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[국내논문] 종이기반의 microfluidics를 이용한 눈물 내 글루코오스 측정 연구
Quantitative Determination of Tear Glucose Using Paper Based Microfluidic Devices 원문보기

대한화학회지 = Journal of the Korean Chemical Society, v.59 no.1, 2015년, pp.88 - 92  

김현재 (연세대학교 화공생명공학과) ,  정신영 (서울과학기술대학교 안경광학과) ,  노혜란 (서울과학기술대학교 안경광학과)

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문제 정의

  • 11 이후 눈물 글루코오스의 변형체인 글루코사미노글리칸(glycosaminoglycans)의 눈물내 농도를 측정해 당뇨병에 의한 안 질환을 이해하고자 하였다.12 임상실험 외의 다양한 방법으로 눈물 글루코오스 농도를 정확하고 간편하게 측정하려는 시도를 하고 있는데그 중, 형광발색에 의한 방법이나,13 이온화질량분석법,14 모세관 전기영동법등15이 있으나 이는 실험장비가 필요 하여 아직까지는 현장현시 질병진단 방법으로 적용되기 에는 무리가 있다.
  • 기존 연구에 의하면 일반적으로 눈물당이 혈당보다 10배 낮은 농도로 존재하며, 눈물 내 글루코오스의 양은 50~100 μM로 피실험자마다 차이가 있는 것으로 알려져 있어9본 논문에서는 상대적 당 농도변화를 계산하여 여러 변수를 제하고 시간에 따른 당 농도 변화를 측정하고자 하였다.
  • 본 연구는 종이를 이용한 마이크로플루이딕 매체로 눈물당을 측정할 수 있는 현장현시 진단 테스트지를 개발하고 임상적으로 혈당과 눈물당의 농도 변화를 비교하였다. 그 결과, 종이-마이크로플루이딕 매체로 눈물 내 글루코오스 농도 측정이 가능함을 나타내었다.
  • 본 연구에서는 종이 microfluidics 기술을 이용하여 비 침습적이며 경제적이고 간편한 글루코오스 측정용 현장 현시 질병진단매체를 제작하고 눈물당 농도를 측정하여 혈당과 비교하여 그 상관관계를 고찰하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
종이기반의 마이크로플루이딕 질병 진단 매체란 무엇인가? 최근 개발된 종이를 기반으로 하는 질병 진단기기는 세계보건기구의 현장현시 질병진단기기 요건에 잘 부합되는 신개념 기술이다.5 이 종이기반의 마이크로플루이딕 질병 진단 매체는 기존의 마이크로플루이딕 기기의 소량의 용액을 정교하게 분류하고 이용할 수 있는 장점을 단순한 종이에 응용시킨 기술이다. 기존의 Lab on a chip에 많이 사용되는 PDMS기술에 비해 저렴한 가격과 사용의 편리성에 더해 정확하고 신속한 진단을 할 수 있는 이점이 있다.
세계보건기구(WHO)는 당뇨를 포함하는 질병 진단 기기의 현장현시 사용을 위한 조건으로 무엇을 명시하고 있는가? 세계보건기구(WHO)에 따르면, 당뇨를 포함하는 질병 진단 기기의 현장현시 사용을 위해서는 빠르고 정확하며 사용자의 사용이 편리해야 한다고 명시되어 있다.5 기존의 침습적인 검사 방법은 수집과정에서 발생하는 불편이 있고 환자의 사용법 준수가 어려우며 지속적인 모니터링이 힘들기 때문에 주기적인 진단으로 사용하기에는 무리가 있다.
당뇨의 진단을 위해 비침습적이고 경제적인 현장현시 진단방법의 개발이 필요한 이유는? 세계보건기구(WHO)에 따르면, 당뇨를 포함하는 질병 진단 기기의 현장현시 사용을 위해서는 빠르고 정확하며 사용자의 사용이 편리해야 한다고 명시되어 있다.5 기존의 침습적인 검사 방법은 수집과정에서 발생하는 불편이 있고 환자의 사용법 준수가 어려우며 지속적인 모니터링이 힘들기 때문에 주기적인 진단으로 사용하기에는 무리가 있다. 당뇨의 조기진단 및 모니터링을 위해 눈물, 땀, 소변 등을 이용한 비 침습적인 글루코오스 농도 검사 방법이 연구 되고 있으나 비용과 사용편리성 등의 이유로 임상에서 성공적으로 사용되기에는 아직 무리가 있다.3,4 따라서 비침습적이고 경제적인 현장현시 진단방법의 개발이 필요하다.
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참고문헌 (15)

  1. Kwang, T. J.; Chun, K. J.; Won, B. H. J. Ergon. Soc. Korea 2013, 32, 557. 

  2. Wild, S.; Roglic, G.; Green, A.; Sicree, R.; King, H. Am. Diabetes Assoc. 2004, 27, 1047. 

  3. Jeong, M. Y. Korean Clin. Diabetes 2010, 11, 4. 

  4. Yager, P.; Edwards, T.; Fu, E.; Helton, K.; Nelson, K.; Tam, M. R.; Weigl, B. H. Nature 2006, 442, 412. 

  5. Yager, P.; Domingo, G. J.; Gerdes, J. Annu. Rev. Biomed. Eng. 2008, 10, 107. 

  6. Martinez, A. W.; Phillips, S. T.; Carrilho, E.; Thomas III, S. W.; Sindi, H.; Whitesides, G. M. Anal. Chem. 2008, 80, 3699. 

  7. Pelton, R. Trends Anal. Chem. 2009, 28, 925. 

  8. Noh, H.; Phillips, S. T. Anal. Chem. 2010, 82, 8071. 

  9. Badugu, R.; Lakowicz, J. R.; Geddes, C. D. J. Fluores. 2003, 13, 371. 

  10. Yan, Q. Y.; Peng, B.; Gang, Su.; Cohan, B. E.; Major, T. C.; Meyerhoff, M. E. Anal. Chem. 2011, 83, 8341. 

  11. Lewis, J. G.; Stephens, P. J. Brit. J. Ophthal. 1958, 42, 754. 

  12. Moschos, M. M.; Rouvas, A. A.; Papadimitriou, S.; Kotsolis, A.; Sitaras, N.; Apostolopoulos, M. Clin. Ophthalmol. 2008, 2, 581. 

  13. Park, J.; Kricka, L. J. Anal. Bioanal. Chem. 2014, 406, 5631. 

  14. Taormina, C. R.; Baca, J. T.; Finegold, D. N.; Asher, S. A.; Grabowski, J. J. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 2007, 18, 332. 

  15. Wang, Z.; Haasch, R. T.; Lee, T. U. Langmuir 2005, 21, 1153. 

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