[국내논문]생장조절제와 프라이밍 처리에 의한 지치종자의 발아특성과 단백질 발현 양상에 관한 연구 Studies on Seed Germination Characteristics and Patterns of Protein Expression of Lithospermum erythrorhizon by Plant Growth Regulators and Seed Primings원문보기
This study was conducted to investigate the quality of seeds, the germination rates and the days required for germination, to examine the patterns of protein expressions during the germination and to improve the techniques of managing and storing seeds and viability of the seeds of Lithospermum eryt...
This study was conducted to investigate the quality of seeds, the germination rates and the days required for germination, to examine the patterns of protein expressions during the germination and to improve the techniques of managing and storing seeds and viability of the seeds of Lithospermum erythrorhizon Sieb. et Zucc. After collecting and harvesting seeds, they were classified to white and brown colors of seed coat through testing their seed size, weight, and quality. The germination rates, the days required for germination, and the protein expressions were examined with different colors of seed coats, storing temperatures and durations by treating the different plant growth regulators and primings. One hundred seed weight of white color was heavier about 1.17 g than those of brown one about 0.81 g. The germination rates in white color of seed coat was higher, 3.05 ~ 5.75%, than those in brown one. Its rates were decreased with getting longer in storage durations. There was no big differences on germination rates between storage temperatures. The plant growth regulator of $GA_3$ and Kinetin was affected to improve the seed germination. $GA_3$ increased the seed germination clearly at 25 ppm level, while kinetin increased it gradually from 25 to 100 ppm levels. In germination by seed primings, PEG6000 made higher germination rate with increasing their levels, whereas $KNO_3$ increased the germination until 100 mM level and then decreased it with 200 mM unlike PEG6000. The protein expressed during the seed germination were appeared more and clearer bands in the seed after germination, especially 20 ~ 30 kDa, compared to those in the seed before germination. These results showing more and clearer bands were positively related to the germination rates which were different by seed colors, storage temperatures and durations, and plant growth regulators and primings.
This study was conducted to investigate the quality of seeds, the germination rates and the days required for germination, to examine the patterns of protein expressions during the germination and to improve the techniques of managing and storing seeds and viability of the seeds of Lithospermum erythrorhizon Sieb. et Zucc. After collecting and harvesting seeds, they were classified to white and brown colors of seed coat through testing their seed size, weight, and quality. The germination rates, the days required for germination, and the protein expressions were examined with different colors of seed coats, storing temperatures and durations by treating the different plant growth regulators and primings. One hundred seed weight of white color was heavier about 1.17 g than those of brown one about 0.81 g. The germination rates in white color of seed coat was higher, 3.05 ~ 5.75%, than those in brown one. Its rates were decreased with getting longer in storage durations. There was no big differences on germination rates between storage temperatures. The plant growth regulator of $GA_3$ and Kinetin was affected to improve the seed germination. $GA_3$ increased the seed germination clearly at 25 ppm level, while kinetin increased it gradually from 25 to 100 ppm levels. In germination by seed primings, PEG6000 made higher germination rate with increasing their levels, whereas $KNO_3$ increased the germination until 100 mM level and then decreased it with 200 mM unlike PEG6000. The protein expressed during the seed germination were appeared more and clearer bands in the seed after germination, especially 20 ~ 30 kDa, compared to those in the seed before germination. These results showing more and clearer bands were positively related to the germination rates which were different by seed colors, storage temperatures and durations, and plant growth regulators and primings.
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문제 정의
따라서 본 연구는 지치의 개화 수분수정 후 등숙 정도에 따른 종자의 품질을 평가 구분하고 저장 온도와 기간에 따른 종자의 활력, 발아율 및 평균발아일수를 조사하였고, 발아율과 입모율을 높이기 위한 방법으로 생장조절제와 프라이밍의 효과를 구명하며, 이와 관련된 단백질 발현 양상을 비교분석하여 안정적인 지치의 재배법 확립에 필요한 기초 및 응용 자료를 얻기 위하여 수행하였다.
