$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

식물 코팅 소재 선발법과 작물들에 대한 콩 오일의 증산 억제 효과
Screening Methods for Plant-Coating Materials and Transpiration Inhibitory Effect of Soybean Oil to Crops 원문보기

韓國資源植物學會誌 = Korean journal of plant resources, v.27 no.4, 2014년, pp.380 - 391  

정인홍 ((주)나리소 연구개발팀) ,  박노봉 (국립식량과학원 영덕출장소) ,  김상열 (국립식량과학원 영덕출장소) ,  나영은 (국립농업과학원) ,  김순일 ((주)나리소 연구개발팀)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

작물을 비롯한 식물체들은 작물 생산량 감소에 중요한 요인인 고온 건조풍에 의해 영향을 받는다. 이러한 영향으로부터 식물체들을 보호할 수단으로 코팅재를 고려할 수 있다. 이 연구에서 다양한 요인들에 의해 일어나는 급격한 증산작용으로부터 작물을 보호할 코팅소재를 탐색하기 위한 실내 선발법들을 확립했다. 강낭콩 유묘 포트의 무게 변화를 6일 동안 측정한 시험에서 아비온 처리구는 무처리구에 비해 유의하게 무게 감소를 억제하였다(P = 0.05). 하지만 이 방법은 장시간이 소요되는 단점이 있어 보다 단순한 방법으로 염화코발트지가 수분 접촉 시 푸른색에서 붉은색으로 변화는 색 변화법을 이용하였다. 밀납, 구아검, 유동파라핀, 콩오일 및 PE-635가 처리 30분 및 1시간 후 각각 37%와 43%의 방수력을 나타냈다. 하지만 이들 소재들도 2시간 후에는 유의할만한 방수효과를 보이지 않았다. 비록 이들 방법들이 코팅 소재를 탐색하는데 적절하다 할지라도, 보다 과학적이고 객관적인 자료들을 도출해 낼 선발법이 필요하다. 그래서 고안한 방법이 광합성측정기를 이용하여 증산율을 측정하는 방법이었다. 야외에서 재배한 보리 잎을 이용한 시험에서 2% 콩오일과 아비온 10배 희석액 처리가 증산율 억제효과를 나타냈다. 또한 옥수수 유묘 및 살구나무 신초를 이용한 시험에서 2% 유동파라핀액과 살구씨오일, 아마씨오일, 올리브오일 및 콩오일과 같은 식물체 정유들이 유의할만한 증산율 억제효과를 나타냈다(P = 0.05). 특히, 유동파라핀 및 콩오일 2%를 출수 후 2주 이상된 벼에 처리하였을 때 비슷한 증산율 억제력을 보였다. 또한 2% 콩오일과 전착제 혼합물을 옥수수 유묘에 처리 시 전착제 단독으로 처리한 것에 비해 증산율 억제효과가 증가했다. 이는 전착제가 식물체 잎 표면에서 이들 소수성 소재들이 보다 더 균일하게 확산하는데 도움을 주기 때문으로 보인다. 이 소수성 소재가 잎 표면의 기공들을 효과적으로 잘 도포하고 있음도 전자현미경으로 확인하였다. 이상의 결과는 이들 소수성 소재들이 식물체 코팅재로서 활용될 수 있음을 시사한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Plants as well as crops are damaged by a combination of the hot and dry winds that has been a major factor in the reduction of crop production. A means to protect them from damaging conditions is to consider a coating material. In this study, we established laboratory screening methods to find a coa...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

