (Brassica juncea var. tsatsai). Plant Cell Tiss Organ Cult 83:123-127 

  9. Haberlandt G (1902) Kulturversuche mit isolierten Pflanzenzellen Sitz. Akad Wiss Wien 111:69-92 

  10. Hemingway JS (1976) Mustards, Brassica spp. and Sinapis alba (Cruciferae) In: Simmonds NW, (eds), Evolution of Crop Plants, Longman, New York, pp 19-21 

  11. Keresa S, Mihovilovic A, Baric M, Jercic IH (2011) Efficient plant regeneration of Begonia semperflorens and Begonia spp. from petiole and leaf explants. JFAE 9:240-244 

  12. Kim H, Kim JY, Kim HJ, Kim DK, Jo HJ, Han BS, Kim HW, Kim JB (2011) Anticancer activity and quantitative analysis of Glucosinolates from green and red leaf mustard. Korea J Food & Nutr 24:362-366 

  13. Kumar N, Reddy MP (2010) Plant regeneration through the direct induction of shoot buds from petiole explants of Jatropha curcas: a biofuel plant. Ann Appl Biol 156:367-375 

  14. Lu CY (1993) The use of thidiazuron in tissue culture. In Vitro Cell Dev Biol 29:92-96 

  15. Maheshwari P, Selvaraj G, Kovalchuk I (2011) Optimization of Brassica napus (canola) explants regeneration for genetic transformation. Nature Biotechnology 29:144-155 

  16. Mithen R (2001) Glucosinolates-biochemistry, genetics and biological activity. Plant Growth Regulation 34:91-103 

  17. Moloney MM, Walker JM, Sharma KK (1989) High efficiency transformation of Brassica napus using Agrobacterium vectors. Plant Cell Rep 8:238-242 

  18. Muller C, Sieling N (2006) Effects of glucosinolates and myrosinase levels in Brassica juncea on a glucosinolates- sequestering herbivore-and vice versa. Chemioecology 16:191-201 

  19. Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:473-493 

  20. Murthy BNS, Murch SJ, Saxena PK (1998) Thidiazuron: A potent regulator of in vitro plant morphogenesis. In Vitro Cell Dev Biol Plant 34:267-275 

  21. Nada S, Chennareddy S, Goldman S (2011) Direct shoot bud differentiation and plantlet regeneration from leaf and petiole explants of Begonia tuberhybrida. HortSceince 46:759-764 

  22. Oram RN, Kirk JTO, Veness PE, Hurlstone CJ, Edlington JP,Halsall DM (2005) Breeding Indian mustard (Brassica juncea(L.) Czern.) for cold-pressed, edible oil production-a review. Aust J Agr Res 56:581-596 

  23. Park SH, Choi SI, Park JB, Han HK, Bae SD, Sung IJ, Park ER (2011) Phytoremediation on the heavy metal contaminated soil by hyperaccumulators in the greenhouse. J Soil & Groundwater Env 16:1-8 

  24. Potts DA, Rakow GW, Males DR (1999) Canola-Quality Brassica juncea, a New Oilseed Crop for the Canadian Prairies. Proceedings of the 10th International Rapeseed Congress, Canberra, Australia 

  25. Radke SE, Turner JC, Facciotti D (1992) Transformation and regeneration of Brassica rapa using Agrobacterium tumefaciens. Plant Cell Rep 11:499-505 

  26. Raskin I, Smith RD, Salt DE (1997) Phytoremediation of metals: using plants to remove pollutants from the environment. Curr Opin Biotech 8:221-226 

  27. Roh KH, Kwak BK, Kim HU, Lee KR, Kim SH, Suh MC, Kim H, Kim JB (2011) Production of transgenic plants in Brassica napus winter cultivar 'Youngsan'. J Appl Biol Chem 54:26-32 

  28. Roh KH, Kwak BK, Kim JB, Lee KR, Kim HU, Kim SH (2012) The influence of silver thiosulfate and thidiazuron on shoot regeneration from cotyledon explants of Brassica napus. J Plant Biotechnol 39:133-139 

  29. Schilperoort RA, Veldstra H, Warnaar SQ, Mulder G, Cohen JA (1967) Formation of complexes between DNA isolated from tobacco crown gall tumours and complementary to Agrobacterium tumefaciens DNA. Biochim Biophys Acta 145:523-525 

  30. Spect CE, Diederichsen A (2001) Brassica. In: Hanelt P, (eds), Mansfeld's Encyclopedia of Agricultural and Horticultural Crops, Vol. 6, Springer-Verlag, Berlin, pp 1453-1456 

  31. Takagi H, Sugawara S, Saito T, Tasaki H, Yuanxue L, Kaiyun G, Han DS, Godo T, Nakano M (2011) Plant regeneration via direct and indirect adventitious shoot formation and chromosome- doubled somaclonal variation in Titanotrichum oldhamii (Hemsl.) Solereder. Plant Biotechnol Rep 5:187-195 

  32. Tang GX, Zhou WJ, Li HZ, Mao BZ, He ZH, Yoneyama K (2003) Medium, explants and genotype factors influencing shoot regeneration in oilseed Brassica spp. J Agronomy & Crop Science 189:351-358 

  33. van Staden J, Zazimalova E, George EF (2008) Plant growth regulators II: Cytokinins, their analogues and antagonists. In Geroge EF, Hall MA, De Kerke GJ, (eds), Plant propagation by tissue culture, Ed 3, Vol. 1, Springer, Dordrecht, pp 205-226 

  34. Wright PR, Morgan JM, Jessop RS (1997) Turgor maintenance by osmoregulation in Brassica napus and B. juncea under field conditions. Ann Bot 80:313-319 

  35. Yang M, Lee M (2008) Rhizofiltration process with Helianthus annuss L., Phaseolus vulgaris var., and Brassica juncea (L.) Czern. to remediate uranium contaminated groundwater. J KoSSGE 13:30-39 

  36. Zhang FL, Takahata Y, and Xu JB (1998) Medium and genotype factors influencing shoot regeneration from cotyledonary explants of Chinese cabbage (Brassica campestris L. ssp. pekinensis). Plant Cell Rep 17:780-786 

  37. Zhang Y, Talalay P, Cho CG, Posner GH (1992) A major inducer of anticarcinogenic protective enzymes from broccoli: Isolation and elucidation of structure. Proc Natl Acad Sci 89:2399-2403 

  38. Zhao J, Cui J, Liu J, Liao F, Henny RJ, Chen J (2012) Direct somatic embryogenesis from leaf and petiole explants of Spathiphyllum 'Supreme' and analysis of regenerants using flow cytometry. Plant Cell Tiss Org Cult 110:239-249 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

유발과제정보 저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로