제안 방법
SDS-PAGE는 소형전기영동장치 (Dual gel vertical unit, Sigma, St. Louis, MO, USA)를 이용하여 실시하였고, 전기 영동시 gel은 15%의 running gel (30% acryl/bis-acryl, 1.5 M Tris-HCl/pH 8.8, 10% SDS, TEMED, 10% ammoniumpersulfate)과 5% stacking gel (30% acryl/bisacryl, 1 MTris-HCl/pH 6.8, 10% SDS, TEMED, 10%ammoniumpersulfate)이며, running buffer (0.192 M glycine, 25 mM Tris/HCl, 0.1% SDS)는 pH 8.3을 맞추어 사용하였다. Sample buffer로 laemmlie buffer (4% SDS, 20% glycine, 10% 2-mercaptoethanol, 0.
지치 종자의 발아 온도는 25℃로 유지되었고, 조사기간 중 종자가 건조되지 않도록 수분을 보충하였다. 각 처리별 발아 시험은 25립씩 4반복으로 수행되었으며, 발아율과 평균 발아일수는 치상 직후부터 치상 후 30일까지 지치의 유근이 1 ㎜ 이상 자란 개체수를 조사하여 측정하였다.
발아 시험 이후 발아된 종자와 발아되지 않은 종자를 구분하여 냉동 보관한 후 냉동 보관된 시료 0.5 g을 액화질소를 이용하여 곱게 마쇄한 후, protein extraction buffer(50 mM Tris-HCl, 5% SDS, 1 mM PMSF, 1 ㎛ pepstatin, 0.01% bathophenonthroline; pH 8.0)를 1 ㎖를 첨가하여 얼음 위에서 1시간 정도 균질화한 후, 14,000 rpm에서 10분간 2회 원심 분리하여 상등액을 취하고, 상등액으로 수용성 단백질을 분석하였다.
발아 시험은 저장된 지치 종자를 식물생장조절제와 프라이밍 처리를 1일 한 후 실험을 진행하였다. 식물생장조절제 처리는 GA3과 Kinetin을 각각 0, 25, 50, 100 ppm 농도별로 처리를 하고, 프라이밍 처리는 Poly Ethylene Glycol (PEG) 6000과 KNO3처리를 하였는데, PEG 6000은 각각 0, −0.
식물생장조절제 처리는 GA3과 Kinetin을 각각 0, 25, 50, 100 ppm 농도별로 처리를 하고, 프라이밍 처리는 Poly Ethylene Glycol (PEG) 6000과 KNO3처리를 하였는데, PEG 6000은 각각 0, −0.5, −1.0, −2.0 ㎫ 농도별로 처리를 하였고, KNO3은 각각 0, 50, 100, 200 mM 농도별로 처리를 하였다.
0 ㎫ 농도별로 처리를 하였고, KNO3은 각각 0, 50, 100, 200 mM 농도별로 처리를 하였다. 식물생장조절제와 프라이밍 처리된 종자는 1% NaOCI 용액에 10분간 소독한 다음 멸균수로 5분씩 3회 세척한 후 사용하였으며, 9 ㎝ petri-dish에 탈지면을 깔고 멸균수를 5 ㎖ 첨가한 다음 종자를 치상하였다. 지치 종자의 발아 온도는 25℃로 유지되었고, 조사기간 중 종자가 건조되지 않도록 수분을 보충하였다.
전기영동시 전압은 80 ㎃로 평균 5시간하였으며, 전기영동이 끝난 후 gel은 Coomassie brilliant R250법을 이용하여 염색을 하였다. 염색용액 (0.001% Brilliant R250, 45% methanol, 10% acetic acid, 45% DW)을 사용하여 12시간 정도 염색과정을 거친 후 탈색용액 (40% methanol, 10% acetic acid, 50% DW)을 1시간씩 2~3회 정도 탈색한 후 단백질 밴드의 발현 양상을 비교하였다.
지치 종자의 저장방법에 따른 종자 발아력을 검증하기 위하여 스티로폼 박스 (가로 × 세로 × 높이: 257 × 257 × 270 ㎜)에 종자를 저장하였다. 저장온도를 4℃와 25℃의 2가지 조건으로 하였으며, 4℃는 냉장고, 25℃는 생장조절실을 이용하여 온도를 유지하였다. 종자의 저장기간은 2월 27일부터 저장하여 155일후인 7월 29일에 1차 실험을 진행하였고, 이후 15일 간격으로 총 5회 발아시험을 진행 하였다.