문제 정의

  • 작물이 잎을 통해 수분을 손실하는 기작이 무생물적 또는 내적 스트레스 요인들에 기인할지라도, 작물 줄기 및 잎을 물리적으로 코팅해서 기공을 통한 급격한 수분 손실을 줄일 수 있는 수단이 개발된다면 수분 스트레스에 의한 작물 생산성 감소를 예방하는데 도움을 줄 수 있을 것으로 생각한다. 본 연구는 식물 오일을 비롯한 계면활성제들 그리고 소수성 고분자물질들을 활용하여 작물 줄기 및 잎에 코팅 가능한 소재를 탐색할 수 있는 방법과 소재를 찾기 위해 수행되었다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
전착제란 무엇인가? 전착제는 농약 살포액 조제 시 첨가하여 살포약액의 습전성과 부착성을 향상시킬 목적으로 사용하는 보조제로 계면활성 제도 전착제로서 효과를 나타내기도 한다(SCCDA, 2005). 농약 혼합물 내 보조제들의 사용은 병해충 방제 목적 및 습윤이 어려운 작물들에서 농약 효용성을 증대시키기 위한 효과적인 수단으로 알려져 있다(Stock, 1998; Young et al.
조직 증산은 언제 일어나는가? 이러한 변화들은 대개 조직 증산의 산물들인데(Dobra et al., 2010; Kacperska, 2004), 조직 증산은 뿌리의 수분 흡수 및 잎의 증산작용 간 불균형이 존재할 때 일어난다(Aroca et al., 2001; Jackson et al.
식물은 스트레스로 야기된 생장 저해에 대처하기 위해 무엇을 진화시켰는가? 식물은 환경적인 제한요인들로부터 도망칠 수 없는 고착성 생물이어서 외부적인 스트레스들에 대처하기 위해 삼투 조절, 저항성 유전자 발현, 식물 호르몬들의 복합적인 반응 경로와 같은 수많은 적응 반응들을 진화시켰다(Ha et al., 2014; Morgan, 1984; Wen et al.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (46)

  1. Al Afas, N., N. Marron and R. Ceulemans. 2006. Clonal variation in stomatal characteristics related to biomass production of 12 poplar (Populus) clones in a short rotation coppice culture. Environ. Exp. Bot. 58:279-286. 

  2. Aroca, R. 2006. Exogenous catalase and ascorbate modify the effects of abscisic acid (ABA) on root hydraulic properties in Phaseolus vulagris L. plants. J. Plant Growth Regul. 25:10-17. 

  3. Aroca, R, F. Tognoni, J.J. Irigoyen, M. Sanchez-Diaz and A. Pardossi. 2001. Different root low temperature response of two maize genotypes differing in chilling sensitivity. Plant Physiol. Biochem. 39:1067-1073. 

  4. Aroca, R., R. Porcel and J.M. Ruiz-Lozano. 2007. How does arbuscular mycorrhizal symbiosis regulate root hydraulic properties and plasma membrane aquaporins in Phaseolus vulgaris under drought, cold or salinity conditions? New Phytol. 173:808-816. 

  5. Aroca, R., R. Porcel and J.M. Ruiz-Lozano.2012.Regulation of root water uptake under abiotic stress conditions. J. Exp. Bot.63(1):43-57. 

  6. Bittelli, M., M. Flury, G.S. Campbell and E.J. Nichols. 2001. Reduction of transpiration through foliar application of chitosan. Agr. Forest Meteorol. 107:167-175. 

  7. Bouchabke-Coussa, O., M.L. Quashie, J. Seoane-Redongo, M.N. Fortabat, C. Gery, A. Yu, D. Linderme, J. Trouverie, F. Granier, E. Teoule and M. Durand-Tardif. 2008. ESKIMO1 is a key gene involved in water economy as well as cold acclimation and salt tolerance. BMC Plant Biol. 8:125. 

  8. Bussis, D., U. Von Groll, J. Fisahn and T. Altman. 2006. Stomatal aperture can compensate altered stomatal density in Arabidopsis thaliana at growth light conditions. Funct. Plant Biol. 33:1037-1043. 

  9. Christmann, A., E.W. Weiler, E. Steudle and E. Grill. 2007. A hydraulic signal in root-to-shoot signaling of water shortage. Plant J. 52:167-174. 

  10. Davenport, D.C., R.M. Hagan and P.E. Martin. 1969. Antitranspirants-uses and effects on plant life. California Agric. 23(5): 14-16. 