저장온도를 4℃와 25℃의 2가지 조건으로 하였으며, 4℃는 냉장고, 25℃는 생장조절실을 이용하여 온도를 유지하였다. 종자의 저장기간은 2월 27일부터 저장하여 155일후인 7월 29일에 1차 실험을 진행하였고, 이후 15일 간격으로 총 5회 발아시험을 진행 하였다.
지치 종자의 저장방법에 따른 종자 발아력을 검증하기 위하여 스티로폼 박스 (가로 × 세로 × 높이: 257 × 257 × 270 ㎜)에 종자를 저장하였다.
대상 데이터
본 시험에 이용한 지치 종자는 제천의 재배농가에서 증식되고 있던 식물체를 2012년에 채종하고, 이후 실외 보관 중이던 종자를 2013년 2월 27일에 분양받아 재배하면서 수분수정후 등숙 시기가 진전됨에 따라 종피색이 갈색에서 흰색으로 되므로 종피색을 갈색과 흰색으로 나누고 종피색별 종자의 성숙 정도를 구분하여 시험재료로 사용하였다.
데이터처리
조사한 발아율, 평균발아일수는 SAS (Statistical Analysis System) software package (SAS 9.1.3, SAS Institute Inc., Cary, NC, USA)를 이용하여 통계분석 하였다.
이론/모형
각각의 well당 loading량은 step-view 10 Kd size marker (prestained, elpls biotech)는 7 ㎕, sample은 80 ㎍을 넣었다. 전기영동시 전압은 80 ㎃로 평균 5시간하였으며, 전기영동이 끝난 후 gel은 Coomassie brilliant R250법을 이용하여 염색을 하였다. 염색용액 (0.
성능/효과
GA3의 경우 25 ppm 수준에서도 발아율을 뚜렷하게 향상시키며, 농도가 높아질수록 발아율이 높아지는 경향을 보였다. Kinetin처리에서도 농도가 높아질수록 발아율이 높아지는 경향을 보였는데, GA3와는 달리 25 ppm에서 100 ppm처리 수준까지 일정한 효과를 보이며 발아율이 증가하여 Kinetin 100 ppm 수준에서 가장 높게 나타나 Kinetin 수준을 더 높이면 발아율이 더 증가할 수 있는 것으로 판단된다. 지치 종자의 채취 후 저장기간별로 GA3와 Kinetin효과를 비교해 보면 두 식물생장조절제 모두 발아율 향상에 좋은 효과가 있었으며, 저장 기간이 길어질수록 그 효과는 감소되는 것으로 나타났다.
지치 종자의 채취 후 저장기간별로 GA3와 Kinetin효과를 비교해 보면 두 식물생장조절제 모두 발아율 향상에 좋은 효과가 있었으며, 저장 기간이 길어질수록 그 효과는 감소되는 것으로 나타났다. 또한 GA3 처리에서는 25 ppm 수준으로 처리하여도 발아율에 좋은 효과가 나타났다. 이는 Kim 등 (1997)에 따르면 초피나무 종자의 경우 GA3은 침지 시간과 농도가 높을수록 발아율이 높아지는 경향이였고, Kinetin도 발아율은 양호하였으나 GA3보다 낮은 발아율을 보였다는 결과와 유사한 결과이나 본 연구에서는 GA3은 25 ppm 수준에 큰 효과가 있다는 결과와 Kinetin에서는 100 ppm 수준까지 처리 농도가 높을수록 발아율이 증가되는 결과와 다르게 나타나 초피나무와 지치 종자의 GA3와 Kinetin에 대한 반응이 약간 다름을 알 수 있었다.
5와 같다. 발아 전 종자와 발아된 종자 사이의 단백질 발현 양상은 분리된 전 분자량에서 차이를 보였는데, 특히 20 ~ 30 kDa에서 발아된 종자가 발아 전 종자보다 더 많은 단백질 밴드가 나타났고, 같은 위치에서 4℃와 25℃는 발현 양상이 크게 차이가 나지 않지만 흰색 종자와 갈색 종자에서는 흰색 종자에서 더 많은 단백질 밴드가 나타나 등숙 정도가 좋고 발아력이 왕성한 종자에서 단백질 발현이 더 다양함을 알 수 있었다. 저장 기간에 따른 단백질 발현 양상은 저장 기간이 길어질수록 단백질 밴드가 더 희미하고 밴드수가 적게 나타나 저장기간이 길어질수록 발아율이 낮아지는 경향과 일치하는 것으로 판단된다.
6과 같다. 발아 전 종자와 발아된 종자 사이의 단백질 발현 양상은 종자의 종피색 과 저장기간에 따라 나타났던 단백질 발현 양상과 비슷한 결과로 나타났으며, 식물생장조절제 GA3과 Kinetin 처리간의 단백질 발현 양상은 GA3처리가 Kinetin 처리보다 단백질 밴드가 더 선명하고 밴드의 수가 다양한 것으로 나타나 지치 종자의 발아율이 좀 더 효과적이었던 GA3처리구에서 단백질 발현이 더 뚜렷하고 다양함을 알 수 있었다. 종자 프라이밍 PEG6000과 KNO3처리간의 단백질 발현 양상도 발아 종자에서 발아 전 종자보다 밴드의 수와 밴드색이 진하게 나타나 발아과정에서 단백질 발현이 많이 일어남을 알 수 있으며, 단백질의 발현 정도가 지치 종자의 발아율에도 영향을 미치는 것으로 판단된다.
3과 같다. 식물생장조절제 GA3와 Kinetin의 농도를 4개 수준으로 다르게 처리하여 발아율을 비교한 결과 대조구와 비교할 때 발아율을 높게 해주는 효과를 나타냈다. GA3의 경우 25 ppm 수준에서도 발아율을 뚜렷하게 향상시키며, 농도가 높아질수록 발아율이 높아지는 경향을 보였다.
저장 기간은 길어질수록 발아율이 낮아지므로 채종 후 다년간 저장하여 파종하는 것보다 채종 당해에 파종하는 것이 발아율을 높일 수 있는 것으로 나타났다. 식물생장조절제 처리를 할 경우 다른 작물들과 달리 지치는 Kinetin처리보다 GA3처리를 하게 되면 낮은 농도에서도 발아율이 높아지고 100 ppm까지는 농도가 높을수록 발아율도 높아지며, 프라이밍 처리를 할 경우 KNO3 처리보다 PEG6000을 처리할 경우 농도가 높아질수록 발아율도 높아졌다.
저장 기간에 따른 단백질 발현 양상은 저장 기간이 길어질수록 단백질 밴드가 더 희미하고 밴드수가 적게 나타나 저장기간이 길어질수록 발아율이 낮아지는 경향과 일치하는 것으로 판단된다.
지치 종자의 발아율 향상을 위한 실험결과를 요약하면 채종의 경우 종자 품질과 직접적으로 관련되어 종피색이 흰색일 때 채종하는 것이 발아율 향상에 효과적이며, 저장온도별로는 4℃ 저장보다 25℃ 저장이 약간 높은 발아율이 나타나 저장 온도 조건에 따른 차이는 크지 않았다. 저장 기간은 길어질수록 발아율이 낮아지므로 채종 후 다년간 저장하여 파종하는 것보다 채종 당해에 파종하는 것이 발아율을 높일 수 있는 것으로 나타났다. 식물생장조절제 처리를 할 경우 다른 작물들과 달리 지치는 Kinetin처리보다 GA3처리를 하게 되면 낮은 농도에서도 발아율이 높아지고 100 ppm까지는 농도가 높을수록 발아율도 높아지며, 프라이밍 처리를 할 경우 KNO3 처리보다 PEG6000을 처리할 경우 농도가 높아질수록 발아율도 높아졌다.
저장기간에 따른 평균발아일수는 종자 처리구 모두에서 고도의 유의성을 보였으며, 저장 기간이 길수록 평균발아일수가 큰 차이는 아니지만 길어지는 것으로 나타냈다. 저장 온도별 지치 종자의 평균발아일수는 모든 처리구에서 유의성을 나타내지 않았으며, 뚜렷한 경향도 없었다.