  11. Dobra, J., V. Motyka, P. Dobrev, J. Malbeck, I.T. Prasil, D. Haisel, A. Gaudinova, M. Havlova, J. Gubis and R. Vankova. 2010. Comparison of hormonal responses to heat, drought and combined stress in tobacco plants with elevated proline contents. J. Plant Physiol. 167:1360-1370. 

  12. Domingo, R., A. Perez-Pastor and C. Ruiz-Sanchez. 2002. Physiological responses of apricot plants grafted on two different rootstocks to flooding conditions. J. Plant Physiol. 159:725-732. 

  13. Duggar, B.M and J.S. Cooley. 1914. The effect of surface films and dusts on the rate of transpiration. Ann. Missouri Bot. Gard. 1:1-21. 

  14. Farquhar, G.D. and T.D. Sharkey. 1982. Stomatal conductance and photosynthesis. Ann. Rev. Plant Physiol. 33:317-345. 

  15. Forbes, J.C. and D. Watson, 1992. Plants and water. In Plants in Agriculture, Cambridge University Press, NY (USA). pp. 32-62. 

  16. Franks, P.J. and D.J. Beerling. 2009. Maximum leaf conductance driven by $CO_2$ effects on stomatal size and density over geologic time. Proc. Natl. Acad. Sci. 106(25):10343-10347. 

  17. Gao, X., C. Zou, L. Wang and F. Zhang. 2006. Silicon decreases transpiration rate and conductance from stomata of maize plants. J. Plant Nutr. 29:1637-1647. 

  18. Gaskin, R.E., R.J. Murray, H. Krishna and A. Carpenter. 2000. Effect of adjuvants on the retention of insecticide spray on cucumber and pea foliage. N. Z. Plant Protec. 53:355-359. 

  19. Ha, C.V., M.A. Leyva-Gonzalez, Y. Osakabe, U.T. Tran, R. Nishiyama, Y. Watanabe, M. Tanaka, M. Seki, S. Yamaguchi, N.V. Dong, K. Yamaguchi-Shinozaki, K. Shinozaki, L. Herrera-Estrella and L.S. Tran. 2014. Positive regulatory role of strigolactone in plant responses to drought and salt stress. Proc. Natl. Acad. Sci. 111(2):851-856. 

  20. Haworth, M., J. Heath and J.C. McElwain. 2010. Differences in the response sensitivity of stomatal index to atmospheric $CO_2$ among four genera of Cupressaceae conifers. Ann. Bot. 105(3):411-418. 

  21. Hetherington, A.M. and F.I. Woodward. 2003. The role of stomata in sensing and driving environmental change. Nature 424(6951):901-908. 

  22. Hubbard, R.M., B.J. Bond and M.G. Ryan. 1999. Evidence that hydraulic conductance limits photosynthesis in old Pinus ponderosa trees. Tree Physiol. 19:165-172. 

  23. Jackson, M.B., L.R. Saker, C.M. Crisp, M.A. Else and F. Janowiak. 2003. Ionic and pH signalling from roots to shoots of flooded tomato plants in relation to stomatal closure. Plant Soil 253:103-113. 

  24. Jarvis, P.G. and K.G. McNaughton. 1986. Stomatal control of transpiration: scaling up from leaf to region. Adv. Ecol. Res. 15:1-49. 

  25. Jia, W.S., Y.Q. Wang, S.Q.Zhang and J.H. Zhang. 2002. Saltstress-induced ABA accumulation is more sensitively triggered in roots than in shoots. J. Exp. Bot. 53:2201-2206. 

  26. Kacperska, A. 2004. Sensor types in signal transduction pathways in plant cells responding to abiotic stressors: do they depend on stress intensity? Physiol. Plantarum 122:159-168. 

  27. Kader, A.A. 2002. Postharvest Biology and Technology-An Overview. In Kader, A.A. (ed.), Postharvest Technology of Horticultural Crops, University of California Agriculture and Natural Resources, CA (USA). pp. 39-47. 

  28. Lee, S.L., H. Choi, I. Doo, K. Oh, E.J. Choi., A.T. Schroeder-Taylor, P.S. Low and Y. Lee. 1999. Oligogalaturonic acid and chitosan reduce stomatal aperture by inducing the evolution of reactive oxygen species from guard cells of tomato and Commelina communis. Plant Physiol. 121:147-152. 