종피색에 따른 평균발아일수는 GA3와 PEG6000처리구에서는 고도의 유의성을 보였으며, KNO3처리구에서는 유의성을 보이지 않았고, 흰색 종자의 평균발아일수는 갈색 보다 1~2일정도 더 빠르게 나타났다. 저장기간에 따른 평균발아일수는 종자 처리구 모두에서 고도의 유의성을 보였으며, 저장 기간이 길수록 평균발아일수가 큰 차이는 아니지만 길어지는 것으로 나타냈다. 저장 온도별 지치 종자의 평균발아일수는 모든 처리구에서 유의성을 나타내지 않았으며, 뚜렷한 경향도 없었다.
발아 전 종자와 발아된 종자 사이의 단백질 발현 양상은 종자의 종피색 과 저장기간에 따라 나타났던 단백질 발현 양상과 비슷한 결과로 나타났으며, 식물생장조절제 GA3과 Kinetin 처리간의 단백질 발현 양상은 GA3처리가 Kinetin 처리보다 단백질 밴드가 더 선명하고 밴드의 수가 다양한 것으로 나타나 지치 종자의 발아율이 좀 더 효과적이었던 GA3처리구에서 단백질 발현이 더 뚜렷하고 다양함을 알 수 있었다. 종자 프라이밍 PEG6000과 KNO3처리간의 단백질 발현 양상도 발아 종자에서 발아 전 종자보다 밴드의 수와 밴드색이 진하게 나타나 발아과정에서 단백질 발현이 많이 일어남을 알 수 있으며, 단백질의 발현 정도가 지치 종자의 발아율에도 영향을 미치는 것으로 판단된다. 지치 종자의 충실도와 발아율과 관련하여 저장 온도 그리고 생장조절제와 프라이밍처리에 따라 단백질 발현 차이가 나타나 이에 대한 연구는 앞으로 더 구체적으로 이루어져야 할 것으로 사료된다.
4와 같다. 종자 프라이밍 처리는 PEG6000과 KNO3의 4개 수준으로 농도를 각각 다르게 처리하여 발아율을 비교한 결과 PEG6000과 KNO3 모두 대조구와 비교하였을 때 발아율이 높았으며 PEG6000은 농도가 높아질수록 발아율이 높아지는 경향을 보였고, KNO3은 100 mM 농도까지는 발아율이 높아졌으나 200 mM에서는 오히려 낮아지는 것으로 나타났다. PEG6000처리는 지치종자의 저장기간별 발아율 차이를 보였는데, 저장 170일까지는 처리 농도가 높을수록 발아율이 증가되었으나 185일 이후에는 처리 수준별 차이가 뚜렷하지 않았다.
수분수정후 등숙 정도에 따라 종피색이 다른 흰색과 갈색의 지치 종자를 저장기간과 온도를 달리하여 저장한 후 식물생장 조절제와 종자 프라이밍 처리를 하여 평균발아일수를 비교한 결과는 Table 1과 같다. 종피색에 따른 평균발아일수는 GA3와 PEG6000처리구에서는 고도의 유의성을 보였으며, KNO3처리구에서는 유의성을 보이지 않았고, 흰색 종자의 평균발아일수는 갈색 보다 1~2일정도 더 빠르게 나타났다. 저장기간에 따른 평균발아일수는 종자 처리구 모두에서 고도의 유의성을 보였으며, 저장 기간이 길수록 평균발아일수가 큰 차이는 아니지만 길어지는 것으로 나타냈다.
지치 종자도 채종 후 저장기간이 경과할수록 발아율이 계속 낮아지는 것은 벼와 발아율이 낮아지는 면에서 비슷하였으며, 종자 등숙 정도로 나타나는 종피색이 발아율에 크게 영향을 미쳐 수분 수정후 채종시기를 적절히 맞추는 것이 중요한 것으로 판단된다.