  29. Mahdieh, M. and A. Mostajeran. 2009. Abscisic acid regulates root hydraulic conductance via aquaporin expression modulation in Nicotiana tabacum. J. Plant Physiol. 166:1993-2003. 

  30. Matsuo, N., K. Ozawa and T. Mochizuki. 2009. Genotypic differences in root hydraulic conductance of rice (Oryza sativa L.) in response to water regimes. Plant Soil 316:25-34. 

  31. Morgan, J.M. 1984. Osmoregulation and water stress in higher plants for his assistance. Annu. Rev. Plant Physiol. 35:299-319. 

  32. Mott, K.A., A.C. Gibson and J.W. O'eary. 1982. The adaptive significance of amphistomatic leaves. Plant Cell Environ. 5:455-460. 

  33. Mott, K.A. and O. Michaelson. 1991. Amphistomy as an adaptation to high light-intensity in Ambrosia cordifolia (Compositae). Am. J. Bot. 78:76-79. 

  34. Nicolas, E., A. Torrecillas, J. Dell'Amico and J. Alarcon. 2005. The effect of short-term flooding on the sap flow, gas exchange and hydraulic conductivity of young apricot trees. Trees-Structure Funct. 19:51-57. 

  35. Parkhurst, D.F. 1978. The adaptive significance of stomatal occurrence on one or both surfaces of leaves. J. Ecol. 66:367-383. 

  36. Roberts, M.B.V. and T.J. King. 1987. Uptake and transport in plants. In Biology-A Functional Approach-Students' Manual, Tomas Nelson & Sons Ltd., Cheltenham, UK. pp. 119-129. 

  37. Ruiz-Lozano, J.M., M.M. Alguacil, G. Barzana, P. Vernieri and R. Aroca. 2009. Exogenous ABA accentuates the differences in root hydraulic properties between mycorrhizal and non mycorrhizal maize plants through regulation of PIP aquaporins. Plant Mol. Biol. 70:565-579. 

  38. Ruiz-Sanchez, M.C., R. Domingo, D. Morales and A. Torrecillas. 1996. Water relations of Fino lemon plants on two rootstocks under flooded conditions. Plant Sci. 120:119-125. 

  39. SAS OnlineDoc, version 8.01; SAS Institute: Cary, NC, 2004. 

  40. SCCDA, Santa Clara County Division of Agriculture. 2005. Pesticide adujuvants; what is an adujuvant? Growing Times. 4(2):1-3 (http://www.sccagriculture.org). 

  41. Taylor, S.H., P.J. Franks, S.P. Hulme, E. Spriggs, P.A. Christin, E.J. Edwards, F.I. Woodward and C.P. Osborne. 2012. Photosynthetic pathway and ecological adaptation explain stomatal trait diversity amongst grasses. New Phytol. 193(2): 387-396. 

  42. Wahid, A. and T.J. Close. 2007. Expression of dehydrins under heat stress and their relationship with water relations of sugarcane leaves. Biol. Plantarum 51:104-109. 

  43. Wen R., J.A. Torres-Acosta, L. Pastushok, X. Lai, L. Pelzer, H. Wang and W. Xiao. 2008. Arabidopsis UEV1D promotes Lysine-63-linked polyubiquitination and is involved in DNA damage response. The Plant Cell 20(1):213-227. 

  44. Woodward, F.I. 1987. Stomatal numbers are sensitive to increases in $CO_2$ from preindustrial levels. Nature 327:617-618. 

  45. Zhang, J.H. and X.P. Zhang. 1994. Can early wilting of old leaves account for much of the ABA accumulation in flooded pea-plants? J. Exp. Bot. 45:1335-1342. 

  46. Zhang, J.H., X.P. Zhang and J.S. Liang. 1995. Exudation rate and hydraulic conductivity of maize roots are enhanced by soil drying and abscisic acid treatment. New Phytol. 131: 329-336. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로