지치 종자의 발아율 향상을 위한 실험결과를 요약하면 채종의 경우 종자 품질과 직접적으로 관련되어 종피색이 흰색일 때 채종하는 것이 발아율 향상에 효과적이며, 저장온도별로는 4℃ 저장보다 25℃ 저장이 약간 높은 발아율이 나타나 저장 온도 조건에 따른 차이는 크지 않았다. 저장 기간은 길어질수록 발아율이 낮아지므로 채종 후 다년간 저장하여 파종하는 것보다 채종 당해에 파종하는 것이 발아율을 높일 수 있는 것으로 나타났다.
2와 같다. 지치 종자의 종피색에 의한 발아율은 등숙이 잘된 흰색 종자가 미등숙 갈색 종자보다 모두 높게 나타났다. 흰색 종자와 갈색종자의 발아율 차이는 3.
75%로 저장기간이나 저장 조건에 따라 다르게 측정 되었지만, 모두 흰색 종자가 높게 측정 되었다. 지치 종자의 채종 후 저장 기간을 달리하여 발아율을 조사한 결과는 저장 기간이 길어질수록 발아율은 낮아지는 경향을 보였으며, 저장온도 4℃와 25℃에서 큰 차이를 보이지 않았다. 벼 종자의 경우 종자 발아율은 저장기간이 길어짐에 따라 낮아졌는데, 이는 알카리 붕괴도와 단백질 함량의 감소, 당의 함량변화 등 종자내의 이화학적 성분이 변화함으로써 종자 발아율을 감소하는 것이라고 보고하였다 (Kim et al.
Kinetin처리에서도 농도가 높아질수록 발아율이 높아지는 경향을 보였는데, GA3와는 달리 25 ppm에서 100 ppm처리 수준까지 일정한 효과를 보이며 발아율이 증가하여 Kinetin 100 ppm 수준에서 가장 높게 나타나 Kinetin 수준을 더 높이면 발아율이 더 증가할 수 있는 것으로 판단된다. 지치 종자의 채취 후 저장기간별로 GA3와 Kinetin효과를 비교해 보면 두 식물생장조절제 모두 발아율 향상에 좋은 효과가 있었으며, 저장 기간이 길어질수록 그 효과는 감소되는 것으로 나타났다. 또한 GA3 처리에서는 25 ppm 수준으로 처리하여도 발아율에 좋은 효과가 나타났다.
36 g 정도 더 무거운 것으로 나타났다. 지치의 경우 개화와 수분 수정 후 종자 등숙이 이루어지는 시기가 더 진전 될수록 종피색이 갈색에서 흰색으로 변화되는 것으로 조사 되었는데, 지치 종자가 등숙 과정이 진전되면서 배유가 충실하여 백립중이 증가하고 종피색이 갈색에서 흰색으로 변화된 것들이 품질이 좋고 건전한 종자들인 것으로 조사되었다.
지치 종자의 종피색에 의한 발아율은 등숙이 잘된 흰색 종자가 미등숙 갈색 종자보다 모두 높게 나타났다. 흰색 종자와 갈색종자의 발아율 차이는 3.05 ~ 5.75%로 저장기간이나 저장 조건에 따라 다르게 측정 되었지만, 모두 흰색 종자가 높게 측정 되었다. 지치 종자의 채종 후 저장 기간을 달리하여 발아율을 조사한 결과는 저장 기간이 길어질수록 발아율은 낮아지는 경향을 보였으며, 저장온도 4℃와 25℃에서 큰 차이를 보이지 않았다.
후속연구
종자 프라이밍 PEG6000과 KNO3처리간의 단백질 발현 양상도 발아 종자에서 발아 전 종자보다 밴드의 수와 밴드색이 진하게 나타나 발아과정에서 단백질 발현이 많이 일어남을 알 수 있으며, 단백질의 발현 정도가 지치 종자의 발아율에도 영향을 미치는 것으로 판단된다. 지치 종자의 충실도와 발아율과 관련하여 저장 온도 그리고 생장조절제와 프라이밍처리에 따라 단백질 발현 차이가 나타나 이에 대한 연구는 앞으로 더 구체적으로 이루어져야 할 것으로 사료된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
지치의 안정적인 재배를 위한 조건은 무엇입니까?
(Korean Research Academy of Preventing Adult Diseases, 2007). 지치의 자생지에 관한 환경생태 조사 내용을 보면 지치의 안정적인 재배를 위해서는 통기성과 배수성이 뛰어나고 적당한 유기물이 함유된 토양조성이 요구되며, 햇빛이 잘 드는 양지가 바람직하다고 보고되었다 (Ahn et al., 2009).
지치란 무엇입니까?
지치 (Lithospermum erythrorhizon Sieb. et Zucc)는 지치과 (Borraginaceae)에 속하는 다년생 초본 식물로서 자초, 자근이라고도 부른다. 우리나라의 전국에 분포하며 예로부터 한 국, 중국과 일본에서 한약재, 식용과 색소로 주로 뿌리를 이용하여 왔으며, 한방에서 혈액순환 촉진, 해열 해독 작용에 주로 이용하거나 토혈, 혈뇨, 변비, 화상, 습진, 요로 감염 등을 치 료하는데 사용하여 왔다 (Seo et al.
지치는 한방에서 어떠한 목적으로 사용되어 왔습니까?
et Zucc)는 지치과 (Borraginaceae)에 속하는 다년생 초본 식물로서 자초, 자근이라고도 부른다. 우리나라의 전국에 분포하며 예로부터 한 국, 중국과 일본에서 한약재, 식용과 색소로 주로 뿌리를 이용하여 왔으며, 한방에서 혈액순환 촉진, 해열 해독 작용에 주로 이용하거나 토혈, 혈뇨, 변비, 화상, 습진, 요로 감염 등을 치 료하는데 사용하여 왔다 (Seo et al., 2008).
참고문헌 (12)
Ahn YH, Jin YH, Choe CY, Lee KY and Lee SH. (2009). Ecological characteristics of Lithospermum erythrorhizon population in habitats. Korean Journal of Pharmacognosy. 40:289-297.
An TJ, Shin KS, Ajn YS, H M and Park CB. (2013). Identification of fungal pathogen causing seedling rot of Lithospermum erythrorhizon and study on the optimum growing temperature for decreasing of the seedling rot. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 21:27-31.
Boo HO, Shin JS, Hwang SJ, Bae CS and Park SH. (2012). Antimicrobial effects and antioxidative activities of the cosmetic composition having natural plant pigments. Korean Journal of Plant Resources. 25:80-88.
Kang HJ, Yoon SY and Jeon SH. (2004). Analysis on practicality of seed treatments for medicinal plants published in korean scientific journals. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 12:328-341.
Kim GS, Park CG, Lee KH, Choi JH, Lee SE, Noh HJ, Lee JH and Kim SY. (2011). Investigation of shikonin pigments and antioxidant activity of the roots from Lithospermum erythrorhizon according to the different growth stages and areas of cultivation. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 19:435-440.
Kim HY, Yang CI, Choi YH, Won YJ and Lee YT. (2007). Changes of seed viabillity and physico-chemical properties of milled rice with different ecotypes and storage duration. Korean Journal of Crop Science. 52:375-379.
Kim JS, Han YS and Kang MH. (2006). Identification of shikonin and its derivatives form Lithospermum erythrorhizon. Korean Journal of Food and Nutrition. 35:177-181.
Kim SJ, Shin JH, Kim KJ, Park SD, Choi BS and Kim KU. (1997). Effect of $GA_3$ , kinetin and physical treatment on the seed germination of Zanthoxylum piperitum A.P. DC. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 5:43-48.
Korean Research Academy of Prevent Adult Disease. (2007) The encyclopedia of medicinal herb, and drugs. Itembooks. Seoul, Korea. p.319
Lee SC, Park MS and Bae CH. (2002). Germination characteristics of peg priming seed in barley. Korean Journal of Plant Resources. 15:18-25.
Seo BI, LEE JH, Choi HY Kwon DY and Boo YM. (2008) Herbology of oriental medicine. Younglimsa. Seoul, Korea. p.240-242.
Seo YC, Kim JS, KimYo, Kim JC and Lee HY. (2013). Immune activity of Lithospermum erythrorhizon extracted by extreme low temperature extraction process. Korean Journal of Medicinal Crop Science. 21:105-111.
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